Disc Diffusion Assay
The organic acids, formic acid, acetic acid, propionic acid,
and butyric acid, were used to make 5, 10, 25, 50, and
100% organic acid solutions by diluting with de-ionized
water.
The method used to inoculate bacteria on agar was based
on the Centers for Disease Control and Prevention’s method
for antimicrobial susceptibility testing of Vibrio cholerae
[1]. Muller–Hinton agar (MHA), supplemented with 2%
NaCl and adjusted to pH of 8.4, was used for disc diffusion
assays run in triplicate. Twenty-five milliliters of MHA was
poured to 100 ml petri plates to a 4 mm depth. Inocula were
prepared with one loopful of stock culture (V. harveyi,
ATCC 14126) into 10 ml APW (2% NaCl, pH 8.4) followed
by overnight incubation at 26–28C. Prior to streaking
inocula onto MHA, turbidity of the bacterial suspension in
APW was adjusted to absorbance (A) of 0.08–0.1 at wavelength
of 600 nm by adding APW. Each culture was
streaked over the entire MHA surface three times with
sterile cotton swabs. Within 10 min after streaking, a filter
paper (Whatman) disc (diameter, 7.03 mm) was placed on
the agar surface, and it was saturated with 2–3 ll of an
organic acid solution using a micropipette. Petri plates were
inverted, and incubated at 26C for 16–18 h. After incubation,
the diameter of the zones of complete inhibition was
measured and recorded in millimeters (Fig. 1).
Disc Diffusion Assay
กรดอินทรีย์กรด, กรดอะซิติกกรดโพรพิโอนิ
คและกรดบิวทิริกถูกนำมาใช้เพื่อให้ 5, 10, 25, 50 และ
100% สารละลายกรดอินทรีย์โดยเจือจางกับ de-แตกตัวเป็นไอออน
น้ำ.
วิธีการที่ใช้ในการ แบคทีเรียในอาหารเลี้ยงเชื้อฉีดวัคซีนมีพื้นฐานอยู่
บนศูนย์สำหรับวิธีการป้องกันและควบคุมโรคของ
สำหรับการทดสอบความไวต่อยาต้านจุลชีพของเชื้อ Vibrio cholerae
[1] มุลเลอร์-Hinton agar (หมา) เสริมด้วย 2%
โซเดียมคลอไรด์และปรับค่าพีเอช 8.4, ใช้สำหรับแผ่นดิสก์แพร่
ตรวจทำงานในเพิ่มขึ้นสามเท่า ยี่สิบห้ามิลลิลิตรเลดถูก
เท 100 มล. จาน Petri ถึงระดับความลึก 4 มม Inocula ถูก
จัดทำขึ้นด้วยหนึ่งของวัฒนธรรม loopful หุ้น ( V. harveyi,
ATCC 14126) เป็น 10 มล. APW (NaCl 2%, ค่า pH 8.4) ตาม
ด้วยการบ่มค้างคืนที่ 26-28C ก่อนที่จะพุ่ง
inocula บนเลดความขุ่นของการระงับแบคทีเรียใน
APW ปรับการดูดกลืนแสง (A) ของ 0.08-0.1 ที่ความยาวคลื่น
600 นาโนเมตรโดยการเพิ่ม APW วัฒนธรรมแต่ละ
ลายกว่าพื้นผิวเลดทั้งสามครั้งด้วย
ฝ้าย swabs หมัน ภายใน 10 นาทีหลังจากที่พุ่งตัวกรอง
กระดาษ (Whatman) Disc (เส้นผ่าศูนย์กลาง 7.03 มม) ถูกวางลงบน
พื้นผิววุ้นและมันก็อิ่มตัวกับ 2-3 LL ของ
สารละลายกรดอินทรีย์โดยใช้ไมโคร Petri แผ่นถูก
คว่ำและบ่มที่อุณหภูมิ 26C สำหรับ 16-18 ชั่วโมง หลังจากบ่ม
เส้นผ่าศูนย์กลางของโซนการยับยั้งสมบูรณ์ที่ถูก
วัดและบันทึกไว้ในมิลลิเมตร (รูปที่ 1).
การแปล กรุณารอสักครู่..

การทดสอบการแพร่กระจายแผ่นส่วนกรดอินทรีย์ , กรด , กรดอะซิติก , กรดโพรพิออนิก ,และ กรด butyric , ถูกใช้เพื่อให้ได้ 5 , 10 , 25 , 50 , และ100% อินทรีย์สารละลายกรดเจือจางกับอิออนโดยเดอน้ำการใช้วิธีการฉีดเชื้อบนอาหารวุ้นได้ตามที่ศูนย์ป้องกันและควบคุมโรคของวิธีสำหรับการทดสอบความไวของเชื้อ Vibrio cholerae[ 1 ] มุลเลอร์ - ฮินตัน ( MHA ) เสริมด้วย 2%โซเดียมคลอไรด์และปรับ pH 5.6 ใช้แผ่นดิสก์การแพร่สามารถใช้ทั้งสามใบ ยี่สิบห้ามิลลิลิตร MHA คือเท 100 ml Petri จานลึก 4 มิลลิเมตร inocula คือเตรียมพร้อมกับ loopful หุ้น ( V . harveyi วัฒนธรรม ,โดย 14126 ) ใน APW 10 ml ( 2% NaCl , pH 8.4 ) ตามโดยคืนบ่มที่ 26 – 28C ก่อน streakinginocula ลงมะ ความขุ่นของการระงับแบคทีเรียในคือการปรับค่า ( APW ) 0.08 และ 0.1 ที่ความยาวคลื่น600 nm โดยเพิ่ม APW . แต่ละวัฒนธรรม คือลายบนพื้นผิว MHA ทั้งสามครั้งด้วยผ้าฝ้าย swabs หมัน ภายใน 10 นาทีหลังจาก streaking , กรองกระดาษ ( whatman ) แผ่น ( เส้นผ่าศูนย์กลาง 7.03 มม. ) วางอยู่บนผิวหน้าวุ้น มันอิ่มตัวกับ 2 – 3 จะเป็นสารละลายกรดอินทรีย์โดยใช้ไมโครปิเปตต์ . จาน Petri )คว่ำและบ่มที่ 26c 16 – 18 ชั่วโมงหลังจากระยะเวลาเส้นผ่าศูนย์กลางของโซนสมบูรณ์ยับยั้งวัดและบันทึกในหน่วยมิลลิเมตร ( ภาพที่ 1 )
การแปล กรุณารอสักครู่..
