2.1.1. Shoot inductionAdventitious shoot formation directly from expla การแปล - 2.1.1. Shoot inductionAdventitious shoot formation directly from expla ไทย วิธีการพูด

2.1.1. Shoot inductionAdventitious

2.1.1. Shoot induction
Adventitious shoot formation directly from explants is definitely
a better approach than the callus method for clonal propagation of
plant species. Often callus produces abnormal plants while adventitious
shoots form uniform diploid individuals (Bhojwani and
Razdan, 1996). Primary regeneration studies in cyclamen focused
on the elimination of microbial contamination and then on vegetative
propagation. Different types of explants have been used
for shoot regeneration in cyclamen cultivars. Wainwright and
Harwood (1985) used aseptic seedlings for tissue culture. Hawkes
and Wainwright (1987) reported a method for adventitious leaf (i.e.,
shoot) induction with cotyledon, tuber, petiole and root explants
of aseptic seedlings on media containing both 6-benzyladenine
(BA; used synonymously throughout this review with BAP or
6-benzylaminopurine) and -naphthaleneacetic acid (NAA) in different
combinations. Cotyledon and tuber explants were most
capable of leaf regeneration compared with root and petiole
explants. Murasaki and Tsurushima (1988) used etiolated petioles
as explants and numerous adventitious shoots differentiated;
the authors were able to completely eliminate microbial contamination.
Schwenkel and Grunewaldt (1988) produced shoots from
peduncle explants. Dillen et al. (1996) investigated shoot induction
on long-term callus, which was obtained from leaf explants.
To obtain callus they cultured leaves on Murashige and Skoog
(1962) (MS) medium containing 2 mg l−1 NAA, 3.2–4 mg l−1 BA and
3.2–4 mg l−1 kinetin (Kin). Callus, which formed after 17 weeks,
was subcultured three times for a period of about 10 weeks after
callus was transferred to media with different PGRs (2 mg l−1 NAA,
4 mg l−1 BA and 4 mg l−1 Kin) and subcultured five times on this
medium. Each subculture lasted 6–7 weeks. The outer layer of callus
was brown and non-organogenic while yellowish callus was
highly organogenic. Organogenic tissue retained its organogenic
competence for at least two years through subcultures. Karam and
Al-Majathoub (2000b) studied wild C. persicum using mature tissue
(leaf disc, petiole, petal, and peduncle) cultured on MS medium
supplemented with BA or thidiazuron (TDZ). No shoots formed
on media with BA but in media containing TDZ, shoots formed,
although the success of the process depended significantly on
explant type, the best explant being the peduncle. Direct regeneration
was also possible from leaf explants originating from aseptic
seedlings on medium supplemented with NAA and TDZ in wild
cyclamen from Jordan (Karam and Al-Majathoub, 2000a). Moreover,
direct shoot regeneration was possible from tuber and leaf
explants excised from aseptic seedlings. The greatest percentage
shoot regeneration was from tuber sections cultured on medium
supplemented with BA or TDZ while petiole explants could not produce
shoots (Abu-Qaoud, 2004). In C. mirabile, shoots were obtained
from only tuber tissue when cultured on Bourgin and Nitsch (1967)
(BN) media containing indole-3-acetic acid (IAA) or NAA and Kin
(Yamaner and Erdag, 2008). More details regarding shoot induction
are shown in Table 1.
Micropropagation through callus induction in many cases
resulted in somaclonal variation. Adventitious shoots can obtain
directly from tissue without an intermediate callus phase. Thus, it
is a suitable means to mass produce true-to-type plants, although
the method is slow and laborious.
0/5000
จาก: -
เป็น: -
ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]
คัดลอก!
2.1.1 การยิงเหนี่ยวนำผู้แต่ง adventitious ยิงตรงจาก explants เป็นแน่นอนวิธีที่ดีกว่าวิธีให้สำหรับเผยแพร่ clonalสายพันธ์พืช มักจะให้ผลิตผลปกติพืชขณะ adventitiousหน่อแบบฟอร์มบุคคลรูป diploid (Bhojwani และRazdan, 1996) เน้นศึกษาฟื้นฟูหลัก cyclamenในการกำจัด การปนเปื้อนจุลินทรีย์ แล้ว บนผักเรื้อรังเผยแพร่ Explants ชนิดต่าง ๆ การใช้สำหรับยิงฟื้นฟูใน cyclamen พันธุ์ เวนไรท์ และHarwood (1985) ใช้กล้าไม้ที่เข้มข้นในเนื้อเยื่อ Hawkesและเวนไรท์ (1987) รายงานวิธีการใบ adventitious (เช่นเหนี่ยวนำยิง) กับ explants ต่อ หัว petiole และรากของกล้าไม้ที่เข้มข้นบนสื่อที่ประกอบด้วยทั้ง 6-benzyladenine(BA ใช้ตลอดเห็นกับ BAP synonymously หรือ6-benzylaminopurine) และกรด - naphthaleneacetic (NAA) ในที่อื่นชุด ต่อและหัว explants ได้มากที่สุดเปรียบเทียบความสามารถในการฟื้นฟูใบกับรากและ petioleexplants ใช้ etiolated petioles มุและ Tsurushima (1988)explants และถ่ายภาพ adventitious มากมายแตกต่างกันผู้เขียนก็สามารถกำจัดการปนเปื้อนจุลินทรีย์อย่างสมบูรณ์Schwenkel และ Grunewaldt (1988) ผลิตถ่ายภาพจากpeduncle explants Dillen et al. (1996) สอบสวนยิงเหนี่ยวนำในระยะยาวให้ ซึ่งได้รับจาก explants ใบรับให้ พวกเขาอ่างใบ Murashige และ Skoogปานกลาง (1962) (MS) 2 มิลลิกรัมที่ประกอบด้วย NAA l−1, 3.2 – 4 mg l−1 BA และ3.2 – 4 mg l−1 kinetin (กิน) แคลลัส ซึ่งเกิดขึ้นหลังจากสัปดาห์ที่ 17มี subcultured สามครั้งในระยะเวลาประมาณ 10 สัปดาห์หลังจากให้ถูกโอนย้ายไปยังสื่อต่าง ๆ PGRs (2 มิลลิกรัม l−1 NAA4 mg l−1 BA และ 4 mg l−1 กิน) และ subcultured ห้าครั้งในนี้สื่อ แต่ละวัฒนธรรมกินเวลา 6-7 สัปดาห์ ชั้นนอกของแคลลัสมีสีน้ำตาล และไม่มี organogenic ในขณะให้สีเหลืองสูง organogenic เนื้อเยื่อ organogenic สะสมของ organogenicความสามารถอย่างน้อยสองปีผ่าน subcultures Karam และอัล-Majathoub (2000b) ศึกษา C. persicum ป่าที่ใช้เนื้อเยื่อเติบโต(ใบดิสก์ petiole กลีบดอกไม้ และ peduncle) อ่างบนกลาง MSเสริม ด้วย BA หรือ thidiazuron (TDZ) ถ่ายภาพไม่เกิดขึ้นสื่อ กับ BA แต่ ในสื่อประกอบด้วย TDZ ยอดจัดแม้ว่าความสำเร็จของกระบวนการพร้อมอย่างมีนัยสำคัญในexplant ชนิด explant สุดถูก peduncle ฟื้นฟูโดยตรงยังเป็นไปได้จาก explants ใบที่เกิดจากความเข้มข้นกล้าไม้บนสื่อเสริม ด้วย NAA และ TDZ ในป่าcyclamen จาก Jordan (Karam และ Al-Majathoub, 2000a) นอกจากนี้ฟื้นฟูการยิงโดยตรงเป็นไปได้จากหัวและใบexplants excised จากกล้าไม้ที่เข้มข้น เปอร์เซ็นต์มากที่สุดฟื้นฟูยิงได้จากส่วนหัวอ่างบนสื่อกลางเสริม ด้วย BA หรือ TDZ ในขณะที่ไม่สามารถสร้าง petiole explantsหน่อ (บู-Qaoud, 2004) ได้รับยอดใน C. mirabileจากเฉพาะหัวเยื่อเมื่ออ่าง Bourgin และ Nitsch (1967)สื่อ (พัน) ที่ประกอบด้วยกรดอินโดล-3-อะซิติก (IAA) หรือ NAA และกิน(Yamaner และ Erdag, 2008) รายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับยิงเหนี่ยวนำจะแสดงในตารางที่ 1Micropropagation โดยเหนี่ยวนำให้ในหลายกรณีส่งผลให้เกิดความผันแปร somaclonal ถ่ายภาพ adventitious สามารถรับโดยตรงจากเนื้อเยื่อโดยระยะปานกลางให้มี ดังนั้น จึงมีจำนวนมากผลิตจริงชนิดพืช วิธีการเหมาะสมวิธีการคือช้า และลำบาก
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]
คัดลอก!
2.1.1 ยิงเหนี่ยวนำ
การก่อบังเอิญถ่ายได้โดยตรงจากชิ้นแน่นอน
วิธีการที่ดีกว่าวิธีแคลลัสเพื่อการเผยแผ่ clonal ของ
พันธุ์พืช แคลลัสมักจะผลิตพืชที่ผิดปกติในขณะที่บังเอิญ
หน่อบุคคลในรูปแบบซ้ำเครื่องแบบ (Bhojwani และ
Razdan, 1996) การฟื้นฟูการศึกษาประถม cyclamen ที่มุ่งเน้น
ในการกำจัดการปนเปื้อนของเชื้อจุลินทรีย์และจากนั้นในพืช
ขยายพันธุ์ ชนิดที่แตกต่างกันของชิ้นส่วนได้ถูกนำมาใช้
สำหรับการฟื้นฟูยิงพันธุ์ cyclamen โควต้าและ
ฮาร์วู้ด (1985) ใช้ต้นกล้าที่ปลอดเชื้อสำหรับการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ ฮอว์ค
และเวนไรท์ (1987) รายงานวิธีการใบบังเอิญ (เช่น
ยิง) การเหนี่ยวนำที่มีใบเลี้ยง, หัว, ก้านใบและชิ้นส่วนราก
ของต้นกล้าปลอดเชื้อในสื่อที่มีทั้ง 6 benzyladenine
(BA; ใช้ synonymously ตลอดความคิดเห็นนี้กับ BAP หรือ
6 benzylaminopurine) และ? กรด -naphthaleneacetic (NAA) ที่แตกต่างกันในการ
รวมกัน ใบเลี้ยงหัวและชิ้นส่วนใหญ่
มีความสามารถในการฟื้นฟูเมื่อเทียบกับใบรากและก้านใบ
ชิ้น มูราซากิและ Tsurushima (1988) ที่ใช้ก้านใบ etiolated
เป็นชิ้นและยอดบังเอิญจำนวนมากที่แตกต่าง;
. ผู้เขียนก็สามารถที่จะสมบูรณ์กำจัดการปนเปื้อนของเชื้อจุลินทรีย์
และ Schwenkel Grunewaldt (1988) ผลิตจากหน่อ
ดอกชิ้น Dillen et al, (1996) การตรวจสอบการเหนี่ยวนำการถ่าย
แคลลัสในระยะยาวซึ่งได้รับมาจากชิ้นส่วนใบ.
ที่จะได้รับแคลลัสที่พวกเขาเลี้ยงบนอาหารสูตร Murashige ใบและ Skoog
(1962) (MS) ที่มีขนาดกลาง 2 มิลลิกรัมต่อลิตร-1 NAA, 3.2-4 มิลลิกรัม l- 1 ปริญญาตรีและ
3.2-4 มิลลิกรัม l-1 kinetin (ญาติ) แคลลัสซึ่งเกิดขึ้นหลังจาก 17 สัปดาห์ที่ผ่านมา
ได้รับการเลี้ยงสามครั้งเป็นระยะเวลาประมาณ 10 สัปดาห์หลังจากที่
แคลลัสได้รับการถ่ายโอนไปยังสื่อที่มี PGRs แตกต่างกัน (2 มิลลิกรัมต่อลิตร NAA-1,
4 มิลลิกรัมต่อลิตร BA-1 และ 4 มิลลิกรัมต่อลิตร Kin-1) และเลี้ยงห้าครั้งเกี่ยวกับเรื่องนี้
กลาง วัฒนธรรมแต่ละกินเวลา 6-7 สัปดาห์ที่ผ่านมา ชั้นนอกของแคลลัส
เป็นสีน้ำตาลและไม่ organogenic แคลลัสในขณะที่สีเหลืองเป็น
organogenic สูง เนื้อเยื่อ Organogenic สะสม organogenic ของ
ความสามารถอย่างน้อยสองปีที่ผ่านมาวัฒนธรรม รามและ
อัล Majathoub (2000b) การศึกษาป่าซี persicum โดยใช้เนื้อเยื่อผู้ใหญ่
(แผ่นใบก้านใบกลีบดอกและดอก) เพาะเลี้ยงบนอาหารสูตร MS
ที่เติม BA หรือ thidiazuron (TDZ) หน่อที่เกิดขึ้นไม่
เกี่ยวกับสื่อที่มี BA แต่ในสื่อที่มี TDZ, หน่อเกิดขึ้น
แม้ว่าความสำเร็จของกระบวนการขึ้นอย่างมีนัยสำคัญใน
ประเภทชิ้นส่วน, ชิ้นที่ดีที่สุดเป็นดอก ฟื้นฟูโดยตรง
ก็ยังเป็นไปได้จากใบชิ้นปลอดเชื้อที่มาจาก
ต้นกล้าในสื่อเสริมด้วย NAA และ TDZ อยู่ในป่า
cyclamen จาก Jordan (รามและอัล Majathoub, 2000a) นอกจากนี้
การฟื้นฟูยิงโดยตรงเป็นไปได้จากหัวและใบ
ตัดชิ้นส่วนจากต้นกล้าที่ปลอดเชื้อ ที่ยิ่งใหญ่ที่สุดร้อยละ
ฟื้นฟูยิงมาจากส่วนหัวเพาะเลี้ยงบนอาหาร
เสริมด้วยปริญญาตรีหรือ TDZ ขณะที่ก้านใบชิ้นส่วนไม่สามารถผลิต
หน่อ (อาบู Qaoud, 2004) ในซี mirabile หน่อที่ได้รับ
จากเนื้อเยื่อพืชเฉพาะเมื่อเลี้ยงบน Bourgin และ Nitsch (1967)
(BN) สื่อที่มี indole-3-กรดอะซิติก (IAA) หรือ NAA และญาติ
(Yamaner และ Erdag 2008) รายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับการเหนี่ยวนำการถ่ายภาพ
ที่จะแสดงในตารางที่ 1
การขยายผ่านการเหนี่ยวนำแคลลัสในหลายกรณี
ผลในการแปรผันของเซลล์ร่างกาย หน่อบังเอิญได้รับ
โดยตรงจากเนื้อเยื่อโดยไม่ต้องแคลลัสระยะกลาง ดังนั้นจึง
เป็นวิธีการที่เหมาะสมในการผลิตมวลจริงมีพืชชนิดแม้ว่า
วิธีการที่ช้าและลำบาก
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]
คัดลอก!
2.1.1 . การยิงการยิง
ปากดีโดยตรงจากอาหารเป็นมั่นเหมาะ
แนวทางที่ดีกว่าวิธีการแคลลัสสำหรับการขยายพันธุ์ของ
ชนิดพืช อาหารพืชผิดปกติ ขณะที่ยอดผลิตมักจะปากดี
แบบฟอร์มบุคคลซ้ำชุด ( bhojwani และ
razdan , 1996 ) การปฏิรูปการศึกษาที่เน้นหลักใน Cyclamen
ในการขจัดการปนเปื้อนจุลินทรีย์และจากนั้นในการขยายพันธุ์พืช
. ประเภทที่แตกต่างกันของชิ้นส่วนได้ถูกใช้เพื่อการยิงในพันธุ์
cyclamen . เวนไรท์และ
Harwood ( 1985 ) ใช้สำหรับปลอดเชื้อต้นกล้าเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ ฮอว์ค
เวนไรท์ ( 1987 ) และรายงานวิธีการใบปากดี ( เช่น
ยิง ) การเหนี่ยวนำด้วยใบและรากหัว ก้านใบ , เนื้อเยื่อ
ต้นกล้าปลอดเชื้อในสื่อที่มีทั้ง 6-benzyladenine
( b ; ใช้มีความหมายเหมือนกันตลอดทบทวนเรื่องนี้กับ BAP หรือ
6-benzylaminopurine ) และ  - ไพร่ฟ้าประชาชน acid ( NAA ) ในชุดค่าผสมที่แตกต่างกัน

และเนื้อเยื่อใบเลี้ยงหัวที่สุด
สามารถงอกราก และใบเทียบกับก้านใบ
อาหาร . มุราซากิ และ tsurushima ( 1988 ) ใช้ etiolated ก้านใบ
เป็นอาหารและยิงปากดีมากมายแตกต่าง ;
ผู้เขียนสามารถที่จะสมบูรณ์กำจัดการปนเปื้อนจุลินทรีย์ .
schwenkel และ grunewaldt ( 1988 ) ผลิตหน่อจาก
ก้านเนื้อเยื่อ . dillen et al . ( 1996 ) ได้ยิงเหนี่ยว
บนแคลลัสในระยะยาวซึ่งได้จากเนื้อเยื่อใบ
ขอรับแคลลัสบนอาหารสูตร Murashige and Skoog พวกเขาเลี้ยงใบ
( 2505 ) ( MS ) 2 มิลลิกรัมต่อลิตรอาหารที่มี NAA − 1 , − 1 / 3.2 – 4 มิลลิกรัม และ BA 4 มก
3.2 – L − 1 ส่วน ( ญาติ ) แคลลัส ซึ่งเกิดขึ้นหลังจาก 17 สัปดาห์
คือ subcultured สามครั้ง เป็นระยะเวลา 10 สัปดาห์ หลังจากได้รับการโอนไปยังสื่อกับ
แคลลัสของต่าง ๆ ( 2 mg L − 1 NAA ,
4 L − 1 มิลลิกรัมต่อลิตร BA 4 มก. L − 1 คิน ) และ subcultured ห้าครั้งในสื่อนี้

แต่ละวัฒนธรรมกินเวลา 6 - 7 สัปดาห์
การแปล กรุณารอสักครู่..
 
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.

Copyright ©2025 I Love Translation. All reserved.

E-mail: