an elasmobranch after short term acclimation to hypersaline waters
(40‰), TMAO concentration did increase with increasing environmental
salinity (Mandrup-Poulsen, 1981). C. punctatum does produce TMAO
(Treberg et al., 2006) and its concentration would also have been
expected to increase in the plasma with increasing environmental
salinity.
The concentrations of plasma Na+ and Cl− increased significantly
with increasing environmental salinity but all treatments remained
hypoionic with the environment. Small, but significant alterations in
the Na+ and Cl− plasma concentration of elasmobranchs are well
documented for both partially euryhaline (Cooper and Morris,
1998; Anderson et al., 2002b; Dowd et al., 2010) and fully euryhaline
elasmobranchs (Piermarini and Evans, 1998; Pillans et al., 2005). As
such, the extent towhich plasmaNa+and Cl−ion concentrations change
responding to alterations in environmental salinity is regarded to be
largely species specific and indicative of that species' osmoregulatory
capacity. Combined with the observed elevation in urea concentration
and tight regulation of K+ ion concentration within the plasma, it is
likely that the observed elevations in Na+ and Cl− ion concentrations
with increasing environmental salinity in C. punctatum are not an
indication of osmoregulatory distress but rather a species specific
response to environmental salt loads.
In this study, significant differences in NKA activity within the rectal
gland tissue with respect to environmental salinity were not apparent,
providing further evidence that the osmotic threshold for the maintenance
of osmotic homeostasis in C. punctatum had not been exceeded.
As environmental salinity increases, maintenance of relatively stable
plasma Na+ and Cl− concentrations despite increases in the environmental
ion concentrations exacerbates the inward ionic gradients, leading to a
significant rise in the passive gain of these ions thereby increasing the
need for active salt secretion by the rectal gland (Burger, 1965). It is
well established that excess Na+ and Cl− ions are removed from the
blood via ionocytes in the rectal gland utilising NKA on their basolateral
membrane as the primary energetic driver (Goertemiller and Ellis,
1976). Therefore, it was expected that rectal gland NKA activity would
increase with increasing environmental salinity as has been observed in
euryhaline species such as the Atlantic stingray, Dasyatis sabina, and bull
shark, Carcharhinus leucas and the partially euryhaline European lesserspotted
dogfish, Scyliorhinus canicula (Anderson et al., 2002a). However,
no change in the NKA activity of rectal gland tissue was evident in the
partially euryhaline leopard shark, Triakis semifasciata, when acclimated
to full strength and diluted SW (Dowd et al., 2010) and this is consistent
with the findings of the current study. Increased plasma water content is
strongly believed to be the primary stimulus for salt secretion in rectal
gland tissue (Erlij and Rubio, 1986; Anderson et al., 2002b). The osmotic
gradient between the plasma of an elasmobranch and its environment
dictates the rate of osmotic water gain and therefore potential for
haemodilution or haemoconcentration resulting in increased and
decreased rectal gland activity, respectively (Anderson et al., 2002a;
Good et al., 2008). Unlike S. canicula, in T. semifasciata and C. punctatum
HCT was not significantly affected by environmental salinity which may
indicate that no persistent changes in blood volume occurred over the
experimental period (Good et al., 2008; Dowd et al., 2010). Thus the rectal
gland would not be stimulated to alter its rate of salt secretion and
therefore activity of the NKA enzyme would remain unchanged.
Also, it is possible that over the range of salinities tested, other tissues,
like the kidneys or gills, were able to control ionic concentrations
within the plasma requiring no further increase in rectal gland NKA
activity.
Recent evidence suggests that the gills of an elasmobranch play an
important role in salt uptake when residing in FW (Choe et al., 2005;
Reilly et al., 2011). NKA, specifically, is associated with a putative
branchial Na+ uptake pathway leading to the hypothesis that branchial
NKA activity should increase with decreasing environmental salinity
but onlywhen active salt uptake is required. At the lowest experimental
salinity in this study (25‰), plasma Na+ and Cl− ion concentrations
were still significantly lower than those of the environment indicating
that net salt secretion was still required and, as expected, no change in
branchial NKA activity was observed. Additionally, branchial NKA
activity was an order of magnitude lower than that of the rectal
gland which is consistent with what has been observed previously
in other elasmobranchs (Piermarini and Evans, 2000; Pillans et al.,
2005; Dowd et al., 2010). Duncan et al. (2011) recently demonstrated
in two ray species from the Potamotrygon genus that NKA activity
differed depending on the hemibranch that is used for analysis. In
their study, NKA activity in the 4th hemibranch was three times higher
than NKA activity of the 1st hemibranch. Only the first hemibranchwas
used in the current study and thereforeNKA activities presentedmay be
an underestimation of the maximumachieved by this tissue. In contrast
to NKA activity, quantitative data on NKA protein abundance, albeit
limited, did suggest a slight increase in abundance in branchial tissues
with declining salinity. However, the NKA antibody used in this study
does not detect the whole NKA protein, but rather targets the α-
subunit of the 3 subunit (α, ß and a FXYD protein) complex. Moreover,
neither the antibody nor in vitro NKA activity assays have the ability to
distinguish between different isoforms of theα-subunit, the expression
of which can also change with acclimation to different environmental
salinities (Richards et al., 2003). This means that changes in the expression
levels of the NKA α-subunit may not necessarily reflect changes
in expression of the entire NKA complex; but equally, the NKA activity
assaymay not necessarily represent the actual NKA activity of the protein
in vivo (Sardella and Kultz, 2009). Other studies have also reported amismatch
between branchial NKA activity levels and NKA α-subunit expression
(Pillans et al., 2005; Sardella and Kultz, 2009; Reilly et al.,
2011). Although weak, there was some evidence to suggest that
NKA expression in the gills of C. punctatum declined with decreased
salinity and further work is required to confirm this trend and elucidate
the mechanism through which this occurs. Despite this, it is
การ elasmobranch หลังสั้น acclimation การ hypersaline น้ำ(40‰), สมาธิที่ TMAO ได้เพิ่มกับเพิ่มสิ่งแวดล้อมเค็ม (Mandrup-Poulsen, 1981) C. punctatum ผลิต TMAO(Treberg และ al., 2006) และยังจะได้รับความเข้มข้นของคาดว่าจะเพิ่มในพลาสม่าที่ มีการเพิ่มสิ่งแวดล้อมเค็มความเข้มข้นของพลาสมา Na + และ Cl− เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญด้วยการเพิ่มเค็มสิ่งแวดล้อมแต่การรักษาทั้งหมดยังคงhypoionic กับสิ่งแวดล้อม เล็ก เปลี่ยนแปลงที่สำคัญในNa + และความเข้มข้นของพลาสมา Cl− ของ elasmobranchs อย่างดีเอกสารบางส่วน euryhaline (คูเปอร์และมอร์ริสปี 1998 แอนเดอร์สันและ al., 2002b Dowd et al., 2010) และ euryhaline เต็มelasmobranchs (Piermarini และอีวานส์ 1998 Pillans et al., 2005) เป็นเช่น plasmaNa towhich ขอบเขต + และการเปลี่ยนแปลงความเข้มข้น Cl−ionตอบสนองต่อการเปลี่ยนแปลงในสิ่งแวดล้อมเค็มถือเป็นส่วนใหญ่เฉพาะสปีชีส์และบ่งชี้ชนิดของที่ osmoregulatoryกำลังการผลิต พร้อมกับยกสังเกตในความเข้มข้นของยูเรียและระเบียบแน่นของ K + ไอออนความเข้มข้นในพลาสมามีแนวโน้มที่ elevations สังเกตในความเข้มข้นไอออน Na + และ Cl−เพิ่มเค็มสิ่งแวดล้อมใน C. punctatum มีไม่มีระบุทุกข์ osmoregulatory แต่แทนที่จะเป็นสายพันธุ์เฉพาะตอบสนองต่อปริมาณเกลือที่สิ่งแวดล้อมในการศึกษานี้ ความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญในกิจกรรม NKA ภายในเกี่ยวกับลำไส้เนื้อเยื่อต่อมเกี่ยวกับสิ่งแวดล้อมเค็มไม่ชัดเจนให้เพิ่มเติมหลักฐานที่จำกัดการออสโมติกสำหรับการบำรุงรักษาของภาวะธำรงดุลการออสโมติกใน punctatum เซลเซียสได้ไม่เกินเป็นสิ่งแวดล้อมเค็มเพิ่ม บำรุงรักษาค่อนข้างมีเสถียรภาพพลาสม่า Na + และ Cl− ความเข้มข้นแม้ มีเพิ่มขึ้นในสิ่งแวดล้อมความเข้มข้นของไอออน exacerbates ขาเข้า ionic ไล่ระดับสี นำไปสู่การเพิ่มขึ้นกำไรแฝงของประจุเหล่านี้จึงเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญจำเป็นสำหรับงานเกลือหลั่ง โดยต่อมไส้ (เบอร์เกอร์ 1965) จึงดีก่อตั้งขึ้นที่ประจุ Na + และ Cl− ส่วนเกินจะถูกเอาออกจากการเลือดผ่าน ionocytes ในต่อมไส้โดย NKA บน basolateral ของพวกเขาเมมเบรนเป็นโปรแกรมควบคุมปรับหลัก (Goertemiller และเอลลิส1976) . ดังนั้น จึงคาดว่า จะต่อมที่ไส้ NKA กิจกรรมเพิ่มกับเพิ่มเค็มสิ่งแวดล้อมมีการสังเกตในพันธุ์ euryhaline เช่นหนังปลากระเบนแอตแลนติก ซาบีนา Dasyatis และวัวปลาฉลาม Carcharhinus leucas และ lesserspotted ยุโรปบางส่วน euryhalinedogfish, Scyliorhinus canicula (แอนเดอร์สันและ al., 2002a) อย่างไรก็ตามเปลี่ยนแปลงกิจกรรม NKA ของเนื้อเยื่อต่อมไส้เห็นได้ชัดในการปลาฉลามเสือดาว euryhaline บางส่วน Triakis semifasciata เมื่อ acclimatedเต็มแรงและแตกออก SW (Dowd et al., 2010) และสอดคล้องกันมีการค้นพบของการศึกษาปัจจุบัน เนื้อหาน้ำพลาสม่าที่เพิ่มขึ้นขอเชื่อว่าจะ กระตุ้นเศรษฐกิจหลักสำหรับหลั่งเกลือในไส้เนื้อเยื่อต่อม (Erlij และ Rubio, 1986 แอนเดอร์สันและ al., 2002b) การการออสโมติกการไล่ระดับสีระหว่างพลาสมาของ elasmobranch การและสภาพแวดล้อมบอกอัตรากำไรการออสโมติกน้ำจึงเกิดการhaemodilution หรือ haemoconcentration เกิดในเพิ่มขึ้น และลดกิจกรรมเกี่ยวกับลำไส้ต่อม ตามลำดับ (แอนเดอร์สันและ al., 2002aดีเอส al., 2008) ซึ่งแตกต่างจาก S. canicula ต. semifasciata และ C. punctatumHCT เป็นอย่างมากเช่นเค็มสิ่งแวดล้อมซึ่งอาจบ่งชี้ว่า ไม่เปลี่ยนแปลงแบบถาวรในปริมาตรเลือดที่เกิดขึ้นผ่านการระยะเวลาทดลอง (ดีร้อยเอ็ด al., 2008 Dowd et al., 2010) ดังนั้นไส้จะไม่ถูกกระตุ้นต่อมในการเปลี่ยนแปลงของอัตราการหลั่งเกลือ และดังนั้น กิจกรรมของเอนไซม์ NKA จะยังคงไม่เปลี่ยนแปลงเป็นไปได้ที่ช่วง salinities ทดสอบ เนื้อเยื่ออื่น ๆเช่นไตหรือ gills มีความสามารถในการควบคุมความเข้มข้น ionicภายในพลาสม่าต้องไปเพิ่มในไส้ต่อม NKAกิจกรรมการหลักฐานล่าสุดแนะนำว่า gills ของ elasmobranch เล่นเป็นบทบาทสำคัญในการดูดซับเกลือให้ FW (ลชเว et al., 2005Reilly et al., 2011) NKA โดยเฉพาะ จะเกี่ยวข้องกับเป็น putativebranchial นา + ดูดซับทางเดินนำไปสู่ทฤษฏีที่ branchialกิจกรรม NKA ควรเพิ่มกับลดเค็มสิ่งแวดล้อมแต่จำเป็น onlywhen ดูดซับเกลือที่ใช้งานอยู่ ที่ทดลองต่ำที่สุดเค็มในนี้ศึกษา (25‰), พลาสม่า Na + และความเข้มข้นของไอออน Cl−ก็ยังต่ำกว่าที่บอกสภาพแวดล้อมที่หลั่งเกลือสุทธิยังคงจำเป็น และ เป็นที่คาด หวัง ไม่เปลี่ยนแปลงกิจกรรม NKA branchial ถูกตรวจสอบ นอกจากนี้ branchial NKAกิจกรรมมีการสั่งของขนาดที่ต่ำกว่าของเกี่ยวกับลำไส้มีการสังเกตต่อมซึ่งสอดคล้องกับอะไรก่อนหน้านี้ใน elasmobranchs อื่น ๆ (Piermarini และอีวานส์ 2000 Pillans et al.,2005 Dowd et al., 2010) เมื่อเร็ว ๆ นี้แสดงดันแคนเอ็ด al. (2011)ในสองเรย์ชนิดจากพืชสกุล Potamotrygon กิจกรรม NKAแตกต่างขึ้นอยู่กับ hemibranch ที่ใช้สำหรับการวิเคราะห์ ในการศึกษา กิจกรรม NKA ใน hemibranch 4 ถูกรั้งสูงกว่ากิจกรรม NKA ของ hemibranch 1 Hemibranchwas แรกเท่านั้นใช้ในการศึกษาและ thereforeNKA กิจกรรม presentedmay ได้การ underestimation ของ maximumachieved โดยเนื้อเยื่อนี้ ในทางตรงข้ามNKA กิจกรรม ข้อมูลเชิงปริมาณใน NKA โปรตีนมาก แม้ว่าจำกัด ได้แนะนำการเพิ่มขึ้นเล็กน้อยในความอุดมสมบูรณ์ในเนื้อเยื่อ branchialกับลงเค็ม อย่างไรก็ตาม แอนติบอดี NKA ใช้ในการศึกษานี้ตรวจพบโปรตีน NKA ทั้ง แต่เป้าหมายแต่ ด้วยกองทัพ-ย่อยของอาคารย่อย 3 (ด้วยกองทัพ บาท และโปรตีน FXYD) นอกจากนี้ไม่มีแอนติบอดีหรือ assays กิจกรรม NKA เพาะเลี้ยงมีความสามารถในการความแตกต่างระหว่าง isoforms แตกต่างกันของ theα-ย่อย นิพจน์of which can also change with acclimation to different environmentalsalinities (Richards et al., 2003). This means that changes in the expressionlevels of the NKA α-subunit may not necessarily reflect changesin expression of the entire NKA complex; but equally, the NKA activityassaymay not necessarily represent the actual NKA activity of the proteinin vivo (Sardella and Kultz, 2009). Other studies have also reported amismatchbetween branchial NKA activity levels and NKA α-subunit expression(Pillans et al., 2005; Sardella and Kultz, 2009; Reilly et al.,2011). Although weak, there was some evidence to suggest thatNKA expression in the gills of C. punctatum declined with decreasedsalinity and further work is required to confirm this trend and elucidatethe mechanism through which this occurs. Despite this, it is
การแปล กรุณารอสักครู่..
elasmobranch หลังจากปรับตัวในระยะสั้นไปยังน่านน้ำ hypersaline
(40 ‰) ความเข้มข้น TMAO ได้เพิ่มขึ้นเพิ่มขึ้นสิ่งแวดล้อม
ความเค็ม (Mandrup-โพลเซ่น, 1981) ซี punctatum จะผลิต TMAO
(Treberg et al., 2006) และความเข้มข้นของมันก็จะได้รับการ
คาดว่าจะเพิ่มขึ้นในพลาสม่าที่มีเพิ่มมากขึ้นสิ่งแวดล้อม
ความเค็ม.
ความเข้มข้นของพลาสม่านา + และ Cl- เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ
กับการเพิ่มความเค็มสิ่งแวดล้อม แต่ยังคงรักษาทั้งหมด
hypoionic กับสภาพแวดล้อม ขนาดเล็ก แต่การเปลี่ยนแปลงอย่างมีนัยสำคัญใน
นา + และ Cl- ความเข้มข้นในพลาสมาของ elasmobranchs เป็นอย่างดี
สำหรับทั้งเอกสารบางส่วน euryhaline (คูเปอร์และมอร์ริส,
1998. แอนเดอ, et al, 2002b. Dowd et al, 2010) และเต็ม euryhaline
elasmobranchs (Piermarini และ อีแวนส์, 1998. Pillans et al, 2005) ในฐานะที่เป็น
เช่นขอบเขต towhich plasmaNa + และความเข้มข้นของคลอรีนไอออนเปลี่ยนแปลง
การตอบสนองต่อการเปลี่ยนแปลงความเค็มในสิ่งแวดล้อมที่ได้รับการยกย่องให้เป็น
สายพันธุ์ส่วนใหญ่ที่เฉพาะเจาะจงและบ่งบอกถึงสายพันธุ์ที่ osmoregulatory
ความจุ บวกกับการยกระดับความเข้มข้นในการสังเกตยูเรีย
และกฎระเบียบตึงตัวของ K + ไอออนเข้มข้นภายในพลาสม่าก็เป็น
ไปได้ว่าเอนไซม์ที่สังเกตในนา + และ Cl- ความเข้มข้นของไอออน
ที่มีการเพิ่มความเค็มสิ่งแวดล้อมใน punctatum ซีไม่ได้
บ่งบอกถึงความทุกข์ osmoregulatory แต่ สายพันธุ์เฉพาะ
การตอบสนองต่อการโหลดเกลือสิ่งแวดล้อม.
ในการศึกษานี้ความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญในกิจกรรมการ NKA ภายในทวารหนัก
เนื้อเยื่อต่อมที่เกี่ยวกับสิ่งแวดล้อมความเค็มไม่ชัดเจน
ให้หลักฐานเพิ่มเติมว่าเกณฑ์ออสโมติกสำหรับการบำรุงรักษา
สภาวะสมดุลของออสโมติกในซี punctatum มี ไม่ได้รับเกิน.
ขณะที่การเพิ่มขึ้นของความเค็มสิ่งแวดล้อมการบำรุงรักษาค่อนข้างมีเสถียรภาพ
+ นาพลาสม่าและความเข้มข้นของ Cl- แม้จะมีการเพิ่มขึ้นของสิ่งแวดล้อม
ความเข้มข้นของไอออน exacerbates การไล่ระดับสีไอออนิกเข้าที่นำไปสู่
การเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญในกำไรเรื่อย ๆ ของไอออนเหล่านี้จึงช่วยเพิ่ม
ความจำเป็นในการใช้งาน การหลั่งเกลือโดยต่อมทวารหนัก (เบอร์เกอร์, 1965) มันเป็นเรื่องที่
เป็นที่ยอมรับกันดีว่าส่วนเกิน + นาและไอออน Cl- จะถูกลบออกจาก
เลือดผ่าน ionocytes ในต่อมทวารหนักที่ใช้ใน NKA basolateral ของพวกเขา
เมมเบรนเป็นคนขับพลังหลัก (Goertemiller และเอลลิส
1976) ดังนั้นจึงเป็นที่คาดหวังว่ากิจกรรมต่อม NKA ทวารหนักจะ
เพิ่มขึ้นด้วยความเค็มเพิ่มขึ้นเป็นสิ่งแวดล้อมได้รับการปฏิบัติใน
สายพันธุ์ euryhaline เช่นแอตแลนติกปลากระเบนปลากระเบน Sabina และวัว
ปลาฉลาม leucas ฉลามและบางส่วน euryhaline ยุโรป lesserspotted
ปลาฉลามหนู Scyliorhinus canicula (เดอร์สัน et al., 2002a) อย่างไรก็ตาม
การเปลี่ยนแปลงในกิจกรรม NKA ของเนื้อเยื่อต่อมทวารหนักไม่เห็นได้ชัดใน
เสือดาวฉลาม euryhaline บางส่วน Triakis semifasciata เมื่อปรับตัว
เพื่อความแข็งแรงเต็มรูปแบบและปรับลด SW (Dowd et al., 2010) และมีความสอดคล้อง
กับผลการวิจัยของปัจจุบัน การศึกษา พลาสม่าปริมาณน้ำที่เพิ่มขึ้น
เชื่อว่าจะเป็นแรงบันดาลใจหลักสำหรับการหลั่งเกลือในทวารหนัก
เนื้อเยื่อต่อม (Erlij และ Rubio, 1986. แอนเดอ, et al, 2002b) ออสโมติก
ระหว่างการไล่ระดับสีพลาสม่าของ elasmobranch และสภาพแวดล้อม
สั่งการอัตราการเพิ่มน้ำออสโมติกและดังนั้นจึงมีศักยภาพสำหรับ
haemodilution หรือ haemoconcentration ผลในการเพิ่มขึ้นและ
ลดลงต่อมกิจกรรมทางทวารหนักตามลำดับ (เดอร์สัน, et al, 2002a;.
. ดี et al, 2008 ) ซึ่งแตกต่างจากเอส canicula ใน T. semifasciata และ C punctatum
HCT ไม่ได้รับผลกระทบอย่างมีนัยสำคัญโดยความเค็มสิ่งแวดล้อมซึ่งอาจ
แสดงให้เห็นว่าไม่มีการเปลี่ยนแปลงที่ถาวรในปริมาณเลือดที่เกิดขึ้นในช่วง
ระยะเวลาการทดลอง (Good et al, 2008;.. Dowd et al, 2010 ) ดังนั้นทางทวารหนัก
ต่อมจะไม่ได้รับการกระตุ้นที่จะปรับเปลี่ยนอัตราการหลั่งเกลือและ
กิจกรรมจึงของเอนไซม์ NKA จะยังคงไม่เปลี่ยนแปลง.
นอกจากนี้ก็เป็นไปได้ว่าในช่วงของการทดสอบความเค็มเนื้อเยื่ออื่น ๆ
เช่นไตหรือเหงือกมีความสามารถ ในการควบคุมความเข้มข้นของไอออนิก
ที่อยู่ในพลาสม่าไม่จำเป็นต้องเพิ่มขึ้นอีกในต่อมทวารหนัก NKA
กิจกรรม.
หลักฐานล่าสุดแสดงให้เห็นว่าเหงือกของ elasmobranch เล่น
บทบาทสำคัญในการดูดซึมเกลือเมื่อพำนักอยู่ใน FW (โช et al, 2005;.
. ไรลีย์, et al, 2011) NKA โดยเฉพาะที่เกี่ยวข้องกับการสมมุติ
branchial นาเดิน + การดูดซึมนำไปสู่สมมติฐานที่ว่า branchial
กิจกรรม NKA ควรจะเพิ่มขึ้นด้วยการลดความเค็มสิ่งแวดล้อม
แต่การดูดซึมเกลือที่ใช้งานจะต้อง onlywhen ในการทดลองต่ำสุด
ความเค็มในการศึกษานี้ (25 ‰), พลาสม่านา + และ Cl- ไอออนความเข้มข้น
อย่างมีนัยสำคัญก็ยังคงต่ำกว่าสภาพแวดล้อมที่แสดงให้เห็น
ว่าการหลั่งเกลือสุทธิที่ถูกต้องและยังคงเป็นไปตามคาดไม่มีการเปลี่ยนแปลงใน
กิจกรรม branchial NKA พบว่า . นอกจากนี้ branchial NKA
กิจกรรมเป็นลำดับความสำคัญต่ำกว่าที่ของทางทวารหนัก
ต่อมซึ่งสอดคล้องกับสิ่งที่ได้รับการตั้งข้อสังเกตก่อนหน้านี้
ในอื่น ๆ elasmobranchs (Piermarini และอีแวนส์, 2000; Pillans, et al.
2005;. Dowd et al, 2010) . ดันแคน, et al (2011) แสดงให้เห็นเมื่อเร็ว ๆ นี้
ในสองสายพันธุ์เรย์จากประเภท Potamotrygon ว่ากิจกรรม NKA
ขัดแย้งกันขึ้นอยู่กับ hemibranch ที่ใช้ในการวิเคราะห์ ใน
การศึกษาของพวกเขาในกิจกรรม NKA hemibranch 4 เป็นสามครั้งสูง
กว่า NKA กิจกรรมที่ 1 hemibranch เฉพาะ hemibranchwas แรกที่
นำมาใช้ในการศึกษาในปัจจุบันและกิจกรรม thereforeNKA presentedmay จะ
เบาของ maximumachieved โดยเนื้อเยื่อนี้ ในทางตรงกันข้าม
กับกิจกรรม NKA ข้อมูลเชิงปริมาณโปรตีนในความอุดมสมบูรณ์ NKA แม้จะ
จำกัด ไม่แนะนำให้เพิ่มขึ้นเล็กน้อยในความอุดมสมบูรณ์ในเนื้อเยื่อ branchial
กับความเค็มลดลง อย่างไรก็ตามแอนติบอดี NKA ใช้ในการศึกษาครั้งนี้
ไม่พบโปรตีนทั้ง NKA แต่เป้าหมายα-
หน่วยย่อยของ 3 หน่วยย่อย (α, SS และโปรตีน FXYD) ที่ซับซ้อน นอกจากนี้
ทั้งแอนติบอดีหรือในกิจกรรม NKA หลอดทดลองการตรวจมีความสามารถในการ
แยกแยะความแตกต่างระหว่างไอโซฟอร์มที่แตกต่างกันของtheα-subunit การแสดงออก
ซึ่งยังสามารถเปลี่ยนการปรับตัวกับสิ่งแวดล้อมที่แตกต่างกัน
ความเค็ม (ริชาร์ด et al., 2003) ซึ่งหมายความว่าการเปลี่ยนแปลงในการแสดงออกของ
ระดับของ NKA α-subunit อาจไม่จำเป็นต้องสะท้อนให้เห็นถึงการเปลี่ยนแปลง
ในการแสดงออกของความซับซ้อนทั้ง NKA; แต่อย่างเท่าเทียมกัน, กิจกรรม NKA
assaymay ไม่จำเป็นต้องเป็นตัวแทนของกิจกรรมที่เกิดขึ้นจริง NKA ของโปรตีน
ในร่างกาย (Sardella และ Kultz 2009) การศึกษาอื่น ๆ นอกจากนี้ยังมีรายงาน amismatch
ระหว่าง branchial NKA ระดับกิจกรรมและการแสดงออก NKA α-subunit
(Pillans et al, 2005;. Sardella และ Kultz 2009;. ไรลีย์, et al,
2011) แม้ว่าอ่อนแอมีหลักฐานบางอย่างที่ชี้ให้เห็นว่า
การแสดงออกใน NKA เหงือกซี punctatum ลดลงลดลงมี
ความเค็มและการทำงานต่อไปจะต้องยืนยันแนวโน้มนี้และอธิบาย
กลไกผ่านที่เกิดขึ้นนี้ อย่างไรก็ตามเรื่องนี้ก็คือ
การแปล กรุณารอสักครู่..