2.2.2. Physiological loss in weight
The green chillies were weighed initially and at weekly
intervals during storage. The results were expressed as g/
100 g of sample.
2.2.3. Firmness
Firmness of the fruits was measured using a texture analyzer
(TAHDi, Stable Microsystems, Godalming, UK) loaded with
Texture Expert software (Version 1.22; Stable Microsystems,
Godalming, UK) and 25 kg load cell. The firmness was
measured (n = 3) by cutting the chillies exactly atthe geometric
centre with a Warner-Bratzler Blade at a test speed of
(0.05 cm s1
) with automatic return. The pre-test and posttest
speeds were set at (0.2 cm s1
).
2.2.4. Colour values
The CIE colour values (L*, a*, b*) were measured using D-65
illuminant and 108 observer. The equipment (Mini Scan XE
Plus, Model No. 45/0-S, Hunter Associates Laboratory, Inc.,
Reston, VA, USA) was calibrated using white and black
standard ceramic tiles and the readings were recorded with
inbuilt software (Easy Match QC, Hunter Associates Laboratory,
Inc., Reston, VA, USA).
2.2.5. Chlorophyll
Chlorophyll content in chillies was measured following the
method reported by (Ranganna, 1999). Ten grams sample was
taken and extracted with acetone in a blender. The extraction
2 f o o d p a c k a g i n g a n d s h e l f l i f e 4 ( 2 0 1 5 ) 1 – 9
was repeated with acetone till the residue was colourless. The
filtered contents were taken in a separating funnel along with
50 ml of diethyl ether. Water was added 5–10 times to remove
the acetone layer until the ether layer is free of acetone. The
ether extract was transferred to a 100 ml volumetric flask and
made up the volume with ether. Anhydrous Na2SO4 was added
to remove the traces of moisture. The OD (optical density) was
measured using spectrophotometer (Shimadzu 1609, Tokyo,
Japan) at 660 and 642.5 nm. The total chlorophyll was
2.2.2. Physiological loss in weightThe green chillies were weighed initially and at weeklyintervals during storage. The results were expressed as g/100 g of sample.2.2.3. FirmnessFirmness of the fruits was measured using a texture analyzer(TAHDi, Stable Microsystems, Godalming, UK) loaded withTexture Expert software (Version 1.22; Stable Microsystems,Godalming, UK) and 25 kg load cell. The firmness wasmeasured (n = 3) by cutting the chillies exactly atthe geometriccentre with a Warner-Bratzler Blade at a test speed of(0.05 cm s1) with automatic return. The pre-test and posttestspeeds were set at (0.2 cm s1).2.2.4. Colour valuesThe CIE colour values (L*, a*, b*) were measured using D-65illuminant and 108 observer. The equipment (Mini Scan XEPlus, Model No. 45/0-S, Hunter Associates Laboratory, Inc.,Reston, VA, USA) was calibrated using white and blackstandard ceramic tiles and the readings were recorded withinbuilt software (Easy Match QC, Hunter Associates Laboratory,Inc., Reston, VA, USA).2.2.5. ChlorophyllChlorophyll content in chillies was measured following themethod reported by (Ranganna, 1999). Ten grams sample wastaken and extracted with acetone in a blender. The extraction2 f o o d p a c k a g i n g a n d s h e l f l i f e 4 ( 2 0 1 5 ) 1 – 9was repeated with acetone till the residue was colourless. Thefiltered contents were taken in a separating funnel along with50 ml of diethyl ether. Water was added 5–10 times to removethe acetone layer until the ether layer is free of acetone. Theether extract was transferred to a 100 ml volumetric flask andmade up the volume with ether. Anhydrous Na2SO4 was addedto remove the traces of moisture. The OD (optical density) wasmeasured using spectrophotometer (Shimadzu 1609, Tokyo,Japan) at 660 and 642.5 nm. The total chlorophyll was
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.2.2 การสูญเสียทางสรีรวิทยาน้ำหนักพริกสีเขียวได้รับการชั่งน้ำหนักครั้งแรกรายสัปดาห์และในช่วงเวลาระหว่างการเก็บรักษา ผลการวิจัยแสดงเป็นกรัม / 100 กรัมของตัวอย่าง. 2.2.3 ความแน่นกระชับของผลไม้ที่ถูกวัดโดยใช้การวิเคราะห์พื้นผิว(TAHDi มั่นคง Microsystems, Godalming สหราชอาณาจักร) เต็มไปด้วยเนื้อซอฟแวร์ผู้เชี่ยวชาญ(เวอร์ชั่น 1.22; Microsystems เสถียรภาพGodalming สหราชอาณาจักร) และโหลดเซลล์ 25 กิโลกรัม แน่นถูกวัด (n = 3) โดยการตัดพริกว่า atthe เรขาคณิตศูนย์ที่มีใบมีดวอร์เนอร์ Bratzler ที่ความเร็วของการทดสอบ (0.05 ซม. s1) กับการกลับมาโดยอัตโนมัติ ก่อนและหลังการทดลองทดสอบความเร็วที่ตั้งอยู่ที่ (0.2 ซม. s1). 2.2.4 ค่าสีค่าสี CIE (L * * * * * * * * A, B *) ได้รับการวัดโดยใช้ D-65 สว่างและสังเกตการณ์ 108 อุปกรณ์ (มินิสแกน XE พลัสเลขที่รุ่น 45/0-S, ฮันเตอร์ห้องปฏิบัติการ Associates, Inc, เรสตัน, VA, USA) ได้รับการสอบเทียบโดยใช้สีขาวและสีดำกระเบื้องเซรามิกที่ได้มาตรฐานและได้รับการอ่านที่บันทึกด้วยซอฟต์แวร์inbuilt (Match ง่าย QC, ฮันเตอร์ห้องปฏิบัติการ Associates, Inc. ซึ่งเรสตัน, VA, USA). 2.2.5 คลอโรฟิลเนื้อหาคลอโรฟิลในพริกวัดดังต่อไปนี้วิธีการรายงานโดย(Ranganna, 1999) ตัวอย่างสิบกรัมถูกนำตัวและสกัดด้วยอะซิโตนในเครื่องปั่น การสกัด2 foodpackagingandshelf ชีวิต 4 (2 0 1 5) 1-9 ซ้ำด้วยอะซิโตนจนสารตกค้างที่เป็นสี เนื้อหากรองถูกถ่ายในช่องทางแยกพร้อมกับ50 มิลลิลิตรอีเทอร์ น้ำถูกบันทึก 5-10 ครั้งเพื่อเอาชั้นอะซีโตนจนถึงชั้นอีเทอร์ที่เป็นอิสระของอะซีโตน สารสกัดจากอีเทอร์ถูกย้ายไปขวดปริมาตร 100 มิลลิลิตรและทำเสียงกับอีเทอร์ รัส Na2SO4 ถูกเพิ่มเข้ามาเพื่อลบร่องรอยของความชื้น OD (ความหนาแน่นแสง) ได้รับการวัดโดยใช้spectrophotometer (Shimadzu 1609 โตเกียวญี่ปุ่น) ที่ 660 และ 642.5 นาโนเมตร คลอโรฟิลรวม
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.2.2 . การสูญเสียน้ำหนักทางสรีรวิทยา
พริกสีเขียวมีน้ำหนักแรก และในช่วงสัปดาห์
ในระหว่างการเก็บรักษา ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็น g /
ตัวอย่าง 100 g .
2.2.3 . ความแน่นเนื้อของผลไม้
การวัดพื้นผิววิเคราะห์
( tahdi มั่นคง นอกจากนี้ โกดอลล์มิ่ง , UK ) เต็มไปด้วย
ซอฟต์แวร์ผู้เชี่ยวชาญเนื้อ ( รุ่น 1.22 ; เสถียรภาพ นอกจากนี้
โกดอลล์มิ่ง , UK ) และ 25 กก. โหลดเซลล์สามารถวัดได้
( n = 2 ) โดยการตัดพริกว่าในศูนย์เรขาคณิต
กับวอร์เนอร์ bratzler ใบมีดที่ทดสอบความเร็วของ
( 0.05 ซม. S1
) กลับอัตโนมัติ แบบทดสอบก่อนและหลังเรียน
ความเร็วตั้งที่ ( 0.2 ซม. S1
)
2.2.4 . ค่าสี CIE
ค่าสี ( L * , a * , b * ) และวัดการใช้ระบบแสงสว่าง d-65
และ 108 ผู้สังเกตการณ์ อุปกรณ์ ( Mini Scan XE
Plus , รุ่นไม่ 0-s 45 / ,ฮันเตอร์ Associates ห้องปฏิบัติการ , Inc . ,
Reston , VA , USA ) คือการปรับขาวดำ
มาตรฐานเซรามิคไพ่และอ่านด้วยเสียง
inbuilt ซอฟต์แวร์ ( QC ราคาง่ายนักล่า Associates ห้องปฏิบัติการ
อิงค์ , Reston , VA , USA )
2.2.5 . คลอโรฟิลล์คลอโรฟิลล์ในพริกได้
วิธีต่อไปนี้ที่รายงานโดย ( ranganna , 1999 ) 10 กรัมจำนวน
ถ่ายและสกัดด้วยอะซีโตนในเครื่องปั่น การสกัด
2 F O O D P A C K g i n g N D S H E L L I F F E 4 2 0 1 5 ) 1 – 9
กันด้วยอะซิโตนจนตกค้างไม่มีสี
กรองเนื้อหาถ่ายในกรวยแยกพร้อมกับ
50 มิลลิลิตร ไดเอทิลอีเทอร์ น้ำเพิ่ม 5 – 10 ครั้งเพื่อลบ
อะซิโตนอีเธอร์ชั้นจนกว่าชั้นจะฟรีของอะซิโตน
สารสกัดอีเทอร์ถูกส่งไป 100 ml ขวดปริมาตรและปริมาณ
ขึ้นด้วยอีเทอร์ รัส na2so4 เพิ่ม
เพื่อลบร่องรอยของความชื้น OD ( ความหนาแน่นของแสง ) คือ
วัดโดยใช้ Spectrophotometer ( Shimadzu ในญี่ปุ่น , โตเกียว ,
) และ 642.5 nm . คลอโรฟิลล์รวม คือ
การแปล กรุณารอสักครู่..