3.4.2. Gas consumption and product

3.4.2. Gas consumption and product profiles
Acetic acid and ethanol production with mixed culture TERI SA1 was observed during the acidogenic and solventogenic phases respectively. Acetic acid concentration increased in the first 72 h and further increased till 192 h (Fig. 4b). Acetic acid formation by mixed culture TERI SA1 was growth related, which resulted a decrease in the pH of the fermentation medium (Fig. 4b). The maximum acetic acid concentration was 1.9 g L_1 at 192 h. After the concentration of acetic acid reached a maximum, mixed culture TERI SA1 started to consume it. About 8.4% of the acetic acid was consumed between 192 and 216 h (Fig. 4b). The ethanol production was observed during exponential phase which decreased after the stationary phase. The slight increase in ethanol production was observed during stationary phase when the pH was around 4.7 after 120 h (Fig. 4a and b). Ethanol formation by mixed culture TERI SA1 in 1L reactor bottle fermentation was growth as well as nongrowth associated depending on the actual syngas pressure in the reactor bottle headspace. The syngas pressure during 1 L reactor bottles fermentation study was maintained at 1.0 kg cm_2 because 1 L reactor bottle could not tolerate high syngas pressure of 2 kg cm_2. It was reported that ethanol production by C. carboxidivorans P7 was non-growth related when the partial pressure of CO in the headspace was below 106 kPa (Hurst and Lewis, 2010).
However, ethanol formation was growth associated with C. carboxidivorans P7 when the partial pressure of CO in the headspace was above 106 kPa. In the present study, the rate of ethanol production was high in the exponential phase and decreased with time especially with the increase in cell biomass concentration. After 216 h
of fermentation, ethanol in 1 L reactor bottle was 2.0 g L_1 (Fig. 4b). Both CO and H2 were utilized by mixed culture TERI SA1 for growth, acetic acid and ethanol production. The total moles of CO and H2 consumed by mixed culture TERI SA1 during syngas fermentation is shown in Fig. 4b. About 28% and 3% of the total
CO and H2 moles were consumed by mixed culture TERI SA1 during the first 144 h of fermentation for mostly growth and acetic acid production respectively. In the acetyl-CoA pathway, both H2 and CO serve as an energy and electron source for cell growth and product formation (Ragsdale, 2004). Significant amounts of carbon
from CO can be converted to cell biomass and ethanol if H2 is utilized as an electron source. In contrast, high concentration of CO was found to inhibit hydrogenase enzyme and thus reduce the
uptake of H2 in non-CO fermenting organisms (Bennett et al., 2000). This could explain the decrease in H2 consumption during the stationary phase with mixed culture TERI SA1 (Fig. 4b). Trends in CO consumption profile were similar to ethanol profiles (Fig. 4b). Ethanol production started after 24 h of the fermentation. For ethanol production and cell maintenance between 24 and 216 h, approximately 34% and 2% of the total moles of CO were consumed by mixed culture TERI SA1 respectively. This shows that most of the CO consumed by mixed culture TERI SA1 was utilized for ethanol production. The detailed comparison for ethanol yield of
mixed culture TERI SA1 with different syngas fermenting strains reported from mesophilic origin is also provided in Table 1.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3.4.2 โพรไฟล์การใช้และผลิตภัณฑ์ก๊าซกรดอะซิติกและเอทานอลผลิต ด้วยผสม TERI SA1 ถูกสังเกตช่วงระยะ acidogenic และ solventogenic ตามลำดับ กรดอะซิติกเข้มข้นเพิ่มขึ้นใน h 72 แรก และเพิ่มขึ้นต่อไป จนถึง 192 h (Fig. 4b) ก่อตัวของกรดน้ำส้ม โดยผสม TERI SA1 ได้เจริญเติบโตที่เกี่ยวข้อง ซึ่งมีผลลดลงค่า pH กลางการหมัก (Fig. 4b) ความเข้มข้นกรดอะซิติกสูงสุด 1.9 g L_1 ที่ 192 h ได้ หลังจากที่ความเข้มข้นของกรดน้ำส้มถึงสูงสุด วัฒนธรรมผสม TERI SA1 เริ่มใช้มัน ประมาณ 8.4% ของกรดน้ำส้มที่ใช้ระหว่าง 192 และ 216 h (Fig. 4b) การผลิตเอทานอลถูกสังเกตระยะเนนซึ่งลดลงจากระยะเครื่องเขียน เพิ่มขึ้นเล็กน้อยในการผลิตเอทานอลถูกสังเกตระยะเครื่องเขียนเมื่อ pH ประมาณ 4.7 หลัง 120 h (Fig. 4a และ b) ผู้แต่งเอทานอล โดยผสม TERI SA1 ใน 1L เครื่องปฏิกรณ์ขวดหมักได้เติบโตเป็น nongrowth ที่เกี่ยวข้องตามความดันจริง syngas ใน headspace ขวดเครื่องปฏิกรณ์ ดัน syngas ในระหว่างศึกษา 1 L เครื่องปฏิกรณ์ขวดหมักถูกรักษาที่ cm_2 1.0 กิโลกรัมเนื่องจาก 1 L ขวดเครื่องปฏิกรณ์สามารถทน syngas สูงแรงกดดันของ cm_2 2 กิโลกรัม มีรายงานว่า ผลิตเอทานอล โดย C. carboxidivorans P7 คือ ไม่ใช่เจริญเติบโตที่เกี่ยวข้องเมื่อความดันบางส่วนของ CO ใน headspace ด้านล่าง 106 kPa (Hurst และลูอิส 2010)อย่างไรก็ตาม ผู้แต่งเอทานอลได้เจริญเติบโตที่เกี่ยวข้องกับซี carboxidivorans P7 เมื่อความดันบางส่วนของ CO ใน headspace ที่เหนือ 106 kPa ในการศึกษาปัจจุบัน อัตราการผลิตเอทานอลสูงระยะเนน และลดลงกับเวลาโดยเฉพาะอย่างยิ่งกับการเพิ่มขึ้นของความเข้มข้นของชีวมวลเซลล์ หลังจาก 216 hของหมักดอง เอทานอล 1 L ขวดเครื่องปฏิกรณ์ถูก 2.0 g L_1 (Fig. 4b) CO และ H2 ถูกใช้ โดย TERI SA1 วัฒนธรรมผสมสำหรับผลิตเอทานอล และกรดอะซิติก เติบโต โมลรวมของ CO และ H2 ที่ใช้ผสม TERI SA1 ในระหว่างหมัก syngas จะแสดงใน Fig. 4b ประมาณ 28% และ 3% ของยอดรวมโมลของ CO และ H2 มีการบริโภค โดยผสมวัฒนธรรม TERI SA1 ระหว่าง h 144 ครั้งแรกของการหมักส่วนใหญ่ผลิตเจริญเติบโตและกรดอะซิติกตามลำดับ ในทางเดินของ acetyl-CoA ทั้ง H2 และ CO ให้เป็นพลังงานและอิเล็กตรอนในเซลล์กำเนิดเติบโตและผลิตภัณฑ์ (Ragsdale, 2004) จำนวนคาร์บอนที่สำคัญสามารถสามารถแปลงจาก CO ไปยังเซลล์ถ้า H2 จะใช้อิเล็กตรอนเป็นชีวมวลและเอทานอล คมชัด ความเข้มข้นสูงของ CO พบยับยั้งเอนไซม์ hydrogenase และช่วยลดการดูดซับของ H2 ในสิ่งมีชีวิต-CO fermenting (เบนเนตและ al., 2000) นี้จะอธิบายการลดลงของปริมาณการใช้ H2 กับระยะกับวัฒนธรรมผสม TERI SA1 (Fig. 4b) แนวโน้มในส่วนกำหนดค่าของปริมาณ CO คล้ายคลึงกับเอทานอลโพรไฟล์ (Fig. 4b) เริ่มผลิตเอทานอลหลังจาก 24 ชมของการหมัก สำหรับผลิตเอทานอลและบำรุงรักษาเซลล์ระหว่าง 24 และ 216 h ประมาณ 34% และ 2% ของโมลรวมของบริษัทมีการบริโภค โดยผสมวัฒนธรรม TERI SA1 ตามลำดับ นี้แสดงว่า ส่วนใหญ่ของบริษัทที่ใช้วัฒนธรรมผสม TERI SA1 ถูกใช้สำหรับการผลิตเอทานอล การเปรียบเทียบโดยละเอียดสำหรับผลผลิตเอทานอลของผสม TERI SA1 มีรายงานจาก mesophilic กำเนิดสายพันธุ์ fermenting syngas อื่นยังไว้ในตารางที่ 1

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

3.4.2 ปริมาณการใช้ก๊าซและรูปแบบผลิตภัณฑ์
กรดอะซิติกและการผลิตเอทานอลผสมกับวัฒนธรรม TERI SA1 เป็นข้อสังเกตในระหว่างขั้นตอน acidogenic และ solventogenic ตามลำดับ ความเข้มข้นของกรดอะซิติกที่เพิ่มขึ้นเป็นครั้งแรกใน 72 ชั่วโมงและเพิ่มขึ้นอีกจนถึง 192 ชั่วโมง (รูป. 4b) การสร้างกรดอะซิติกจากวัฒนธรรมผสม TERI SA1 ได้รับการเจริญเติบโตที่เกี่ยวข้องซึ่งส่งผลให้การลดลงของค่า pH ของกลางหมัก (รูป. 4b) ความเข้มข้นของกรดอะซิติกสูงสุด 1.9 กรัม L_1 ที่ 192 ชั่วโมง หลังจากที่ความเข้มข้นของกรดอะซิติกสูงสุดวัฒนธรรมผสม TERI SA1 เริ่มที่จะกินมัน เกี่ยวกับ 8.4% ของกรดอะซิติกถูกครอบงำระหว่าง 192 และ 216 ชั่วโมง (รูป. 4b) การผลิตเอทานอลถูกพบในช่วงการชี้แจงที่ลดลงหลังจากที่เฟส เพิ่มขึ้นเล็กน้อยในการผลิตเอทานอลเป็นที่สังเกตในช่วงนิ่งเมื่อค่า pH อยู่ที่ประมาณ 4.7 หลังจาก 120 ชั่วโมง (รูป. 4a และข) การพัฒนาเอทานอลจากวัฒนธรรมผสม TERI SA1 ในการหมักขวด 1 ลิตรเป็นเครื่องปฏิกรณ์การเจริญเติบโตเช่นเดียวกับ nongrowth ที่เกี่ยวข้องขึ้นอยู่กับความดัน syngas เกิดขึ้นจริงในขวดเครื่องปฏิกรณ์ Headspace ความดัน syngas ในช่วง 1 ลิตรขวดเครื่องปฏิกรณ์ก็ยังคงศึกษาการหมักที่ 1.0 กก. cm_2 เพราะ 1 ขวด L เครื่องปฏิกรณ์ไม่สามารถทนต่อแรงดันสูงของ syngas 2 กก cm_2 มีรายงานว่าการผลิตเอทานอลโดยค carboxidivorans P7 ไม่ใช่การเจริญเติบโตที่เกี่ยวข้องเมื่อความดันบางส่วนร่วมในช่องว่างเหนือของเหลวต่ำกว่า 106 กิโลปาสคาล (เฮิร์สต์และลูอิส, 2010).
อย่างไรก็ตามการก่อเอทานอลได้รับการเจริญเติบโตที่เกี่ยวข้องกับซี carboxidivorans P7 เมื่อ ความดันบางส่วนร่วมในช่องว่างเหนือของเหลวอยู่เหนือ 106 kPa ในการศึกษาปัจจุบันอัตราการผลิตเอทานอลอยู่ในระดับสูงในช่วงการชี้แจงและลดลงตามระยะเวลาโดยเฉพาะอย่างยิ่งกับการเพิ่มความเข้มข้นของชีวมวลเซลล์ หลังจาก 216 ชั่วโมง
ของการหมักเอทานอลในขวด 1 ลิตรเป็นเครื่องปฏิกรณ์ 2.0 กรัม L_1 (รูป. 4b) ทั้ง CO และ H2 ถูกนำมาใช้โดยจุลินทรีย์ผสม TERI SA1 สำหรับการเจริญเติบโตกรดอะซิติกและการผลิตเอทานอล ไฝรวมของ CO และ H2 บริโภคโดยจุลินทรีย์ผสม TERI SA1 ระหว่างการหมัก syngas แสดงในรูป 4b ประมาณ 28% และ 3% ของทั้งหมด
CO และ H2 ตุ่นถูกบริโภคโดยจุลินทรีย์ผสม TERI SA1 ในช่วงแรก 144 ชั่วโมงของการหมักสำหรับการเจริญเติบโตเป็นส่วนใหญ่และการผลิตกรดอะซิติกตามลำดับ ในทางเดิน acetyl-CoA ทั้ง H2 CO และทำหน้าที่เป็นแหล่งพลังงานและอิเล็กตรอนสำหรับการเจริญเติบโตของเซลล์และการก่อตัวของผลิตภัณฑ์ (Ragsdale, 2004) จำนวนเงินที่สำคัญของคาร์บอน
จาก CO สามารถแปลงเป็นเซลล์ชีวมวลและเอทานอลถ้า H2 ถูกนำมาใช้เป็นแหล่งที่มาของอิเล็กตรอน ในทางตรงกันข้ามความเข้มข้นสูงของ CO ถูกพบในการยับยั้งเอนไซม์ Hydrogenase และทำให้ลด
การดูดซึมของ H2 ไม่ใช่ CO หมักมีชีวิต (เบนเน็ตต์, et al., 2000) นี้สามารถอธิบายได้ว่าการลดลงของการบริโภค H2 ระหว่างเฟสกับวัฒนธรรมผสม TERI SA1 (รูป. 4b) แนวโน้มในรายละเอียดการบริโภค CO มีความคล้ายคลึงกับรูปแบบเอทานอล (รูป. 4b) การผลิตเอทานอลเริ่มต้นหลังจาก 24 ชั่วโมงของการหมัก สำหรับการผลิตเอทานอลและการบำรุงรักษาเซลล์ระหว่าง 24 และ 216 ชั่วโมงประมาณ 34% และ 2% ของไฝรวมของ CO ถูกบริโภคโดยจุลินทรีย์ผสม TERI SA1 ตามลำดับ นี้แสดงให้เห็นว่าส่วนใหญ่ของ CO บริโภคโดยจุลินทรีย์ผสม TERI SA1 ถูกนำมาใช้ในการผลิตเอทานอล เปรียบเทียบรายละเอียดสำหรับผลผลิตเอทานอลของ
วัฒนธรรมผสม TERI SA1 กับสายพันธุ์ที่แตกต่างกัน syngas หมักได้รับรายงานจากแหล่งกำเนิดอุณหภูมิปานกลางนอกจากนี้ยังมีในตารางที่ 1

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

3.4.2 . การใช้แก๊สและโปรไฟล์
ผลิตภัณฑ์กรดการผลิตเอทานอลกับวัฒนธรรมผสม sa1 เทรี่พบในระหว่างขั้นตอนและกากสับปะรด solventogenic ตามลำดับ เพิ่มความเข้มข้นของกรดอะซิติกใน 72 ชั่วโมงแรก และสูงขึ้นถึง 192 ชั่วโมง ( รูปที่ 4B ) การสร้างกรดโดยวัฒนธรรมผสมเทรี่ sa1 คือการเจริญเติบโตที่เกี่ยวข้องซึ่งเป็นผลทำให้ pH ของอาหารเลี้ยงเชื้อชนิด ( ภาพ 4B ) สูงสุดที่ความเข้มข้นของกรดอะซิติกเป็น l_1 1.9 กรัมที่ 192 ชั่วโมง หลังจากปริมาณกรดน้ำส้มถึงสูงสุด วัฒนธรรมผสมเทรี่ sa1 เริ่มที่จะกินมัน ประมาณ 8.4% ของกรดอะซิติกถูกบริโภคระหว่าง 192 และ 216 H ( ภาพ 4B )การผลิต เอทานอลพบว่าในช่วง ระยะ exponential ซึ่งลดลงหลังจากเฟสอยู่กับที่ เพิ่มขึ้นเล็กน้อยในการผลิตเอทานอล พบว่าในช่วงระยะ stationary เมื่อพีเอชอยู่ที่ประมาณ 4.7 หลัง 120 H ( รูปที่ 4 และ B )การสร้างวัฒนธรรมที่ผสมเอทานอลโดย Teri sa1 ในขวดหมัก 1 ลิตรเป็นเครื่องปฏิกรณ์การเจริญเติบโตเช่นเดียวกับ nongrowth เกี่ยวข้องขึ้นอยู่กับแรงดันแก๊สในถังจริงขวดเฮดสเปซ . ส่วนแก๊สความดันในเครื่องปฏิกรณ์หมัก 1 ขวดลิตร ศึกษาไว้ที่ 1.0 กิโลกรัม cm_2 เพราะขวดถังที่ 1 ผมไม่สามารถทนแรงดันของแก๊สสูง 2 กิโลกรัม cm_2 .มีรายงานว่า การผลิตเอทานอลโดย carboxidivorans p7 ถูกไม่การเจริญเติบโตที่เกี่ยวข้องเมื่อความดันบางส่วนของ CO ในเฮดสเปซต่ำกว่า 106 กิโลปาสคาล ( เฮิรสท์ กับ ลูอิส , 2010 ) .
แต่การพัฒนาเอทานอลคือการเจริญเติบโตที่เกี่ยวข้องกับ C carboxidivorans p7 เมื่อความดันบางส่วนของ CO ในเฮดสเปซอยู่เหนือ 106 กิโลปาสคาล . ในการศึกษาครั้งนี้อัตราการผลิตเอทานอลได้สูงในระยะ exponential และลดลงกับเวลา โดยเฉพาะ ด้วยการเพิ่มจำนวนเซลล์ความเข้มข้น หลังจาก 216 H
การหมักเอทานอลในเครื่องปฏิกรณ์ที่ 1 ขวดลิตร 2.0 G l_1 ( ภาพ 4B ) ทั้ง CO และ H2 ถูกใช้โดยวัฒนธรรมผสมเทรี่ sa1 การเจริญเติบโต , กรดอะซิติกและการผลิตเอทานอลไฝทั้งหมดของ Co และ H2 บริโภคโดยวัฒนธรรมผสมระหว่างแก๊ส sa1 เทรี่หมักที่แสดงในรูปที่ 4B ประมาณ 28 % และ 3 % ของทั้งหมด
Co และ H2 ไฝบริโภคโดยวัฒนธรรมผสมเทรี่ sa1 ช่วงแรก 144 H ของหมักดอง ส่วนใหญ่การเจริญและการผลิตกรดตามลำดับ ในความหมาย COA ทางเดิน ,2 H2 และ Co เป็นพลังงานและแหล่งอิเล็กตรอนสำหรับการเจริญเติบโตของเซลล์และผลิตภัณฑ์รูปแบบ ( Ragsdale , 2004 ) ที่สำคัญปริมาณคาร์บอน
จาก CO สามารถแปลงเป็นชีวมวลและเอทานอล ถ้าเซลล์ H2 ถูกใช้เป็นอิเล็กตรอนแหล่ง ในทางตรงกันข้าม , ปริมาณของ CO พบยับยั้งเอนไซม์ไฮโดรจีเนส ซึ่งช่วยลดการดูดซึมของ H2
ไม่ Co หมักสิ่งมีชีวิต ( Bennett et al . ,2000 ) สามารถอธิบายการลดลงของการบริโภค H2 ในช่วง stationary phase กับวัฒนธรรมผสม sa1 เทรี่ ( รูปที่ 4B ) แนวโน้มการบริโภคในโปรไฟล์ Co มีความคล้ายคลึงกับโปรไฟล์เอทานอล ( ภาพ 4B ) การผลิตเอทานอลเริ่มหลังจากชั่วโมงที่ 24 ของการหมัก เพื่อการผลิตเอทานอลและการบำรุงรักษาเซลล์ระหว่าง 24 และ 216 ชั่วโมงประมาณ 34% และ 2% ของโมลรวม Co ถูกบริโภคโดยวัฒนธรรมผสมเทรี่ sa1 ตามลำดับ นี้แสดงให้เห็นว่าส่วนใหญ่ของ บริษัท ถูกวัฒนธรรมผสม sa1 เทรี่ใช้สำหรับการผลิตเอทานอล การเปรียบเทียบผลผลิตของวัฒนธรรมของเอทานอลที่ผสมกับเทอรี่ sa1
ต่างสายพันธุ์และมีที่มาจากการหมักแก๊สรายงานยังให้ตารางที่ 1 .