(CDK) complex, and Pho81 CDK inhibi

(CDK) complex, and Pho81 CDK inhibitor [14]. Escherichia coli phytases do not appear to
have a primary role in phosphate assimilation, even though they probably contribute to
periplasmic phosphate levels under certain conditions. In E. coli, the expression of
phytase is controlled by the appCBA operon containing the genes appA, cbdA, and cbdB.
Phosphate starvation and entry into stationary phase induces promoter appc and an
internal promoter appC [15]. Furthermore, at low glucose levels, the cAMPeCRP (cAMP
receptor protein) complex directly interacts with the appA promoter [16]. Phytase in
Bacillus amyloliquefaciens FZB45 is controlled by the PhoPR signal transduction system
by a member of the phosphate starvation-induced regulon [17]. The role of the global
regulator GacA/GacS and RpoS factor in the regulation of phytase activity in the rhizo-
spheric strain of Serratia plymuthica has also been reported [18]. Anaerobic rumen
bacteria are capable of producing phytases even in the presence of a high level of
phosphate [19]. This raises the question about the actual physiological function of this
enzyme in rumen bacteria. For several Raoultella spp. and Mitsuokella jalaludinii
phytate is needed to induce phytase production [20].
Apart from its role in simple degradation functions in metabolic pathways, microbial
phytases are involved in signal transduction, host defense, and cell division [21]. Many
prokaryotes produce inositol phosphate-degrading enzymes that serve diverse functions,
including phosphate scavenging and pathogenesis reported in Xanthomonas oryzae,
Xanthomonas campestris, and Pectobacterium wasabiae [22,23]. Inositol phosphate
phosphatases from some pathogenic members of the Enterobacteriaceae have been
shown to be important virulence factors after they are injected into the host cell by type
III secretion systems. Once inside the host cell, these phosphatases have the potential to
interfere with a variety of host cell signaling pathways, including those affecting cellular
survival and regulation of intracellular membrane trafficking [24,25].

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

คอมเพล็กซ์ (CDK) และยับยั้ง Pho81 CDK [14] Escherichia coli phytases ไม่มีบทบาทหลักในการดูดซึมฟอสเฟต แม้ว่าพวกเขาอาจนำไปสู่ระดับฟอสเฟต periplasmic ภายใต้เงื่อนไขบางอย่าง ใน E. coli การแสดงออกของโอสเตบิลจะถูกควบคุม โดย operon appCBA ที่ประกอบด้วยยีน appA, cbdA และ cbdBการอดอาหารฟอสเฟตและเข้าสู่เฟสที่อยู่นิ่งให้เกิด appc โปรโมเตอร์และภายในโปรโมเตอร์ appC [15] นอกจากนี้ ที่ระดับน้ำตาลต่ำ cAMPeCRP (ค่ายรีเซพเตอร์โปรตีน) คอมเพล็กซ์ตรง interacts กับโปรโมเตอร์ appA [16] โอสเตบิลในBacillus amyloliquefaciens FZB45 ถูกควบคุม โดยระบบจะส่งสัญญาณ PhoPRโดยสมาชิกของฟอสเฟตที่เกิดความอดอยาก regulon [17] บทบาทของโลกควบคุม GacA/GacS และ RpoS ปัจจัยในการควบคุมของกิจกรรมโอสเตบิลใน rhizo-ทรงพันธุ์ Serratia plymuthica ยังได้รับรายงาน [18] อาหารที่ไม่ใช้ออกซิเจนแบคทีเรียสามารถผลิต phytases แม้ในระดับสูงฟอสเฟต [19] คำถามเกี่ยวกับฟังก์ชันทางสรีรวิทยาเกิดขึ้นจริงนี้เกิดเอนไซม์ในแบคทีเรียในรูเมน ออกซิเจน Raoultella และ Mitsuokella jalaludinii หลายphytate จำเป็นเพื่อก่อให้เกิดการผลิตโอสเตบิล [20]นอกจากบทบาทในการทำงานย่อยสลายง่ายในทางเดินเผาผลาญ จุลินทรีย์phytases เกี่ยวข้องในการส่งสัญญาณ โฮสต์ป้องกัน และการแบ่งเซลล์ [21] หลายprokaryotes ผลิตทอเอนไซม์ที่ใช้ย่อยสลายฟอสเฟตที่ทำหน้าที่หลากหลายฟังก์ชันรายงานรวมทั้งฟอสเฟต scavenging และพยาธิใน oryzae ทดสอบพันธุ์อ้อยทดสอบพันธุ์อ้อย campestris และ Pectobacterium wasabiae [22,23] ฟอสเฟตทอphosphatases จาก Enterobacteriaceae บางทำให้เกิดโรคได้แสดงเป็น ปัจจัยของความรุนแรงที่สำคัญหลังจากมีฉีดเข้าสู่เซลล์โฮสต์ โดยชนิดระบบการหลั่ง III เมื่อภายในเซลล์โฮสต์ phosphatases เหล่านี้มีศักยภาพในการรบกวนเซลล์โฮสต์รวมทั้งส่งผลกระทบต่อเซลลูลาร์ เส้นทางการส่งสัญญาณที่หลากหลายอยู่รอดและการควบคุมของเมมเบรน intracellular ค้า [24,25]

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

(CDK) ที่ซับซ้อนและ Pho81 CDK ยับยั้ง [14] phytases Escherichia coli ดูเหมือนจะไม่ได้
มีบทบาทหลักในการดูดซึมฟอสเฟตถึงแม้ว่าพวกเขาอาจจะนำไปสู่
ระดับฟอสเฟต periplasmic ภายใต้เงื่อนไขบาง ใน E. coli, แสดงออกของ
phytase ถูกควบคุมโดย operon appCBA ที่มียีน APPA, cbdA และ Cbdb ได้.
อดอยากฟอสเฟตและเข้าสู่เฟสเจือจาง APPC ก่อการและ
ผู้ก่อการภายใน APPC [15] นอกจากนี้ที่ระดับน้ำตาลต่ำ cAMPeCRP (cAMP
รับโปรตีน) ที่ซับซ้อนโดยตรงโต้ตอบกับผู้ก่อการ APPA [16] phytase ใน
Bacillus amyloliquefaciens FZB45 ถูกควบคุมโดยระบบสัญญาณ PhoPR
โดยสมาชิกของฟอสเฟต regulon ความอดอยากที่เกิดขึ้น [17] บทบาทของโลก
ควบคุม GacA / GacS และปัจจัย RPOs ในการควบคุมของกิจกรรม phytase ใน rhizo-
สายพันธุ์มีรูปทรงกลมของ Serratia plymuthica ยังได้รับรายงาน [18] แบบไม่ใช้ออกซิเจนในกระเพาะหมัก
แบคทีเรียที่มีความสามารถในการผลิต phytases แม้ในที่ที่มีระดับสูงของ
ฟอสเฟต [19] นี้ทำให้เกิดคำถามเกี่ยวกับการทำงานทางสรีรวิทยาที่เกิดขึ้นจริงของเรื่องนี้
เอนไซม์ในแบคทีเรียในกระเพาะรูเมน หลาย Raoultella เอสพีพี และ Mitsuokella jalaludinii
ไฟเตทเป็นสิ่งจำเป็นที่จะทำให้เกิดการผลิตไฟเตส [20].
นอกเหนือจากบทบาทในฟังก์ชั่นการย่อยสลายง่ายในการเผาผลาญเซลล์, จุลินทรีย์
phytases มีส่วนร่วมในการส่งสัญญาณป้องกันโฮสต์และการแบ่งเซลล์ [21] หลาย
prokaryotes ผลิตเอนไซม์ย่อยสลายฟอสเฟตทอที่ให้บริการฟังก์ชั่นที่หลากหลาย
รวมทั้งการขับฟอสเฟตและการเกิดโรครายงานใน Xanthomonas oryzae,
Xanthomonas campestris และ Pectobacterium wasabiae [22,23] Inositol ฟอสเฟต
ฟอสฟาที่ทำให้เกิดโรคจากสมาชิกบางส่วนของ Enterobacteriaceae ได้รับการ
แสดงให้เห็นว่าปัจจัยความเป็นพิเศษที่สำคัญหลังจากที่พวกเขาได้รับการฉีดเข้าไปในเซลล์โฮสต์โดยแบ่งตามชนิด
ที่สามระบบการหลั่ง เมื่อภายในเซลล์โฮสต์, ฟอสฟาเหล่านี้มีศักยภาพที่จะ
ยุ่งเกี่ยวกับความหลากหลายของเซลล์โฮสต์การส่งสัญญาณทางเดินรวมทั้งผู้ที่มีผลกระทบต่อโทรศัพท์มือถือกับ
การอยู่รอดและกฎระเบียบของการค้าภายในเซลล์เมมเบรน [24,25]

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

( CDK ) ที่ซับซ้อน และ pho81 CDK ยับยั้ง [ 14 ] Escherichia coli phytases ไม่ปรากฏมีบทบาทหลักในการดูดซึมฟอสเฟต ถึงแม้ว่าพวกเขาอาจมีส่วนร่วมperiplasmic ฟอสเฟตระดับภายใต้เงื่อนไขบางอย่าง ใน E . coli , การแสดงออกของและถูกควบคุมโดย appcba โอเปอรอนที่มียีน อัปป้า CBDA และ cbdb .การอดอาหาร และเข้าสู่ระยะ stationary ) ฟอสเฟตและโปโมเตอร์ภายในการโป [ 15 ] นอกจากนี้ ในระดับกลูโคสต่ำ campecrp ( ค่ายโปรตีนตัวรับ ) ที่ซับซ้อนโดยตรงติดต่อกับโปรโมเตอร์ อัปป้า [ 16 ] และในบาซิลลัส amyloliquefaciens fzb45 ถูกควบคุมโดย phopr สัญญาณผ่านระบบโดยสมาชิกของการอดอาหารและฟอสเฟตปกติ [ 17 ] บทบาทของส่วนกลางควบคุมและ gaca / gacs rpos ปัจจัยในการควบคุมการใช้ประโยชน์ใน rhizo - กิจกรรมสายพันธุ์ spheric ของเซอร์ราเทีย plymuthica ยังได้รับรายงาน [ 18 ] ไม่รูเมนแบคทีเรียมีความสามารถในการผลิต phytases ต่อหน้าระดับสูงของแม้ฟอสเฟต [ 19 ] นี้เพิ่มคำถามเกี่ยวกับการทำงานทางสรีรวิทยาที่เกิดขึ้นจริงนี้เอนไซม์ในอาหารแบคทีเรีย หลาย raoultella spp . และ mitsuokella jalaludinii: เป็นสิ่งจำเป็นเพื่อก่อให้เกิดการผลิตเอนไซม์ไฟเตส [ 20 ]นอกเหนือจากบทบาทในการทำงานการเผาผลาญเซลล์จุลินทรีย์ในการย่อยสลายง่าย ๆ ,phytases เกี่ยวข้องในการแปรสัญญาณป้องกันโฮสต์ และการแบ่งเซลล์ [ 21 ] หลายโปรคาริโอทส์ผลิตเอนไซม์ที่ทำหน้าที่ย่อยสลายอลฟอสเฟตฟังก์ชันที่หลากหลายรวมถึงการสร้างรายงานและฟอสเฟตซึ่งใน oryzae ,ชนิดของเชื้อ และ pectobacterium wasabiae [ 22,23 ] ไอโนซิทอล ฟอสเฟตลาร์จากสมาชิกบางคนเชื้อโรคของผิดเพี้ยนได้เป็นปัจจัยที่ก่อให้เกิดความรุนแรงที่สำคัญหลังจากที่พวกเขาจะถูกฉีดเข้าไปในเซลล์โฮสต์ตามประเภทระบบการหลั่ง 3 . เมื่อเข้าไปในเซลล์เจ้าบ้านดิเหล่านี้มีศักยภาพในการรบกวนมีความหลากหลายของเซลล์โฮสต์สัญญาณเซลล์ รวมทั้งมีผลต่อเซลล์การอยู่รอดและระเบียบเซลล์ของเยื่อ 24,25 การค้า [ ]