2.3. Analysis2.3.1. Microbiological

2.3. Analysis
2.3.1. Microbiological analysis
To obtain the effect of ohmic cooking on the microbiological
profile of meatball samples and to ensure the microbiological safety
of the product, total mesophilic aerobic bacteria (TMAB), mould
and yeast, Staphylococcus aureus, Clostridium perfringens, Salmonella
spp., Listeria monocytogenes, Escherichia coli O157:H7 analysis were
carried out.
Each sample (25 g) was transferred into 225 mL 0.1% peptone
water (PW, pH 6.3  0.2, Oxoid-L37, Basignstoke, Hampshire, En-
gland) and homogenized for 2 min with Stomacher (Lab-blender
400, Seward, London, UK). Appropriate ten-fold dilutions of the
samples were prepared in PW and plated on/in growth media in
duplicate to estimate microbial counts.
TMAB was determined by using pour plate method on Plate
Count Agar (PCA, pH 7.1  0.2, Oxoid-CM325) and the plates were
incubated at 35
C for 48 h (BAM, 2001a). The counts of mould
and yeast were determined by surface plating on Dichloran Rose
Bengal Chloramphenicol Agar (DRBC, pH 5.6  0.2, Oxoid-
CM0727) containing Chloramphenicol Selective Supplement
(Oxoid-SR0078E) and plates were incubated at 25
C for 3e5
days (BAM, 2001b). S. aureus was determined by surface plating
on BairdeParker Agar (BPA, pH 6.8  0.2, Oxoid-CM275) and
incubating the plates at 35
C for 45e48 h (BAM, 2001c). Double
plated Iron Sulphite Agar (ISA, bioMerieux-42603) plates were
used to count C. perfringens and plates were incubated under
anaerobic conditions at 37
C for 20  2 h. Typical colonies were
confirmed by biochemical tests (motility, nitrate reduction,
lactose fermentation, gelatin liquefaction) (ISO, 2004a). After
pre-enrichment and enrichment steps, Salmonella was detected
by using streak plate method on Xylose Lysine Desoxycholate
Agar (XLD, pH 7.4  0.2, Oxoid-CM 469) and Bismuth Sulphite
Agar (BSA, pH 7.6  0.2, Oxoid-CM0201) and incubating the
plates at 37
C/24 h for XLD plates and 37
C/24e48 h for BSA
plates. Presumptive Salmonella colonies were confirmed by using
biochemical tests [Triple Sugar Iron Agar (TSI, pH 7.4  0.2,
Oxoid-CM0277) and Lysine Iron Agar (LI, pH 6.7  0.2, Oxoid-
CM0381) reactions] and serological tests (BAM, 2007). After
pre-enrichment and enrichment steps, L. monocytogenes isolation
step were applied by using streak plate method on Ottaviani-
Agosti Agar (bioMerieux-43461) and Palcam Agar (PA, pH
7.2  0.2, Oxoid-CM0877) and incubating the plates at 37
C for
24 h. Presumptive colonies were confirmed by using API Listeria
(bioMerieux-10300) (ISO, 2004b). Samples firstly screened for
E. coli presence by using API 20E (bioMerieux-20100), then E. coli
O157:H7 detection were applied for positive results. After pre-
enrichment step, isolation step were applied by streak plate
method on TC-SMAC and plates were incubated at 37
C for 24 h.
Typical colonies were confirmed by E. coli O157 latex agglutina-
tion test kit (Oxoid-DR0620) (BAM, 2001d)

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.3. วิเคราะห์2.3.1. จุลชีววิทยาการรับผลของการทำอาหารเขี้ยวบนที่จุลินทรีย์ตัวอย่างลูกชิ้นและ เพื่อความปลอดภัยทางจุลชีววิทยาของผลิตภัณฑ์ แท็งก์รวม mesophilic (TMAB), แม่พิมพ์และ ยีสต์ หมอเทศข้างลาย Staphylococcus, Clostridium perfringens, Salmonellaออกซิเจน Listeria สมอง Escherichia coli ที่ถูกวิเคราะห์ O157:H7ดำเนินการโอนย้ายเป็น 225 มล. 0.1% peptone แต่ละอย่าง (25 กรัม)น้ำ (PW, pH 6.3 0.2, Oxoid L37, Basignstoke แฮมไชร์ En-ต่อม) และ homogenized สำหรับ 2 นาทีกับแผงประดับหน้าอก (Lab-ปั่น400 เซวาร์ด ลอนดอน สหราชอาณาจักร) การเจือจาง ten-fold ของการตัวอย่างใน PW และชุบในบนสื่อที่เติบโตในทำซ้ำการประมาณจำนวนจุลินทรีย์TMAB กำหนด โดยใช้วิธีเทแผ่นบนแผ่นจำนวนวุ้น (PCA, pH 7.1 0.2, Oxoid CM325) และแผ่นรับการกก 35 c เป็นเวลา 48 ชั่วโมง (BAM, 2001a) จำนวนของแม่พิมพ์และยีสต์ผิวชุบบนดอกกุหลาบ Dichloranเบงกอลวุ้นคคัส (DRBC, pH 5.6 0.2, Oxoid-CM0727) ที่ประกอบด้วยอาหารเสริมเลือกคคัส(Oxoid-SR0078E) และแผ่นได้รับการกกที่ 25 C สำหรับ 3e5วัน (BAM, 2001b) หมอเทศข้างลาย S. ดโดยผิวชุบบนอาหารเลี้ยงเชื้อ BairdeParker (BPA, pH 6.8 0.2, Oxoid CM275) และincubating แผ่นที่ 35 C สำหรับ h 45e48 (BAM, 2001c) เตียงใหญ่ชุบวุ้นเหล็กซัลไฟต์ (ISA, bioMerieux 42603) แผ่นได้ใช้การนับ C. perfringens และแผ่นได้รับการกกภายใต้สภาพไม่ใช้ออกซิเจนที่ 37 C สำหรับ 20 2 h. อาณานิคมทั่วไปยืนยัน โดยการทดสอบทางชีวเคมี (เคลื่อนไหว การลดไนเตรทหมักแลคโตส เจลาติน liquefaction) (ISO, 2004a) หลังจากตรวจพบก่อนตกแต่งและการตกแต่งขั้น Salmonellaโดยใช้วิธีแนวแผ่นบนสารไลซีน Desoxycholateวุ้น (XLD, pH 7.4 0.2, 469 Oxoid ซม.) และบิสมัทซัลไฟต์วุ้น (บีเอสเอ pH 7.6 0.2, Oxoid CM0201) และ incubatingแผ่นที่ 37 C/24 ชม.สำหรับแผ่น XLD และ 37 C/24e48 h สำหรับบีเอสเอแผ่น Salmonella presumptive อาณานิคมได้รับการยืนยัน โดยใช้การทดสอบทางชีวเคมี [สามน้ำตาลเหล็กวุ้น (TSI, pH 7.4 0.2Oxoid-CM0277) และไลซีนเหล็กวุ้น (LI, pH 6.7 0.2, Oxoid -ปฏิกิริยา CM0381)] และการทดสอบทางวิทยา (BAM, 2007) หลังจากขั้นตอนก่อนตกแต่งและตกแต่ง L. สมองแยกขั้นตอนที่ถูกนำไปใช้ โดยใช้วิธีแนวแผ่นบน Ottaviani-วุ้น Agosti (bioMerieux 43461) และวุ้น Palcam (PA, pH7.2 0.2, Oxoid CM0877) และ incubating แผ่นที่ 37 C สำหรับ24 h. Presumptive อาณานิคมได้รับการยืนยัน โดยใช้ API Listeria(bioMerieux 10300) (ISO, 2004b) ตัวอย่างแรก ผ่านตรวจสถานะการออนไลน์ของ e. coli โดยใช้ API 20E (bioMerieux-20100), จากนั้น E. coliการตรวจหา O157:H7 ถูกใช้สำหรับผลบวก หลังจากก่อนขั้นตอนตกแต่ง ขั้นตอนการแยกใช้ตามแนวแผ่นวิธีบน TC-SMAC และแผ่นได้รับการกก 37 c เป็นเวลา 24 ชมอาณานิคมทั่วไปได้รับการยืนยัน โดย E. coli O157 ยาง agglutina-ชุดตรวจทางการค้า (Oxoid-DR0620) (BAM, 2001d)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.3 การวิเคราะห์2.3.1 . การวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยาเพื่อให้ได้ผลของค่าอาหารต่อจุลินทรีย์โปรไฟล์ของตัวอย่างลูกชิ้นและความปลอดภัยทางจุลชีววิทยาของผลิตภัณฑ์รวมมีแอโรบิค แบคทีเรีย ( tmab ) , แม่พิมพ์และยีสต์ , Staphylococcus aureus , Clostridium perfringens , Salmonellaspp . , วงแหวนแวนอัลเลน , Escherichia coli เป็นสมาชิก : การวิเคราะห์ ) คือดําเนินการแต่ละตัวอย่าง ( 25 กรัม ) ถูกย้ายลง 0.1% ตามลำดับ 225 มล.น้ำ ( PW , pH 6.3 0.2 , oxoid-l37 basignstoke , Hampshire , EN -ต่อม ) และบดสำหรับ 2 นาทีกับแผงประดับหน้าอก ( ปั่นแลป400 ซีเวิร์ด , ลอนดอน , UK ) สิบเท่าวิธีการที่เหมาะสมตัวอย่างที่เตรียมไว้ใน PW และชุบ / สื่อการเจริญเติบโตในสำเนาการประเมินจุลินทรีย์นับtmab ถูกกำหนดโดยใช้วิธีราดบนจานจานนับ ( PCA , pH 7.1 0.2 , oxoid-cm325 ) และแผ่นคือบ่มที่อุณหภูมิ 35 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมง ( แบม 2001a ) นับของแม่พิมพ์และยีสต์ซึ่งผิวชุบบนไดคลอแรน โรสเบงกอลคลอแรมเฟนิคอล ( drbc pH 5.6 - 0.2 oxoidcm0727 ) ที่มี chloramphenicol เลือกอาหารเสริม( oxoid-sr0078e ) และแผ่นอุณหภูมิ 25 C 3e5วัน ( แบม 2001b ) S . aureus ถูกกำหนดโดยการชุบผิวใน bairdeparker ( BPA , pH 6.8 0.2 , oxoid-cm275 ) และไข่จาน 35 C 45e48 H ( แบม 2001c ) ดับเบิ้ลชุบเหล็กซัลไฟท์ ( ISA biomerieux-42603 ) แผ่นคือใช้ C . perfringens นับและแผ่นถูกบ่มภายใต้ไร้เงื่อนไขที่อุณหภูมิ 37 20 2 ชั่วโมง โดยทั่วไปเป็นอาณานิคมยืนยันโดยการทดสอบทางชีวเคมี ( ลดไนเตรท , การเคลื่อนที่ภาวะการหมักการแปรรูปเยลลี่ ) ( ISO , 2004a ) หลังจากก่อนการเสริมเชื้อที่ตรวจพบและขั้นตอนโดยใช้แนววิธีการในซีน desoxycholate ไซโลจาน( xld pH 7.4 0.2 , oxoid ซม. 469 ) และบิสมัทซัลไฟท์วุ้น ( BSA , pH 7.6 0.2 , oxoid-cm0201 ) และไข่ที่จานที่อุณหภูมิ 37 / 24 ชั่วโมง xld แผ่นและ 37 C / 24e48 H สำหรับ บีเอสเอแผ่น ษาอาณานิคมได้รับการยืนยันโดยการใช้เชื้อการทดสอบทางชีวเคมี [ Triple น้ำตาลเหล็ก 2 ( pH 7.4 0.2 ,oxoid-cm0277 ) ชุดเหล็ก ( Li , pH 6.7 0.2 , oxoid -cm0381 ) ปฏิกิริยา ] และการทดสอบระบบ ( แบม , 2007 ) หลังจากและขั้นตอนก่อนการเพิ่มคุณค่า monocytogenes แยก Lขั้นประยุกต์ โดยใช้แนววิธีการ ottaviani - แผ่นสิงหาคม ( biomerieux-43461 ) และ palcam ( PA , อ7.2 0.2 , oxoid-cm0877 ) และการแช่แผ่น 37 C สำหรับ24 ชั่วโมง ให้ผลอาณานิคมได้รับการยืนยันโดยการใช้ API Listeria( biomerieux-10300 ) ( ISO , 2004b ) จากตัวอย่างแรกตัว E . coli โดยใช้ API 20e ( biomerieux-20100 ) , E . coliเป็นสมาชิก : H7 พบประยุกต์สำหรับผลลัพธ์ที่เป็นบวก หลังจากที่ก่อนขั้นตอนการใช้ ขั้นตอนการแยกแผ่นริ้ววิธี tc-smac และแผ่นถูกบ่มที่ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมงโดยทั่วไปอาณานิคมได้รับการยืนยันโดย E . coli เป็นสมาชิก agglutina - ยางชุดทดสอบ tion ( oxoid-dr0620 ) ( แบม 2001d )