Materials and methods
Microalgae culture
Two microalgal species of C. calcitrans (6^9 mm
cell1, 1.313 104 mg dry weight cell1) and
T. tetrathele (10^16 mmcell1, 1.566 104 mgdry
weight cell1) (Table 1) were cultured in a 10 L capacity
container at 29 1 1C, salinity 30 g L1, a
12 h:12 h light:dark cycle and 40 mmolphotons
m2 s1 light intensity. Continuous aeration was
provided throughout the culture period. Algae were
cultured in Conway medium according to Tompkins,
DeVille, Day and Turner (1995). Dry weights of microalgal
cells were determined by ¢ltering and drying algae
from aliquots of culture of known concentration
according to the method described by Lavens and
Sorgeloos (1996). The microalgal cells were counted
after the samples were ¢xed in Lugol’s iodine solution
(0.1mL for 3mL sample) using an improved Neubauer
haemocytometer (0.25mm2 0.1mm) under a
phase-contrast microscope (Nikon/Eclipse 600,
Nikon, Kawasaki, Kanagawa, Japan) according to
Martinez and Chakro¡ (1975). When the microalgae
growth reached the stationary phase, algae cells
were harvested by a laboratory centrifuge Sigma 4-15
(Montreal Biotech, Dorval, Canada) (252 g) using
250mL bottles for 10min. The microalgal cells were
chilled to 4 1C and stored for 2 days before being used
as food for A. dengizicus. The mixed-microalgal diet
(CT) was prepared with an equal ration (by number).
Weekly algal preparation using the best algal growth
phase appeared to be very suitable for copepod
growth.
Materials and methodsMicroalgae cultureTwo microalgal species of C. calcitrans (6^9 mmcell1, 1.313 104 mg dry weight cell1) andT. tetrathele (10^16 mmcell1, 1.566 104 mgdryweight cell1) (Table 1) were cultured in a 10 L capacitycontainer at 29 1 1C, salinity 30 g L1, a12 h:12 h light:dark cycle and 40 mmolphotonsm2 s1 light intensity. Continuous aeration wasprovided throughout the culture period. Algae werecultured in Conway medium according to Tompkins,DeVille, Day and Turner (1995). Dry weights of microalgalcells were determined by ¢ltering and drying algaefrom aliquots of culture of known concentrationaccording to the method described by Lavens andSorgeloos (1996). The microalgal cells were countedafter the samples were ¢xed in Lugol’s iodine solution(0.1mL for 3mL sample) using an improved Neubauerhaemocytometer (0.25mm2 0.1mm) under aphase-contrast microscope (Nikon/Eclipse 600,Nikon, Kawasaki, Kanagawa, Japan) according toMartinez and Chakro¡ (1975). When the microalgaegrowth reached the stationary phase, algae cellswere harvested by a laboratory centrifuge Sigma 4-15(Montreal Biotech, Dorval, Canada) (252 g) using250mL bottles for 10min. The microalgal cells werechilled to 4 1C and stored for 2 days before being usedas food for A. dengizicus. The mixed-microalgal diet(CT) was prepared with an equal ration (by number).Weekly algal preparation using the best algal growthphase appeared to be very suitable for copepodgrowth.
การแปล กรุณารอสักครู่..

วัสดุและวิธีการ
เลี้ยงสาหร่ายวัฒนธรรม
สองสายพันธุ์สาหร่ายซี calcitrans (6 ^ 9 มม
มือถือ? 1, 1.313? 10? 4 มิลลิกรัมน้ำหนักเซลล์แห้ง 1) และ
T. tetrathele (10 ^ 16 mmcell? 1, 1.566? 10? 4 mgdry
เซลล์น้ำหนัก? 1) (ตารางที่ 1) เป็นที่เลี้ยงในความจุ 10 ลิตร
ภาชนะที่ 29? 1 1C ความเค็ม 30 กรัม L 1?
12 ชั่วโมง: 12 ชั่วโมงแสง: วงจรมืดและ 40 mmolphotons
? ม. 2 วินาที 1 ความเข้มของแสง? อากาศอย่างต่อเนื่องได้รับการ
จัดให้ตลอดระยะเวลาการเลี้ยง สาหร่ายที่
เพาะเลี้ยงในอาหารตามคอนเวย์ทอมป์กินส์
DeVille วันและเทอร์เนอ (1995) น้ำหนักแห้งของสาหร่าย
เซลล์ได้รับการพิจารณาโดย¢ ltering และสาหร่ายอบแห้ง
จากส่วนลงตัวของวัฒนธรรมของความเข้มข้นที่รู้จักกัน
ตามวิธีการอธิบายโดย Lavens และ
Sorgeloos (1996) เซลล์สาหร่ายนับ
หลังจากที่กลุ่มตัวอย่างเป็น¢คงที่ในสารละลายไอโอดีนของ Lugol
(0.1ml ตัวอย่าง 3 mL) โดยใช้การปรับปรุง Neubauer
สไลด์นับเม็ดเลือด (0.25mm2? 0.1mm) ภายใต้
กล้องจุลทรรศน์เฟสตรงกันข้าม (Nikon / Eclipse 600,
Nikon, คาวาซากิ คานากาว่า, ญี่ปุ่น) ตามที่
มาร์ติเนและChakro¡ (1975) เมื่อสาหร่าย
เจริญเติบโตถึงเฟสเซลล์สาหร่าย
ถูกเก็บเกี่ยวโดย centrifuge ห้องปฏิบัติการ Sigma 4-15
(มอนทรีออไบโอเทค, ดอร์, แคนาดา) (252 กรัม) โดยใช้
ขวด 250mL สำหรับ 10 นาที เซลล์สาหร่ายถูก
แช่เย็นถึง 4 1C และเก็บไว้เป็นเวลา 2 วันก่อนที่จะถูกนำมาใช้
เป็นอาหารสำหรับ dengizicus A. อาหารผสมสาหร่าย
(CT) ได้รับการจัดทำขึ้นด้วยสัดส่วนที่เท่ากัน (โดยตัวเลข).
รายสัปดาห์เตรียมสาหร่ายโดยใช้การเจริญเติบโตของสาหร่ายที่ดีที่สุด
ในช่วงที่ดูเหมือนจะเป็นมากเหมาะสำหรับ copepod
การเจริญเติบโต
การแปล กรุณารอสักครู่..

วัสดุและวิธีการเพาะเลี้ยงสาหร่ายสาหร่าย
สองชนิดของ C . calcitrans ( 6
9 mm
เซลล์ 1 , 1.313 10 4 มิลลิกรัมน้ำหนักแห้งเซลล์ 1 ) และ ต. tetrathele ( 10
16 mmcell 1 , 1.566 10 4 mgdry
น้ำหนักเซลล์ 1 ) ( ตารางที่ 1 ) ได้แก่ ที่เพาะเลี้ยงในภาชนะความจุ 10 ลิตร
ที่ 29 1 1C ความเค็ม 30 กรัมต่อลิตร 1 ,
12 H : 12 H แสง : วงจรมืดและ 40 mmolphotons
M 2 s 1 แสงความเข้ม การเติมอากาศอย่างต่อเนื่องคือ
ให้ ตลอดระยะเวลาการเลี้ยง การเพาะเลี้ยงสาหร่ายได้
ในคอนเวย์กลางตามทอมป์กินส์
deville , วันและเทอร์เนอร์ ( 1995 ) น้ำหนักแห้งของสาหร่ายเซลล์ถูกกำหนดโดย¢
ltering และการอบแห้งสาหร่ายจากเฉยๆของวัฒนธรรมที่ทราบความเข้มข้น
ตามวิธีการที่อธิบายโดย lavens และ
sorgeloos ( 1996 ) เซลล์สาหร่ายถูกนับ
หลังจากจำนวน¢ xed lugol ของไอโอดีนในสารละลาย
( ม. 0.1ml สำหรับตัวอย่าง ) โดยใช้การปรับปรุงนูเบาเออร์
haemocytometer ( 0.25mm2 0.1mm ) ภายใต้
สำปั้นกล้องจุลทรรศน์ ( Nikon / คราส 600
Nikon , คาวาซากิ , คานากาว่า , ญี่ปุ่น ) ตาม
มาติเนส กับ chakro ¡ ( 1975 ) เมื่อสาหร่าย
การเจริญเติบโตถึงเฟสอยู่กับที่ สาหร่ายเซลล์
ถูกเก็บเกี่ยวโดยห้องปฏิบัติการ Sigma
4-19( ทรีลชีวภาพ Dorval แคนาดา ) ( 252 กรัม ) โดยใช้
ขวด 250ml สำหรับวัน เซลล์สาหร่ายเย็นถูก
4 c และเก็บไว้เป็นเวลา 2 วัน ก่อนจะถูกใช้เป็นอาหารสำหรับ dengizicus
. . .
อาหารผสมสาหร่าย ( CT ) ถูกเตรียมด้วยการปันส่วนเท่ากัน ( จำนวน ) .
เตรียมสาหร่ายรายสัปดาห์โดยใช้ขั้นตอนการเจริญเติบโต
สาหร่ายที่ดีที่สุดดูเหมือนจะเหมาะมากสำหรับการเจริญเติบโตของสัตว์
การแปล กรุณารอสักครู่..
