- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
2. Materials and methods2.1. Experi
2. Materials and methods
2.1. Experiment material and planting
Supersweet corn seeds (F1 hybrid with sh2), cv. Supersweet 17,
were used in these studies. The hybrid seeds were produced by
synchronous hand cross-pollination of the parental inbreds in the field at the experimental farm of Zhejiang University using production practices common for the region.
2.2. Seed harvest
Normally, it takes 30–40 days for supersweet corn seeds to
fully mature but seed germination is possible 14 days after
pollination (Cao et al., 2008b). Supersweet corn ears were
harvested at different developmental stages from 14 to 42 days(at an interval of 4 days) after pollination (DAP). At each harvest,10 plants were randomly chosen and the first ear from the top of the plant was harvested by hand. Seeds from the middle part of supersweet corn ears were threshed by hand and bulked for further tests
2.3. Germination test
Three replications of 50 seeds for each harvest were used, each
50 seeds were placed in a 12 cm 18 cm germination box
containing wet sand. Then, seeds were kept in a germination
chamber at 25 8C with a diurnal cycle of 12 h light and 12 h
darkness for 7 days. Seeds were considered germinated when a
1 mm length radicle protruded through the seed coat. The number
of germinated seeds was counted daily. The energy of germination
and germination percentage were calculated after 4 and 7 days,respectively. The germination index (GI = S(Gt Tt1
)) was calculated by the method of Zhang et al. (2007) where Gt is the number
of the germinated seeds on day t and Tt is the time corresponding
to Gt (in days). The energy of germination was the percentage of germinated seeds 4 days after planting relative to the number of
seeds tested.
2.4. Measurements of physiological parameters
The seed length, width and thickness of 30 seeds were
measured at each harvest manually with a ruler. The fresh and
dry weights of 100 seeds were recorded at each harvest. Dry
weights were recorded after 24 h in an oven at 80 8C (Cao et al.,
2008a).
The evaluation of kernel nutritive quality was performed with 3
replications of 20 seeds for each harvest. Soluble protein was
extracted from the seeds and determined by colorimetric assay
with Coomassie Brilliant Blue G250 (Li, 2000). The concentration of
total soluble sugar was determined by 3,5-dinitrosalicylic acid
method (Jiang, 1999)Malondialdehyde (MDA) concentration was determined
using the thiobarbituric acid (TBA) reaction as described by
Zhang et al. (2007). Briefly, 0.3 g fresh weight (FW) of corn
seeds for each replication were collected at 14, 18, 22, 26, 30,
34, 38 and 42 days after pollination, and homogenized in 3 ml
of 5% trichloroacetic acid (TCA). The homogenate was centrifuged at 3600 g for 10 min and 2 ml of 0.67% TBA was added to 2 ml of supernatant. The mixture was heated at 100 8C for 30 min, cooled to room temperature and then centrifuged at 1800 g for 5 min. The optical density of the supernatant
was measured at 450 nm, 532 nm and 600 nm. The MDA
concentration was calculated according to the follow formula:C (mmol l1) = 6.45(A532 A600) 0.56A450, then the MDA concentration (nmol g1 FW) was calculated.
Electrolyte leakage as a measurement for membrane permeability was determined according to the method of Liu et al. (2000).Fresh seeds were cut into segments of about 5 mm respectively.Each tissue (0.2 g FW) was placed in the test tube with 10 ml deionized water and covered with a plug. After incubation at 25 8C for 6 h, the electrolyte leakage of the tissue was measured using a
conductivity meter (DDS-11A, made in Shanghai, China), the valuewas named E1. Subsequently, the test tube was kept in water at
100 8C for 30 min, and then cooled to 25 8C, the second electrolyte
leakage was measured as E2. The electrolyte leakage of deionized
water was named E0. The relative electrolyte leakage (REL) was
calculated as follows:
REL ¼ E1 E0
E2 E0 100%
P
2.1. Experiment material and planting
Supersweet corn seeds (F1 hybrid with sh2), cv. Supersweet 17,
were used in these studies. The hybrid seeds were produced by
synchronous hand cross-pollination of the parental inbreds in the field at the experimental farm of Zhejiang University using production practices common for the region.
2.2. Seed harvest
Normally, it takes 30–40 days for supersweet corn seeds to
fully mature but seed germination is possible 14 days after
pollination (Cao et al., 2008b). Supersweet corn ears were
harvested at different developmental stages from 14 to 42 days(at an interval of 4 days) after pollination (DAP). At each harvest,10 plants were randomly chosen and the first ear from the top of the plant was harvested by hand. Seeds from the middle part of supersweet corn ears were threshed by hand and bulked for further tests
2.3. Germination test
Three replications of 50 seeds for each harvest were used, each
50 seeds were placed in a 12 cm 18 cm germination box
containing wet sand. Then, seeds were kept in a germination
chamber at 25 8C with a diurnal cycle of 12 h light and 12 h
darkness for 7 days. Seeds were considered germinated when a
1 mm length radicle protruded through the seed coat. The number
of germinated seeds was counted daily. The energy of germination
and germination percentage were calculated after 4 and 7 days,respectively. The germination index (GI = S(Gt Tt1
)) was calculated by the method of Zhang et al. (2007) where Gt is the number
of the germinated seeds on day t and Tt is the time corresponding
to Gt (in days). The energy of germination was the percentage of germinated seeds 4 days after planting relative to the number of
seeds tested.
2.4. Measurements of physiological parameters
The seed length, width and thickness of 30 seeds were
measured at each harvest manually with a ruler. The fresh and
dry weights of 100 seeds were recorded at each harvest. Dry
weights were recorded after 24 h in an oven at 80 8C (Cao et al.,
2008a).
The evaluation of kernel nutritive quality was performed with 3
replications of 20 seeds for each harvest. Soluble protein was
extracted from the seeds and determined by colorimetric assay
with Coomassie Brilliant Blue G250 (Li, 2000). The concentration of
total soluble sugar was determined by 3,5-dinitrosalicylic acid
method (Jiang, 1999)Malondialdehyde (MDA) concentration was determined
using the thiobarbituric acid (TBA) reaction as described by
Zhang et al. (2007). Briefly, 0.3 g fresh weight (FW) of corn
seeds for each replication were collected at 14, 18, 22, 26, 30,
34, 38 and 42 days after pollination, and homogenized in 3 ml
of 5% trichloroacetic acid (TCA). The homogenate was centrifuged at 3600 g for 10 min and 2 ml of 0.67% TBA was added to 2 ml of supernatant. The mixture was heated at 100 8C for 30 min, cooled to room temperature and then centrifuged at 1800 g for 5 min. The optical density of the supernatant
was measured at 450 nm, 532 nm and 600 nm. The MDA
concentration was calculated according to the follow formula:C (mmol l1) = 6.45(A532 A600) 0.56A450, then the MDA concentration (nmol g1 FW) was calculated.
Electrolyte leakage as a measurement for membrane permeability was determined according to the method of Liu et al. (2000).Fresh seeds were cut into segments of about 5 mm respectively.Each tissue (0.2 g FW) was placed in the test tube with 10 ml deionized water and covered with a plug. After incubation at 25 8C for 6 h, the electrolyte leakage of the tissue was measured using a
conductivity meter (DDS-11A, made in Shanghai, China), the valuewas named E1. Subsequently, the test tube was kept in water at
100 8C for 30 min, and then cooled to 25 8C, the second electrolyte
leakage was measured as E2. The electrolyte leakage of deionized
water was named E0. The relative electrolyte leakage (REL) was
calculated as follows:
REL ¼ E1 E0
E2 E0 100%
P
0/5000
2. วัสดุและวิธีการ2.1 การทดสอบวัสดุและการปลูกเมล็ดข้าวโพด supersweet (F1 ผสมกับ sh2) พันธุ์ Supersweet 17ใช้ในการศึกษาเหล่านี้ ผลิตโดยเมล็ดพันธุ์ไฮบริดการผสมเกสรแบบซิงโครนัสมือของ inbreds โดยผู้ปกครองในฟิลด์ที่ฟาร์มทดลองใช้ผลิตปฏิบัติทั่วไปในภูมิภาคที่มหาวิทยาลัยเจ้อเจียง2.2. เมล็ดการเก็บเกี่ยวโดยปกติ ใช้เวลา 30 – 40 วัน supersweet ข้าวโพดเมล็ดผู้ใหญ่ทั้งหมด แต่เมล็ดการงอกได้ 14 วันหลังจากpollination (Cao et al., 2008b) ข้าวโพด supersweet หูได้เก็บเกี่ยวที่แตกต่างพัฒนาขั้น 14 42 วัน (ในช่วงวันที่ 4) หลังจาก pollination (DAP) ในฤดูเก็บเกี่ยว 10 ต้นไม้ที่ถูกเลือกแบบสุ่ม และหูแรกจากด้านบนของพืชถูกเก็บเกี่ยวด้วยมือ เมล็ดพืชจากส่วนกลางของหูข้าวโพด supersweet threshed ด้วยมือ และ bulked ทดสอบเพิ่มเติม2.3 ทดสอบการงอกใช้ระยะที่สามของ 50 เมล็ดการเก็บเกี่ยวแต่ละ แต่ละเมล็ดพืช 50 ถูกวางในกล่องการงอก 18 ซม. 12 ซม.ประกอบด้วยทรายเปียก เมล็ดถูกเก็บไว้ในการงอกที่แล้วหอที่ 8C 25 กับวงจร diurnal แสง 12 h และ 12 hความมืด 7 วัน เมล็ดได้ถือเปลือกงอกเมื่อมีradicle ความยาว 1 มม. protruded ผ่านหุ้มเมล็ด หมายเลขของเมล็ดพืชเปลือกงอกได้นับรวมทุกวัน พลังงานของการงอกและเปอร์เซ็นต์การงอกมีคำนวณหลังจากวันที่ 4 และ 7 ตามลำดับ ดัชนีการงอก (GI = S(Gt Tt1คำนวณ โดยวิธีของ Zhang et al. (2007) หมายเลข Gt))ของเมล็ดพืชเปลือกงอกในวันที่ t และ Tt มีเวลาตรงกับ Gt (เป็นวัน) พลังงานของการงอก 4 วันหลังจากปลูกสัมพันธ์กับจำนวนเปอร์เซ็นต์ของเมล็ดเปลือกงอกได้เมล็ดพืชทดสอบ2.4 การวัดพารามิเตอร์สรีรวิทยาเมล็ดยาว ความกว้าง และความหนาของเมล็ด 30 ได้วัดที่เก็บเกี่ยวแต่ละด้วยตนเองกับไม้บรรทัด สด และน้ำหนักแห้งของเมล็ด 100 ถูกบันทึกในฤดูเก็บเกี่ยว แห้งบันทึกน้ำหนักหลังจาก 24 ชมในเตาอบที่ 80 8C (Cao et al.,2008a)ดำเนินการประเมินคุณภาพวิจัยเคอร์เนล มี 3ระยะของ 20 เมล็ดในฤดูเก็บเกี่ยว โปรตีนที่ละลายน้ำได้สกัดจากเมล็ด และกำหนด โดยวิเคราะห์เทียบเคียงด้วย Coomassie G250 สีฟ้าสดใส (Li, 2000) ความเข้มข้นของน้ำตาลละลายน้ำทั้งหมดถูกกำหนด โดยกรด 3,5-dinitrosalicylicวิธี (เจียง 1999) ได้กำหนดความเข้มข้น Malondialdehyde (MDA)ใช้ปฏิกิริยากรด (TBA) thiobarbituric ตามที่อธิบายไว้โดยเตียว et al. (2007) สั้น ๆ 0.3 g สดน้ำหนัก (FW) ของข้าวโพดมีการรวบรวมเมล็ดสำหรับแต่ละแบบจำลองที่ 14, 18, 22, 26, 3034, 38 และ 42 วันหลัง pollination และ homogenized เป็นกลุ่มใน 3 mlของ 5% trichloroacetic กรด (TCA) Homogenate ถูก centrifuged ที่ 3600 g สำหรับ 10 นาที และ 2 ml ของ TBA 0.67% ถูกเพิ่ม 2 ml ของ supernatant ส่วนผสมถูกความร้อนที่ 100 8C ใน 30 นาที ระบายความร้อนด้วยอุณหภูมิห้อง และ centrifuged แล้ว ที่ g 1800 สำหรับ 5 นาที ความหนาแน่นออปติคัลของ supernatantมีวัดที่ 450 nm, 532 nm และ 600 nm MDAมีคำนวณความเข้มข้นตามตามสูตร: C (mmol l1) = 6.45(A532 A600) 0.56A450 แล้วความเข้มข้นของ MDA (nmol g1 FW) คำนวณอิเล็กโทรรั่วเป็นวัดสำหรับเมมเบรน permeability ได้กำหนดตามวิธีการของหลิวและ al. (2000)เมล็ดสดถูกตัดเป็นกลุ่มประมาณ 5 มม.ตามลำดับแต่ละเนื้อเยื่อ (0.2 g FW) ถูกวางลงในหลอดทดสอบน้ำ 10 ml deionized และครอบคลุมพร้อมปลั๊กแบบ หลังจากบ่มที่ 25 8C สำหรับ 6 h อิเล็กโทรการรั่วไหลของเนื้อเยื่อถูกวัดโดยใช้แบบนำมิเตอร์ (ทพ-11A ในเซี่ยงไฮ้ ประเทศจีน) valuewas ชื่อ E1 ในเวลาต่อมา หลอดทดสอบถูกเก็บไว้ในน้ำที่100 8C สำหรับ 30 นาที และระบายความร้อนด้วยการ 25 8C อิเล็กโทรที่สองแล้วรั่วไหลถูกวัดเป็น E2 การรั่วไหลของอิเล็กโทรของ deionizedน้ำมีชื่อว่า E0 มีการรั่วไหลอิเล็กโทรสัมพัทธ์ (REL)คำนวณดังนี้:E0 ¼ E1 RELE2 E0 100%P
การแปล กรุณารอสักครู่..
2. Materials and methods
2.1. Experiment material and planting
Supersweet corn seeds (F1 hybrid with sh2), cv. Supersweet 17,
were used in these studies. The hybrid seeds were produced by
synchronous hand cross-pollination of the parental inbreds in the field at the experimental farm of Zhejiang University using production practices common for the region.
2.2. Seed harvest
Normally, it takes 30–40 days for supersweet corn seeds to
fully mature but seed germination is possible 14 days after
pollination (Cao et al., 2008b). Supersweet corn ears were
harvested at different developmental stages from 14 to 42 days(at an interval of 4 days) after pollination (DAP). At each harvest,10 plants were randomly chosen and the first ear from the top of the plant was harvested by hand. Seeds from the middle part of supersweet corn ears were threshed by hand and bulked for further tests
2.3. Germination test
Three replications of 50 seeds for each harvest were used, each
50 seeds were placed in a 12 cm 18 cm germination box
containing wet sand. Then, seeds were kept in a germination
chamber at 25 8C with a diurnal cycle of 12 h light and 12 h
darkness for 7 days. Seeds were considered germinated when a
1 mm length radicle protruded through the seed coat. The number
of germinated seeds was counted daily. The energy of germination
and germination percentage were calculated after 4 and 7 days,respectively. The germination index (GI = S(Gt Tt1
)) was calculated by the method of Zhang et al. (2007) where Gt is the number
of the germinated seeds on day t and Tt is the time corresponding
to Gt (in days). The energy of germination was the percentage of germinated seeds 4 days after planting relative to the number of
seeds tested.
2.4. Measurements of physiological parameters
The seed length, width and thickness of 30 seeds were
measured at each harvest manually with a ruler. The fresh and
dry weights of 100 seeds were recorded at each harvest. Dry
weights were recorded after 24 h in an oven at 80 8C (Cao et al.,
2008a).
The evaluation of kernel nutritive quality was performed with 3
replications of 20 seeds for each harvest. Soluble protein was
extracted from the seeds and determined by colorimetric assay
with Coomassie Brilliant Blue G250 (Li, 2000). The concentration of
total soluble sugar was determined by 3,5-dinitrosalicylic acid
method (Jiang, 1999)Malondialdehyde (MDA) concentration was determined
using the thiobarbituric acid (TBA) reaction as described by
Zhang et al. (2007). Briefly, 0.3 g fresh weight (FW) of corn
seeds for each replication were collected at 14, 18, 22, 26, 30,
34, 38 and 42 days after pollination, and homogenized in 3 ml
of 5% trichloroacetic acid (TCA). The homogenate was centrifuged at 3600 g for 10 min and 2 ml of 0.67% TBA was added to 2 ml of supernatant. The mixture was heated at 100 8C for 30 min, cooled to room temperature and then centrifuged at 1800 g for 5 min. The optical density of the supernatant
was measured at 450 nm, 532 nm and 600 nm. The MDA
concentration was calculated according to the follow formula:C (mmol l1) = 6.45(A532 A600) 0.56A450, then the MDA concentration (nmol g1 FW) was calculated.
Electrolyte leakage as a measurement for membrane permeability was determined according to the method of Liu et al. (2000).Fresh seeds were cut into segments of about 5 mm respectively.Each tissue (0.2 g FW) was placed in the test tube with 10 ml deionized water and covered with a plug. After incubation at 25 8C for 6 h, the electrolyte leakage of the tissue was measured using a
conductivity meter (DDS-11A, made in Shanghai, China), the valuewas named E1. Subsequently, the test tube was kept in water at
100 8C for 30 min, and then cooled to 25 8C, the second electrolyte
leakage was measured as E2. The electrolyte leakage of deionized
water was named E0. The relative electrolyte leakage (REL) was
calculated as follows:
REL ¼ E1 E0
E2 E0 100%
P
2.1. Experiment material and planting
Supersweet corn seeds (F1 hybrid with sh2), cv. Supersweet 17,
were used in these studies. The hybrid seeds were produced by
synchronous hand cross-pollination of the parental inbreds in the field at the experimental farm of Zhejiang University using production practices common for the region.
2.2. Seed harvest
Normally, it takes 30–40 days for supersweet corn seeds to
fully mature but seed germination is possible 14 days after
pollination (Cao et al., 2008b). Supersweet corn ears were
harvested at different developmental stages from 14 to 42 days(at an interval of 4 days) after pollination (DAP). At each harvest,10 plants were randomly chosen and the first ear from the top of the plant was harvested by hand. Seeds from the middle part of supersweet corn ears were threshed by hand and bulked for further tests
2.3. Germination test
Three replications of 50 seeds for each harvest were used, each
50 seeds were placed in a 12 cm 18 cm germination box
containing wet sand. Then, seeds were kept in a germination
chamber at 25 8C with a diurnal cycle of 12 h light and 12 h
darkness for 7 days. Seeds were considered germinated when a
1 mm length radicle protruded through the seed coat. The number
of germinated seeds was counted daily. The energy of germination
and germination percentage were calculated after 4 and 7 days,respectively. The germination index (GI = S(Gt Tt1
)) was calculated by the method of Zhang et al. (2007) where Gt is the number
of the germinated seeds on day t and Tt is the time corresponding
to Gt (in days). The energy of germination was the percentage of germinated seeds 4 days after planting relative to the number of
seeds tested.
2.4. Measurements of physiological parameters
The seed length, width and thickness of 30 seeds were
measured at each harvest manually with a ruler. The fresh and
dry weights of 100 seeds were recorded at each harvest. Dry
weights were recorded after 24 h in an oven at 80 8C (Cao et al.,
2008a).
The evaluation of kernel nutritive quality was performed with 3
replications of 20 seeds for each harvest. Soluble protein was
extracted from the seeds and determined by colorimetric assay
with Coomassie Brilliant Blue G250 (Li, 2000). The concentration of
total soluble sugar was determined by 3,5-dinitrosalicylic acid
method (Jiang, 1999)Malondialdehyde (MDA) concentration was determined
using the thiobarbituric acid (TBA) reaction as described by
Zhang et al. (2007). Briefly, 0.3 g fresh weight (FW) of corn
seeds for each replication were collected at 14, 18, 22, 26, 30,
34, 38 and 42 days after pollination, and homogenized in 3 ml
of 5% trichloroacetic acid (TCA). The homogenate was centrifuged at 3600 g for 10 min and 2 ml of 0.67% TBA was added to 2 ml of supernatant. The mixture was heated at 100 8C for 30 min, cooled to room temperature and then centrifuged at 1800 g for 5 min. The optical density of the supernatant
was measured at 450 nm, 532 nm and 600 nm. The MDA
concentration was calculated according to the follow formula:C (mmol l1) = 6.45(A532 A600) 0.56A450, then the MDA concentration (nmol g1 FW) was calculated.
Electrolyte leakage as a measurement for membrane permeability was determined according to the method of Liu et al. (2000).Fresh seeds were cut into segments of about 5 mm respectively.Each tissue (0.2 g FW) was placed in the test tube with 10 ml deionized water and covered with a plug. After incubation at 25 8C for 6 h, the electrolyte leakage of the tissue was measured using a
conductivity meter (DDS-11A, made in Shanghai, China), the valuewas named E1. Subsequently, the test tube was kept in water at
100 8C for 30 min, and then cooled to 25 8C, the second electrolyte
leakage was measured as E2. The electrolyte leakage of deionized
water was named E0. The relative electrolyte leakage (REL) was
calculated as follows:
REL ¼ E1 E0
E2 E0 100%
P
การแปล กรุณารอสักครู่..
2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . วัสดุทดลอง และปลูกเมล็ดข้าวโพด
อ่อนหวาน ( F1 ผสมกับสินค้า ) , พันธุ์ อ่อนหวาน 17
ถูกใช้ในการศึกษาเหล่านี้ เมล็ดพันธุ์ลูกผสมที่ผลิต
แบบผสมข้ามสายพันธุ์มือของผู้ปกครองในเขตที่ฟาร์มทดลองของมหาวิทยาลัยเจ้อเจียงใช้ผลิตแนวทางปฏิบัติทั่วไปสำหรับภูมิภาค .
2.2 . เมล็ดเก็บเกี่ยว
โดยปกติมันใช้เวลา 30 – 40 วัน เมล็ดข้าวโพดอ่อนหวาน
อย่างผู้ใหญ่ แต่การงอกของเมล็ดได้ 14 วัน หลังการผสมเกสร
( เคา et al . , 2008b ) อ่อนหวานข้าวโพดหู
เก็บเกี่ยวที่ระยะพัฒนาการต่าง ๆ จาก 14 42 วัน ( ในช่วง 4 วัน ) หลังจากการผสมเกสร ( DAP ) ในการเก็บเกี่ยวแต่ละพืช 10 สุ่มเลือกและหูครั้งแรกจากด้านบนของพืชที่ถูกเก็บเกี่ยวด้วยมือเมล็ดพันธุ์จากส่วนกลางอ่อนหวานหูข้าวโพดนวดข้าวด้วยมือและยกต่อไปทดสอบ
2.3
การทดสอบความงอกของเมล็ด 3 ซ้ำ 50 สำหรับการเก็บเกี่ยวแต่ละแบบแต่ละ
50 เมล็ดอยู่ใน 12 ซม. 18 ซม. มีกล่อง
ที่มีทรายเปียก แล้วเมล็ดถูกเก็บไว้ในการงอก
ห้องที่ 25 8C กับวงจรใน 12 ชั่วโมงและ 12 ชั่วโมงของแสง
ความมืดเป็นเวลา 7 วันถือว่าเป็นเมล็ดงอกเมื่อ
1 มม. ความยาวรากโดยมีผ่านเยื่อหุ้มเมล็ด . หมายเลข
ของเมล็ดงอกถูกนับทุกวัน พลังงาน และความงอกได้งอก
หลังจาก 4 และ 7 วัน ตามลำดับ ดัชนีการงอก ( GI = S ( GT tt1
) ) ที่คำนวณโดยวิธีการของ Zhang et al . ( 2007 ) ที่ GT เป็นหมายเลข
ของเมล็ดในวันและเวลาเดียวกัน
TT มีการ GT ( วัน ) พลังงานของการงอกของเมล็ดมีเปอร์เซ็นต์ 4 วัน หลังปลูกเมื่อเทียบกับจำนวนเมล็ดทดสอบ
.
2.4 . การวัดของสรีรวิทยา
เม็ด ความยาว ความกว้าง และความหนาของ 30 เมล็ดในแต่ละเก็บเกี่ยวด้วยตนเอง
วัดด้วยไม้บรรทัด สดและ
น้ำหนักแห้ง 100 เมล็ดที่ถูกบันทึกไว้ในแต่ละเก็บเกี่ยว น้ำหนักแห้ง
ถูกบันทึกไว้หลังจาก 24 ชั่วโมงในเตาอบที่อุณหภูมิ 80 8C ( เคา et al . ,
2008a ) การประเมินคุณภาพทางโภชนาการเมล็ดได้ด้วย 3
ซ้ำ 20 เมล็ดในการเก็บเกี่ยว ปริมาณโปรตีนที่สกัดได้จากเมล็ดและ
) กำหนดโดย 7.4 กับเหล่านี้น่าจะเป็น g250 สีฟ้าสดใส ( Li , 2000 ) ความเข้มข้นของ
น้ำตาลที่ละลายน้ำได้ทั้งหมดถูกกำหนดโดยวิธีกรด
3,5-dinitrosalicylic ( เจียง , 1999 ) มาลอนไดอัลดีไฮด์ ( MDA ) สมาธิตั้งใจ
โดยใช้กรดเท่ากับ ( TBA ) ปฏิกิริยาตามที่อธิบายไว้โดย
Zhang et al . ( 2007 ) สั้น ๆ , 0.3 กรัมน้ำหนักสด ( FW ) ของเมล็ดข้าวโพด
แต่ละซ้ำจำนวน 14 , 18 , 22 , 26 , 30 ,
34 , 38 และ 42 วัน หลังการผสมเกสร และบด 3 ml
5 % กรดไตรคลอโรอะซิติก ( TCA ) โดยแยกเป็นระดับที่ 3600 กรัมต่อ 10 นาที 2 มิลลิลิตรมีค่า 0.67 % เพิ่ม 2 ml ของน่าน . ส่วนผสมจะถูกความร้อนที่ 100 8C เป็นเวลา 30 นาที เย็นที่อุณหภูมิห้อง แล้วที่ระดับ 1 , 800 กรัม เป็นเวลา 5 นาที ความหนาแน่นของแสงสูง
เป็นวัดที่ 450 นาโนเมตร 532 nm และ 600 นาโนเมตร การออกซิเดชั่น
ความเข้มข้นที่คำนวณตามตามสูตรเคมี : C ( mmol L1 ) = 6.45 ( a532 a600 ) 0.56a450 แล้ว ( สมาธิ ( nmol G1 FW ) คือค่า
อิเล็กโทรไลต์เยื่อซึมรั่วเป็นวัดถูกกำหนดตามวิธีการของ Liu et al . ( 2543 ) . เมล็ดสดที่ถูกตัดเป็นส่วน ประมาณ 5 มิลลิเมตร ตามลำดับ แต่ละเนื้อเยื่อ ( 02 g FW ) ลงในหลอดทดลองที่มี 10 น้ำคล้ายเนื้อเยื่อประสาน ml และปกคลุมด้วยปลั๊ก หลังจากบ่มที่อุณหภูมิ 25 8C 6 H , อิเล็กโทรไลต์การรั่วไหลของเนื้อเยื่อถูกวัดโดยใช้เครื่องวัดค่า (
dds-11a ทำในเซี่ยงไฮ้ , จีน ) , กันชื่อ E1 ต่อมาหลอดทดลองที่ถูกเก็บไว้ในน้ำที่
100 8C สำหรับ 30 นาทีแล้วเย็น 25 8C ,
อิเล็กโทรไลต์วินาทีการรั่วไหลถูกวัดเป็น E2 . การรั่วซึมของน้ำอิเล็กโทรไลต์คล้ายเนื้อเยื่อประสาน
ชื่อ E0 . การรั่วไหลของอิเล็กโทรไลต์แบบสัมพัทธ์ ( rel ) คำนวณได้ดังนี้
¼ rel E0
E2 E1 E0
p
100 %
2.1 . วัสดุทดลอง และปลูกเมล็ดข้าวโพด
อ่อนหวาน ( F1 ผสมกับสินค้า ) , พันธุ์ อ่อนหวาน 17
ถูกใช้ในการศึกษาเหล่านี้ เมล็ดพันธุ์ลูกผสมที่ผลิต
แบบผสมข้ามสายพันธุ์มือของผู้ปกครองในเขตที่ฟาร์มทดลองของมหาวิทยาลัยเจ้อเจียงใช้ผลิตแนวทางปฏิบัติทั่วไปสำหรับภูมิภาค .
2.2 . เมล็ดเก็บเกี่ยว
โดยปกติมันใช้เวลา 30 – 40 วัน เมล็ดข้าวโพดอ่อนหวาน
อย่างผู้ใหญ่ แต่การงอกของเมล็ดได้ 14 วัน หลังการผสมเกสร
( เคา et al . , 2008b ) อ่อนหวานข้าวโพดหู
เก็บเกี่ยวที่ระยะพัฒนาการต่าง ๆ จาก 14 42 วัน ( ในช่วง 4 วัน ) หลังจากการผสมเกสร ( DAP ) ในการเก็บเกี่ยวแต่ละพืช 10 สุ่มเลือกและหูครั้งแรกจากด้านบนของพืชที่ถูกเก็บเกี่ยวด้วยมือเมล็ดพันธุ์จากส่วนกลางอ่อนหวานหูข้าวโพดนวดข้าวด้วยมือและยกต่อไปทดสอบ
2.3
การทดสอบความงอกของเมล็ด 3 ซ้ำ 50 สำหรับการเก็บเกี่ยวแต่ละแบบแต่ละ
50 เมล็ดอยู่ใน 12 ซม. 18 ซม. มีกล่อง
ที่มีทรายเปียก แล้วเมล็ดถูกเก็บไว้ในการงอก
ห้องที่ 25 8C กับวงจรใน 12 ชั่วโมงและ 12 ชั่วโมงของแสง
ความมืดเป็นเวลา 7 วันถือว่าเป็นเมล็ดงอกเมื่อ
1 มม. ความยาวรากโดยมีผ่านเยื่อหุ้มเมล็ด . หมายเลข
ของเมล็ดงอกถูกนับทุกวัน พลังงาน และความงอกได้งอก
หลังจาก 4 และ 7 วัน ตามลำดับ ดัชนีการงอก ( GI = S ( GT tt1
) ) ที่คำนวณโดยวิธีการของ Zhang et al . ( 2007 ) ที่ GT เป็นหมายเลข
ของเมล็ดในวันและเวลาเดียวกัน
TT มีการ GT ( วัน ) พลังงานของการงอกของเมล็ดมีเปอร์เซ็นต์ 4 วัน หลังปลูกเมื่อเทียบกับจำนวนเมล็ดทดสอบ
.
2.4 . การวัดของสรีรวิทยา
เม็ด ความยาว ความกว้าง และความหนาของ 30 เมล็ดในแต่ละเก็บเกี่ยวด้วยตนเอง
วัดด้วยไม้บรรทัด สดและ
น้ำหนักแห้ง 100 เมล็ดที่ถูกบันทึกไว้ในแต่ละเก็บเกี่ยว น้ำหนักแห้ง
ถูกบันทึกไว้หลังจาก 24 ชั่วโมงในเตาอบที่อุณหภูมิ 80 8C ( เคา et al . ,
2008a ) การประเมินคุณภาพทางโภชนาการเมล็ดได้ด้วย 3
ซ้ำ 20 เมล็ดในการเก็บเกี่ยว ปริมาณโปรตีนที่สกัดได้จากเมล็ดและ
) กำหนดโดย 7.4 กับเหล่านี้น่าจะเป็น g250 สีฟ้าสดใส ( Li , 2000 ) ความเข้มข้นของ
น้ำตาลที่ละลายน้ำได้ทั้งหมดถูกกำหนดโดยวิธีกรด
3,5-dinitrosalicylic ( เจียง , 1999 ) มาลอนไดอัลดีไฮด์ ( MDA ) สมาธิตั้งใจ
โดยใช้กรดเท่ากับ ( TBA ) ปฏิกิริยาตามที่อธิบายไว้โดย
Zhang et al . ( 2007 ) สั้น ๆ , 0.3 กรัมน้ำหนักสด ( FW ) ของเมล็ดข้าวโพด
แต่ละซ้ำจำนวน 14 , 18 , 22 , 26 , 30 ,
34 , 38 และ 42 วัน หลังการผสมเกสร และบด 3 ml
5 % กรดไตรคลอโรอะซิติก ( TCA ) โดยแยกเป็นระดับที่ 3600 กรัมต่อ 10 นาที 2 มิลลิลิตรมีค่า 0.67 % เพิ่ม 2 ml ของน่าน . ส่วนผสมจะถูกความร้อนที่ 100 8C เป็นเวลา 30 นาที เย็นที่อุณหภูมิห้อง แล้วที่ระดับ 1 , 800 กรัม เป็นเวลา 5 นาที ความหนาแน่นของแสงสูง
เป็นวัดที่ 450 นาโนเมตร 532 nm และ 600 นาโนเมตร การออกซิเดชั่น
ความเข้มข้นที่คำนวณตามตามสูตรเคมี : C ( mmol L1 ) = 6.45 ( a532 a600 ) 0.56a450 แล้ว ( สมาธิ ( nmol G1 FW ) คือค่า
อิเล็กโทรไลต์เยื่อซึมรั่วเป็นวัดถูกกำหนดตามวิธีการของ Liu et al . ( 2543 ) . เมล็ดสดที่ถูกตัดเป็นส่วน ประมาณ 5 มิลลิเมตร ตามลำดับ แต่ละเนื้อเยื่อ ( 02 g FW ) ลงในหลอดทดลองที่มี 10 น้ำคล้ายเนื้อเยื่อประสาน ml และปกคลุมด้วยปลั๊ก หลังจากบ่มที่อุณหภูมิ 25 8C 6 H , อิเล็กโทรไลต์การรั่วไหลของเนื้อเยื่อถูกวัดโดยใช้เครื่องวัดค่า (
dds-11a ทำในเซี่ยงไฮ้ , จีน ) , กันชื่อ E1 ต่อมาหลอดทดลองที่ถูกเก็บไว้ในน้ำที่
100 8C สำหรับ 30 นาทีแล้วเย็น 25 8C ,
อิเล็กโทรไลต์วินาทีการรั่วไหลถูกวัดเป็น E2 . การรั่วซึมของน้ำอิเล็กโทรไลต์คล้ายเนื้อเยื่อประสาน
ชื่อ E0 . การรั่วไหลของอิเล็กโทรไลต์แบบสัมพัทธ์ ( rel ) คำนวณได้ดังนี้
¼ rel E0
E2 E1 E0
p
100 %
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- If i had more money i will comeback Isan
- 2. Materials and methods2.1. Experiment
- กรรมการ
- I hasn't arrived yet.
- black and female children are likely to
- ฉันเป็นกำลังใจให้คุณ
- Bright
- wh-what? my belly is...it's twitching...
- ชีวิตยังคงดำเนินต่อไป
- มันสนุกและตื่นเต้นมากตั้งแต่ตอนแรก
- เงิน
- เครื่องจักร
- เขามีความรัยผิดชอยในการทำการบ้าน
- I did not reach
- bamboo
- ฉันจะเป็นกำลังใจให้คุณ
- ฉันเป็นคนเงียบๆ
- เธอได้นำศพของไมเคิลไปทำเป็นอาหาร
- คุณทำงานเป็นอย่างไรบ้างค่ะ
- นึกว่าคุณไม่สบาย
- I would like to take sick leave today .
- มาเที่ยวบ้านฉันสิ
- คุณมีรูปภาพของครอบครัวไหม
- I'm self employed
