2. Materials and methods2.1. Prepar

2. Materials and methods
2.1. Preparation of biochar
The biochar produced from Anhui Yineng Bio-Energy Co., China, was obtained from pyrolysis of rice husks at 723–823 K for 1–2 s. The yields of bio-oil, biochar, and gas are about 50, 35, and 15 wt%, respectively. The biochar samples were grounded to pass a 120-mesh (125 μm) sieve, then stored under ambient conditions for the subsequent experiments.

2.2. General properties of biochar
Specific surface area of biochar was determined by nitrogen adsorption–desorption isotherms, obtained at 77 K by a Micromeritics Gemini apparatus (ASAP 2020M+C, Micromeritics, Co., USA). The pH of point of zero charge (pHPZC) for biochar was determined following the method described by Dastgheib et al. (2004). Proximate analysis was conducted according to the American Society for Testing and Materials (ASTM) D1762-84. Ultimate analysis was determined on an elemental analyzer (VARIO EL III, Elementar Inc., Germany). The chemical compositions of biochar were determined by inductively coupled plasma-atomic emission spectrometry (ICP-AES, Optima 7300 DV, Perkin Elmer Co., USA). The biochar samples were prepared in KBr (1 wt%) and pressed into pellets, and characterized using Fourier transform infrared spectroscopy (FTIR, EQUINOX55 IR spectroscopy, Bruker, Germany). Spectra were collected in transmittance, in a range of 400–4000 cm−1 at resolution of 4 cm−1 and 16 scans.

2.3. Analysis of 31P-NMR samples
Two samples extracted with H2O and EDTA–NaOH were prepared for 31P-NMR analysis. 5 g of biochar and 100 mL of water or 0.25 M NaOH/0.05 M EDTA solution was mixed and shaken for 16 h at 298 ± 3 K. The mixture was centrifuged at 4000 rpm for 30 min, and the supernatant was collected and lyophilized for 3 d. The lyophilized samples were then re-dissolved in D2O and 1 M NaOH for 31P-NMR analysis (Turner et al., 2003). Solution 31P NMR spectra were obtained using a Bruker AVANCE AV III 400 MHz spectrometer operating at 162 MHz and 297 K. Spectra were recorded using a 30° pulse width, a total acquisition time of 1.5 s and broadband proton decoupling. 1024 scans were collected to obtain acceptable signals. Chemical shifts were measured relative to an external standard of 85% H3PO4. The NMR spectra were analyzed by NMR software (MestReNova v 6.1.1–5475).

2.4. Determination of orthophosphate and total phosphorus
The orthophosphate concentration was determined by the molybdate-ascorbic acid method. The samples for total P determination were digested with potassium persulfate at 393 K for 30 min, to convert both the polyphosphate and the organic phosphate to orthophosphate. Then, the digested samples were determined using the molybdate ascorbic acid method. The P content in biochar was determined by the molybdate-ascorbic acid method after digesting the sample in concentrated H2SO4/HClO4 at 473 K for 1 h.

2.5. Kinetic analysis
1.0 g of biochar and 100 mL of water were added into each Erelenmeyer flask, the flasks were then shaken at 180 rpm, 298 ± 3 K on a reciprocating shaker. The samples were withdrawn at appropriate time intervals. The mixture was filtered with a 0.45 μm membrane immediately. The concentration of orthophosphate and total P of the filtrate was then determined. The P release amount of biochar q (mg g−1) was calculated from the following equation:

equation(1)
View the MathML source
Turn MathJax on

where Ci (mg L−1) is the equilibrium P (orthophosphate or total phosphorus) concentration at each time interval; V (L) is the volume of water and mb (g) is the amount of biochar added into water.
2.6. Effect of coexisting anions and nutrient elements
To study the effect of coexisting anions on P release, 1 g of biochar was added into a flask containing 100 mL of 0.1 M KCl, KNO3, or K2SO4 solutions, and the flasks were shaken for 8 h at 180 rpm and 298 ± 3 K. The concentrations of orthophosphate and total phosphorus of the filtrate at different samples were then determined.

The effect of nutrient on P release from biochar was explored in a similar way at different strengths levels (10%, 20%, 30%, 40% and 50%) of modified Hoagland nutrient solutions (HNS). The 100% modified HNS comprised of 4 mM Ca(NO3)2, 6 mM KNO3, 1 mM NH4Cl, and 2 mM MgSO4.

All statistical analyses were conducted with the software IBM SPSS 17.0 (SPSS Inc., USA) for Windows. One-way analysis of variance (ANOVA) was applied to analyzing the data about the effects of time, coexisting ions and HNS on P release; linear regression analysis was applied to the kinetics models of P release. Significance was assigned at the p ⩽ 0.05 level.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2 วัสดุและวิธีการ
2.1 การเตรียมความพร้อมของ biochar
biochar ที่ผลิตจาก Anhui yineng พลังงานชีวภาพร่วม. ประเทศจีนที่ได้รับจากการไพโรไลซิของแกลบที่ 723-823 k 1-2 s ผลผลิตของน้ำมันชีวภาพ, biochar และก๊าซที่มีประมาณ 50, 35, และ 15% โดยน้ำหนักตามลำดับ ตัวอย่าง biochar ถูกเหตุผลที่จะผ่าน 120-ตาข่าย (125 ไมครอน) ตะแกรงแล้วเก็บไว้ภายใต้สภาพแวดล้อมสำหรับการทดลองต่อมา

. 2.2 คุณสมบัติทั่วไปของ biochar
พื้นที่ผิวที่เฉพาะเจาะจงของ biochar ถูกกำหนดโดยการดูดซับไนโตรเจน isotherms-คาย,​​ ที่ได้รับใน 77 k ตั้งโดยอุปกรณ์ gemini Micromeritics (เร็ว 2020m C, Micromeritics ร่วม. usa)ph ของจุดศูนย์ค่าใช้จ่าย (phpzc) เพื่อ biochar ถูกกำหนดดังต่อไปนี้วิธีการที่อธิบายโดย dastgheib ตอัล (2004) การวิเคราะห์ใกล้เคียงได้ดำเนินการตามที่สังคมอเมริกันสำหรับการทดสอบและวัสดุ (ASTM) d1762-84 การวิเคราะห์ที่ดีที่สุดที่ได้รับการพิจารณาในการวิเคราะห์ธาตุ (Vario เอ iii, ELEMENTAR inc., เยอรมนี)องค์ประกอบทางเคมีของ biochar ได้รับการพิจารณาโดย inductively คู่พลาสมาอะตอมปล่อย spectrometry (ICP-AES, Optima 7300 dv, Perkin Elmer ร่วม. usa) ตัวอย่าง biochar ได้จัดทำ KBR (1 น้ำหนัก%) และกดลงเม็ดและลักษณะการใช้แปลงฟูริเยร์อินฟราเรด (FTIR, equinox55 ir เปคโทรส Bruker, เยอรมนี) สเปกตรัมถูกเก็บไว้ในการส่งผ่านในช่วงของการ 400-4000 ซม. -1 ที่ความละเอียดของ 4 ซม. -1 และ 16 สแกน.

2.3 การวิเคราะห์ตัวอย่าง 31p-nmr
สองตัวอย่างสกัดด้วย h2o และ EDTA-NaOH ถูกเตรียมไว้สำหรับการวิเคราะห์ 31p-nmr 5 กรัมของ biochar และ 100 มล. น้ำหรือ 0.25 เมตร naoh/0.05 แก้ปัญหาเมตร EDTA ผสมและเขย่าเป็นเวลา 16 ชั่วโมงที่ 298 ± 3 k ส่วนผสมที่ถูกหมุนเหวี่ยงที่ 4000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 30 นาทีและสารละลายที่ถูกเก็บรวบรวมและแห้งเป็นเวลา 3 ง ตัวอย่างแห้งได้แล้วกลับกลืนหายไปใน d2o และ NaOH 1 เมตรสำหรับการวิเคราะห์ 31p-nmr (เอตอัลเทอร์เนอ., 2003) การแก้ปัญหา 31p nmr สเปกตรัมที่ได้รับการใช้ระยะ Bruker avance iii 400 MHz สเปกโตรมิเตอร์ปฏิบัติงานที่ 162 MHz และ 297 k สเปกตรัมที่ถูกบันทึกไว้โดยใช้ความกว้างชีพจร 30 °เวลาการเข้าซื้อกิจการทั้งหมด 15 และโปรตอนบรอดแบนด์ decoupling 1024 สแกนถูกเก็บรวบรวมเพื่อให้ได้สัญญาณที่ยอมรับ เคมีกะถูกวัดเทียบกับมาตรฐานภายนอก 85% H3PO4 สเปกตรัม nmr วิเคราะห์โดยซอฟต์แวร์ nmr (mestrenova v 6.1.1-5475).

2.4 การตัดสินใจของออร์โธฟอสเฟตและรวมฟอสฟอรัส
ความเข้มข้นออร์โธฟอสเฟตถูกกำหนดโดยวิธีการที่กรดโมลิบ-ซีตัวอย่างสำหรับการกำหนดพีทั้งหมดถูกย่อยด้วยโพแทสเซียมเพอร์ซัลเฟตที่ 393 k เป็นเวลา 30 นาที, การแปลงทั้งโพลีฟอสเฟตและฟอสเฟตอินทรีย์เพื่อออร์โธฟอสเฟต จากนั้นกลุ่มตัวอย่างย่อยได้รับการพิจารณาโดยใช้วิธีการวิตามินซีโมลิบเนื้อหาพีใน biochar ถูกกำหนดโดยวิธีการที่กรดโมลิบ-ซีหลังจากการย่อยตัวอย่างใน h2so4/hclo4 เข้มข้นที่ 473 k เป็นเวลา 1 ชั่วโมง.

2.5 การวิเคราะห์การเคลื่อนไหว
1.0 กรัมของ biochar และ 100 มล. ของน้ำที่เพิ่มขึ้นในแต่ละขวด erelenmeyer ขว​​ดสะเทือนสะท้านแล้วที่ 180 รอบต่อนาที 298 ± 3 k ในเครื่องปั่นลูกสูบ ตัวอย่างถูกถอนออกในช่วงเวลาที่เหมาะสมส่วนผสมที่ถูกกรองด้วยเมมเบรน 0.45 ไมโครเมตรทันที ความเข้มข้นของพีออร์โธฟอสเฟตและรวมของกรองถูกกำหนดแล้ว ปริมาณการปล่อยของพี q biochar (มก. กรัม-1) ที่คำนวณได้จากสมการต่อไปนี้

สมการ (1)
ดูแหล่งที่มา mathml
เปิด mathjax บน

ที่ CI (mg L-1) เป็นพีสมดุล (ออร์โธฟอสเฟตหรือฟอสฟอรัสรวม) ที่ความเข้มข้นของแต่ละช่วงเวลา; v (l) เป็นปริมาณของน้ำและเมกะไบต์ (g) เป็นจำนวน biochar เพิ่มลงไปในน้ำ
2.6. ผลกระทบของการอยู่ร่วมกันแอนไอออนและธาตุอาหาร
เพื่อศึกษาผลกระทบของการอยู่ร่วมกันแอนไอออนพีปล่อยให้ 1 กรัมของ biochar ถูกเพิ่มเข้าไปในขวดที่มี 100 มล. 0.1 เมตร kcl, KNO3,หรือการแก้ปัญหา k2so4 และขวดสะเทือนสะท้านเวลา 8 ชั่วโมงที่ 180 รอบต่อนาทีและ 298 ± 3 k ความเข้มข้นของออร์โธฟอสเฟตและฟอสฟอรัสรวมกรองตัวอย่างที่แตกต่างกันได้รับการพิจารณาแล้ว.

ผลกระทบของสารอาหารในการเปิดตัวพี biochar จากการสำรวจในลักษณะคล้ายกันที่จุดแข็งที่แตกต่างกัน (10%, 20%, 30%, 40% และ 50%) ของการแก้ปัญหาการปรับเปลี่ยนสารอาหาร hoagland (hns)100% hns แก้ไขประกอบด้วย 4 มิลลิเมตรแคลิฟอร์เนีย (NO3) 2, 6 มม. KNO3 1 มม. NH4Cl และ 2 มิลลิเมตร MgSO4.

วิเคราะห์ทางสถิติทั้งหมดถูกดำเนินการกับซอฟต์แวร์ ibm spss 17.0 (spss inc., usa) สำหรับ Windows . การวิเคราะห์ทางเดียวของความแปรปรวน (ANOVA) ถูกนำมาใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูลเกี่ยวกับผลกระทบของเวลาที่อยู่ร่วมกันและไอออน hns พีปล่อย;การวิเคราะห์การถดถอยเชิงเส้นถูกนำไปใช้จลนศาสตร์รูปแบบของการเปิดตัวพี ความสำคัญที่ได้รับมอบหมายพี⩽ระดับ 0.05

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2. วัสดุและวิธีการ
2.1 เตรียม biochar
biochar ผลิตจากมณฑลอานฮุย Yineng พลังงานทางชีวภาพ Co. จีน ได้รับจากชีวภาพของข้าวแพ้ง่ายที่ 723–823 K สำหรับ 1–2 s ผลผลิต น้ำมันชีวภาพ biochar และก๊าซได้ 50, 35 และ 15 wt % ตามลำดับ ตัวอย่าง biochar มีสูตรผ่านตะแกรงแบบตาข่าย 120 (125 μm) นั้นภายใต้สภาพแวดล้อมในการต่อทดลอง

2.2 คุณสมบัติทั่วไปของ biochar
biochar เฉพาะพื้นที่ถูกกำหนด โดย isotherms adsorption–desorption ไนโตรเจน ได้ที่ 77 K โดยเครื่องอนุภาคศาสตร์ราศีเมถุน (สหรัฐอเมริกาโดยเร็ว 2020 M C อนุภาคศาสตร์ Co. ) PH ของจุดของค่าศูนย์ (pHPZC) สำหรับ biochar ได้กำหนดตามวิธีที่อธิบายไว้โดย Dastgheib et al. (2004) เคียงวิเคราะห์ได้ดำเนินการตามสังคมอเมริกันการทดสอบวัสดุ (ASTM) D1762-84 วิเคราะห์ที่ดีที่สุดที่ถูกกำหนดในการวิเคราะห์ธาตุ (VARIO เอล III, Elementar Inc. เยอรมนี) จนเคมีของ biochar ถูกกำหนด โดยปล่อยก๊าซพลาสมาอะตอมท่าน spectrometry (ICP-AES พติ 7300 DV เพอร์เอลเมอ Co. สหรัฐอเมริกา) มีเตรียมตัวอย่าง biochar ใน KBr (1 wt %) และกดลงขี้ และลักษณะการใช้ฟูรีเยกอินฟราเรดแปลง (FTIR, EQUINOX55 IR ก Bruker เยอรมนี) มีการเก็บรวบรวมใน transmittance แรมสเป็คตรา ในช่วงของ cm−1 400–4000 ที่ความละเอียด 4 cm−1 และ 16 สแกน

2.3 วิเคราะห์ตัวอย่าง 31P NMR
มาทดสอบสกัด ด้วย H2O และ EDTA–NaOH ถูกเตรียมไว้สำหรับวิเคราะห์ NMR 31P 5 กรัม biochar และ 100 mL ของน้ำหรือโซลูชัน 0.25 M NaOH/0.05 M EDTA ผสม และเขย่าสำหรับ h 16 ที่ 298 ± 3 เค ส่วนผสมถูก centrifuged ที่ 4000 รอบต่อนาทีในนาทีที่ 30 และ supernatant ถูกรวบรวม และ lyophilized สำหรับ 3 d อีกครั้งแล้วมีละลายตัวอย่าง lyophilized ใน D2O และ 1 M NaOH สำหรับวิเคราะห์ 31 P NMR (Turner et al., 2003) โซลูชั่น 31P NMR แรมสเป็คตราได้รับโดยใช้สเปกโตรมิเตอร์ Bruker AVANCE AV III 400 MHz การทำงานที่ 162 MHz และแรมสเป็คตราคุณ 297 ถูกบันทึกไว้โดยใช้ความกว้างของพัลส์ 30° เวลาซื้อรวม 15 s และสัญญาณ decoupling โปรตอนบรอดแบนด์ 1024 สแกนถูกเก็บรวบรวมเพื่อให้ได้สัญญาณที่ยอมรับได้ เคมีกะถูกวัดเทียบกับมาตรฐานภายนอก 85% H3PO4 แรมสเป็คตรา NMR ถูกวิเคราะห์ โดยซอฟต์แวร์ NMR (MestReNova v 6.1.1–5475).

2.4 ความมุ่งมั่นของฟอสฟอรัสรวมและ orthophosphate
สมาธิ orthophosphate ถูกกำหนด โดยวิธีกรดแอสคอร์บิค molybdate ตัวอย่างสำหรับการกำหนด P รวมถูกต้องกับ persulfate โพแทสเซียมที่ 393 K สำหรับ 30 นาที การแปลง polyphosphate และฟอสเฟตอินทรีย์ orthophosphate ตัวอย่าง digested แล้ว ถูกกำหนดโดยใช้วิธี molybdate กรดแอสคอร์บิค เนื้อหา P ใน biochar ถูกกำหนด โดยวิธีกรดแอสคอร์บิค molybdate หลังจาก digesting อย่างในเข้ม กำมะถัน/HClO4 ที่ 473 K สำหรับ 1 h.

2.5 วิเคราะห์เดิม ๆ
1.0 g ของ biochar และ 100 mL น้ำถูกเพิ่มเข้าไปในแต่ละ Erelenmeyer หนาว น้ำถูกเขย่าที่ 180 รอบต่อนาที 298 ± 3 K ในเชคเกอร์ reciprocating แล้ว ตัวอย่างถูกถอนในช่วงเวลาที่เหมาะสม ส่วนผสมได้กรอง ด้วยเยื่อ 0.45 μm ทันที ความเข้มข้นของ orthophosphate และ P รวมของ filtrate ได้กำหนดแล้ว P ปล่อยจำนวน biochar q (mg g−1) คำนวณจากสมการต่อไปนี้:

(1) สมการ
ดูต้น MathML
เปิด MathJax ใน

Ci (mg L−1) อยู่ที่ความเข้มข้นสมดุล P (ฟอสฟอรัส orthophosphate หรือรวม) ในแต่ละช่วงเวลา V (L) คือ ปริมาตรของน้ำ และ mb (g) คือ จำนวนของ biochar เพิ่มเข้าไปในน้ำ.
2.6 ผลของ coexisting anions และองค์ประกอบธาตุอาหาร
เพื่อศึกษาผลของ coexisting anions รุ่น P, g 1 ของ biochar ถูกเพิ่มเข้าไปในหนาวประกอบด้วย 100 mL ของ 0.1 M KCl, KNO3 หรือโซลูชั่น K2SO4 และน้ำถูกเขย่าสำหรับ h 8 ที่ 180 รอบต่อนาทีและ 298 ± 3 เค จากนั้นได้กำหนดความเข้มข้นของฟอสฟอรัส orthophosphate และผลรวมของ filtrate ที่แตกต่างกันอย่างนั้น

ผลของสาร P ออกจาก biochar ถูกสำรวจในระดับจุดแข็งแตกต่างกัน (10%, 20%, 30%, 40% และ 50%) แก้ไข Hoagland ธาตุอาหารโซลูชัน (HNS) 100% ปรับเปลี่ยน HNS ประกอบด้วย 4 มม. Ca (NO3) 2, KNO3, 1 mM NH4Cl และ 2 มม. MgSO4 6 mM

สถิติวิเคราะห์ทั้งหมดได้ดำเนินการกับซอฟต์แวร์ IBM 17.0 โปรแกรม (โปรแกรม Inc., USA) สำหรับ Windows ต่างของการวิเคราะห์แบบทางเดียว (การวิเคราะห์ความแปรปรวน) ถูกใช้เพื่อการวิเคราะห์ข้อมูลเกี่ยวกับผลกระทบของเวลา coexisting ที่ประจุ และ ปล่อย HNS บน P ใช้การวิเคราะห์ถดถอยเชิงเส้นแบบจำลองจลนพลศาสตร์ของรุ่น P ความสำคัญถูกกำหนดที่ p ⩽ระดับ 0.05

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . การเตรียมการของ biochar
biochar ที่ผลิตจากอานฮุย yineng bio-energy . co . th จีนได้มาจากเทลของเกล็ดข้าวที่ 723-823 K สำหรับ 1-2 1-2 S อัตราผลตอบแทนของก๊าซและ biochar Bio - น้ำมันมีประมาณ 5035 และ 15% ตามลำดับ WT ตัวอย่าง biochar ที่มีต่อสายดินผ่านตะแกรง 120 - ตาข่าย( 125 μ m )แล้วจัดเก็บไว้ในเงื่อนไขแวดล้อมสำหรับการทดลองใน ภายหลัง ได้.

2.2 . คุณสมบัติทั่วไปของพื้นที่เฉพาะ biochar
ของ biochar ก็กำหนดโดย isotherms ไนโตรเจน adsorption - desorption รับได้ที่ 77 K micromeritics Gemini เครื่อง( Virtualize ASAP และ 2020 ม. c micromeritics . co . th ,สหรัฐอเมริกา)pH ของจุดของศูนย์การชาร์จ( phpzc )สำหรับ biochar ตั้งใจไว้แล้วว่าต่อไปนี้วิธีการที่อธิบายไว้โดย dastgheib et al . ( 2004 ) การวิเคราะห์ใกล้ชิดก็ทำตามแบบอเมริกันสังคมสำหรับการทดสอบและวัสดุ( ASTM ) d 1762-84 การวิเคราะห์ที่กำหนดเป็นที่เกี่ยวกับดินน้ำลมไฟ Security Analyzer ( vario El III elementar , Inc .,เยอรมนี)ส่วนประกอบทางเคมีของ biochar ก็ถูกกำหนดโดยเกี่ยวกับการชักนำไฟฟ้าประกอบพลาสมา - ปรมาณูการปล่อยคลื่น spectrometry (. co . th ICP - AES optima DV 7300 Joint Commission , Perkin Elmer , USA ) ตัวอย่าง biochar ที่ได้เตรียมความพร้อมใน kbr ( 1 WT %)และกดปุ่มในกระสุนลูกปรายและลักษณะการใช้ฟุรเย - เปลี่ยนแปลงอินฟราเรด Emission Spectroscopy (บางชนิดและ Emission Spectroscopy Equinox 55 อินฟราเรด bruker เยอรมัน) Spectra จะถูกรวบรวมใน transmittanceในความหลากหลายของ 400-4000 1 ซ.ม.ที่ความละเอียดของ 4 ซม. 1 และ 16 จะสแกน.

2.3 . ตัวอย่างการวิเคราะห์ของ 31 P - nmr ตัวอย่าง
สองถูกแยกออกมาด้วย H 2 O และ edta - โซดาไฟได้เตรียมความพร้อมสำหรับการวิเคราะห์ 31 P - nmr 5 G ของ biochar และ 100 มล.ของน้ำหรือ 0.25 ม.โซดาไฟ/ 0.05 ม. edta เป็นโซลูชันแบบผสมผสานและเขย่าสำหรับ 16 ชั่วโมงที่ 298 ± 3 K .ที่ผสมผสานเป็น centrifuged ที่ 4000 รอบต่อนาทีสำหรับ 30 นาที,และ supernatant ที่ถูกเก็บรวบรวมและ lyophilized สำหรับ 3 D ตัวอย่าง lyophilized ที่เป็นอีกครั้งที่ละลายได้ใน D 2 O และ 1 M โซดาไฟสำหรับ 31 การวิเคราะห์ P - nmr (, Turner Field , et al . 2003 )แล้ว Spectra nmr โซลูชัน 31 P ได้โดยใช้ควอดรูเปิลแมสสเปคโต bruker avance AV III 400 MHz ที่ทำงานที่ 162 MHz และ 297 K . Spectra ที่บันทึกโดยใช้ความกว้าง 30 °ระดับพร้อมปุ่ม Pulse ที่เวลาการควบรวมกิจการทั้งหมดของ 15 โปรและการแยกแบบบรอดแบรนด์. 1024 การสแกนได้จากการเก็บข้อมูลเพื่อรับสัญญาณที่ยอมรับได้ กะทางเคมีเป็นวัดเมื่อเทียบกับมาตรฐาน ภายนอก ของ 85% H 3 PO 4 Spectra nmr ได้วิเคราะห์โดยซอฟต์แวร์ nmr ( mestrenova V 6.1.1 -5475 )

2.4 การกำหนดความเข้มข้น orthophosphate
ซึ่งจะช่วยให้ orthophosphate และรวมฟอสฟอรัสได้ถูกกำหนดโดยใช้วิธีการ molybdate - Ascorbic acid ที่ตัวอย่างสำหรับการกำหนด P รวมอยู่บ้างนิดหน่อยด้วย persulfate โปแตสเซียมที่ 393 K สำหรับ 30 นาทีในการแปลง polyphosphate และฟอสเฟตประกอบรัฐธรรมนูญว่าด้วยทั้งใน orthophosphate ตัวอย่างบ้างนิดหน่อยจากนั้นได้มีการใช้วิธีการวิตะมินซี molybdate ได้เนื้อหา P ใน biochar จึงตัดสินใจโดยใช้วิธีการ molybdate - Ascorbic acid หลังจาก digesting ตัวอย่างที่อยู่ในศูนย์ H 2 SO 4 / hclo 4 ที่ 473 K สำหรับ 1 H .

2.5 การวิเคราะห์การดูแบบ Kinetic G
1.0 biochar และ 100 มล.ของน้ำได้เพิ่มลงไปใน ภาชนะ เก็บน้ำ erelenmeyer แต่ละใบลูกปืนหลายที่ก็เขย่าที่ 180 รอบต่อนาที 298 ± 3 K ในเครื่องเขย่าไปมาแล้ว ตัวอย่างที่มีการถอนเงินออกในช่วงเวลาที่เหมาะสมการผสมผสานที่เป็นเยื่อที่กรองแล้วพร้อมด้วย 0.45 μ m ได้ในทันที การทำสมาธิของ P orthophosphate และทั้งหมดของ filtrate ที่ถูกกำหนดไว้แล้ว จำนวนเงินปล่อย P ของ biochar Q (มก. G 1 )จะคำนวณจากสมการต่อไปนี้:

สมการ( 1 )ดู mathml

mathjax แหล่งที่มา เปิด

ที่ CI (มก. L - 1 )คือเข้าสู่จุดสมดุล P ( orthophosphate หรือรวมฟอสฟอรัส)ความเข้มข้นในช่วงเวลาในแต่ละครั้ง V ( L )มีระดับเสียงของน้ำและ MB ( g )เป็นจำนวนเงินของ biochar เพิ่มลงไปในน้ำ.
2.6 มีผลบังคับใช้ของ anions " The Snake Charmer "และองค์ประกอบสารอาหาร
ซึ่งจะช่วยในการศึกษาผลของ anions " The Snake Charmer "บน P 1 G ของ biochar ถูกเพิ่มเข้าไปใน ภาชนะ เก็บน้ำที่มี 100 มล. 0.1 ม. kcl kno 3หรือ K 2 ทำให้ 4 โซลูชันทางธุรกิจ,และใบลูกปืนหลายสั่นสะเทือนสำหรับ 8 ชั่วโมงที่ 180 รอบต่อนาทีและ 298 ± 3 K .ที่ความเข้มข้นของ orthophosphate และฟอสฟอรัสรวมของ filtrate ตัวอย่างที่แตกต่างกันได้แล้วกำหนด.

ที่มีผลบังคับใช้ของสารอาหารที่ P ออกจาก biochar ได้สำรวจในทางที่แตกต่างกันจุดแข็งระดับ 10% , 20% , 30% , 40% และ 50% ของปริมาณสารอาหาร hoagland แก้ไขโซลูชัน( hns )100% แก้ไข hns ประกอบด้วย 4 มม.ไม่(ไม่มี 3 ) 2 , 6 มม. kno3 , 1 มม. NH 4 M ,และ 2 มม. mgso4 .

ทั้งหมดทางสถิติวิเคราะห์โดยซอฟต์แวร์ IBM spss 17.0 ( spss , Inc ., USA )สำหรับ Windows การวิเคราะห์แบบเที่ยวเดียวในเรื่องความปรวนแปร( anova )ถูกนำไปใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูลที่เกี่ยวกับผลกระทบของช่วงเวลา" The Snake Charmer " hns และเพิ่มพลังไอออนที่วาง Pการวิเคราะห์ตามแนวยาวถูกนำไปใช้กับรุ่นวิชาคิเนท - อิคซของการปล่อย P ความสำคัญถูกมอบหมายให้ที่ชั้น P ⩽ 0.05