Cultures were established following

Cultures were established following the procedure described
earlier (Kumar et al., 1999). Cormels were descaled and washed
thoroughlyunder running tap water. These were thensurface disinfected
using mercuric chloride and inoculated on basal MS medium
(Murashige and Skoog, 1962) containing 58 mM sucrose, 0.7% (w/v)
agar, and supplemented with 5.0 M 6-benzyladenine (BA). The
pH of the medium was adjusted to 5.8 before autoclaving at 121 ◦C
for 15 min. The cultures were incubated at 25 ± 1 ◦C in 16-h light
(60 mol m−2 s−1; using white cool fluorescentlights) and 8-h dark
cycle. Actively growing shoots that sprouted from the cormels were
multiplied and maintained on MS medium supplemented with
1.0 M BA and 10.0 M -naphthalene acetic acid (NAA) and the
same were used for further experimentation.
Microshoots were sub-cultured on basal MS medium containing
232 mM sucrose. Rooting in shoots was induced by subjecting
these cultures to heat shock treatment (50 ◦C, 1-h) after one week
of subculture (Kumar et al., 1999). Well rooted shoots (plantlets)
were then used to induce cormlet formation.
2.3

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วัฒนธรรมได้ก่อตั้งขั้นตอนที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ (Kumar et al., 1999) Cormels descaled และเครื่องซักผ้าthoroughlyunder ที่ใช้น้ำประปา มี thensurface ฆ่าเชื้อใช้ mercuric คลอไรด์และ inoculated ในโรค MS ปานกลาง(Murashige และ Skoog, 1962) ประกอบด้วยซูโครส 58 mM, 0.7% (w/v)agar และเสริม ด้วย 5.0 ม. 6-benzyladenine (BA) ที่pH ของตัวกลางมีการปรับปรุงไป 5.8 ก่อน autoclaving ที่ 121 ◦Cใน 15 นาที วัฒนธรรมถูก incubated ที่ 25 ± 1 ◦C แสง 16 h(s−1 m−2 60 โมล ใช้ fluorescentlights ขาวเย็น) และมืด 8-hวงจร มียอดเติบโตอย่างที่แทนจาก cormels การคูณ และยังคงอยู่ใน MS กลางเสริมด้วย1.0 M BA และ 10.0 M-กรดอะซิติกแนฟทาลีน (NAA) และเหมือนถูกใช้สำหรับการทดลองเพิ่มเติมMicroshoots ถูกย่อยอ่างในโรค MS ขนาดกลางที่ประกอบด้วยซูโครส 232 มม. Rooting ในถ่ายภาพถูกเหนี่ยวนำ โดยแล้วก็กดชัตเตอร์วัฒนธรรมเหล่านี้เพื่อรักษาความร้อนช็อก (50 ◦C, 1 h) หลังจากหนึ่งสัปดาห์ของวัฒนธรรม (Kumar et al., 1999) ดีรากอ่อน (plantlets)แล้วใช้เพื่อก่อให้เกิดการก่อตัวของ cormlet2.3

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วัฒนธรรมที่ถูกจัดตั้งขึ้นตามขั้นตอนที่อธิบายไว้
ก่อนหน้านี้ (Kumar et al., 1999) Cormels ถูกขจัดคราบตะกรันและล้าง
thoroughlyunder ใช้น้ำประปา เหล่านี้เป็น thensurface ฆ่าเชื้อ
โดยใช้ปรอทและเชื้อบนอาหารสูตร MS พื้นฐาน
(อาหารสูตร Murashige และ Skoog, 1962) ที่มี 58 มิลลิซูโครส 0.7% (w / v)
วุ้นและเสริมด้วย 5.0 M 6-benzyladenine (BA)
ค่า pH ของกลางมีการปรับเป็น 5.8 ก่อนที่จะนึ่งฆ่าเชื้อที่อุณหภูมิ 121 ◦C
เป็นเวลา 15 นาที วัฒนธรรมที่ได้รับการบ่มที่อุณหภูมิ 25 ± 1 ◦Cในที่มีแสง 16 ชั่วโมง
(60 mol M-2 s-1; ใช้ fluorescentlights เย็นสีขาว) และ 8 ชั่วโมงที่มืด
วงจร อยู่ในระหว่างการเจริญเติบโตหน่อที่งอกจาก cormels ถูก
คูณและการบำรุงรักษาใน MS ที่เติมขนาดกลางที่มี
1.0 M ปริญญาตรีและ 10.0 ล้าน -naphthalene กรดอะซิติก (NAA) และ
เดียวกันถูกนำมาใช้สำหรับการทดลองต่อไป.
Microshoots ถูกย่อยที่เพาะเลี้ยงบนอาหารสูตร MS ที่มีฐาน
232 มิลลิน้ำตาลซูโครส ในรากหน่อถูกชักนำโดย subjecting
วัฒนธรรมเหล่านี้ให้ความร้อนรักษาช็อต (50 ◦C 1 ชั่วโมง) หลังจากหนึ่งสัปดาห์
ของวัฒนธรรม (Kumar et al., 1999) หน่อรากดี (ต้นกล้า)
ถูกนำมาใช้แล้วจะก่อให้เกิดการก่อตัว cormlet.
2.3

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วัฒนธรรมก่อตั้งขึ้นตามกระบวนการอธิบาย
ก่อนหน้านี้ ( Kumar et al . , 1999 ) คอร์เมลถูกขอดเกล็ดล้าง
thoroughlyunder ใช้น้ำประปา เหล่านี้ thensurface ฆ่าเชื้อ
ใช้เมอร์คิวริกคลอไรด์และปลูกบนพื้นฐาน MS
( อาหารสูตร Murashige and Skoog , 1962 ) ที่มีซูโครส 58 มม. 0.7 % ( w / v )
วุ้น และเสริมด้วย 5.0 เมตร 6-benzyladenine ( BA )
ปรับ pH ของอาหารดีขึ้นก่อนอัตราส่วนโฟกัสที่ 121 ◦ C
เป็นเวลา 15 นาที วัฒนธรรมที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียส ใน± 1 ◦ 16-h แสง
( 60 mol m − 2 s − 1 ; ใช้สีขาวเย็น fluorescentlights ) และวงจรมืด
ประมาณ . อย่างการปลูกหน่อที่งอกจากคอร์เมลถูก
คูณ และรักษา ในอาหารสูตร MS ที่เติม BA 1.0 M
10.0 M - แมนดาริน acetic acid ( NAA ) และ
เดียวกันใช้สำหรับการทดลองต่อไป . .
microshoots ถูกย่อยบนอาหาร MS ที่มีฐาน
ซูโครส 232 มิลลิเมตร รากในยิงถูกชักจูงโดย subjecting
วัฒนธรรมเหล่านี้ความร้อนการรักษาช็อก ( 50 ◦ C 1-h ) หลังจาก
1 2 ( Kumar et al . , 1999 ) ดียอด ราก ( ต้น )
แล้วใช้จากการ cormlet
2.3 .