2. Materials and methods2.1. Microo

2. Materials and methods
2.1. Microorganism and spawn preparation
Pleurotus ostreatus, obtained from the Mushroom Spawn Research
Center of Huazhong Agricultural University (Wuhan
City, Hubei, China), was grown on the potato dextrose agar
(PDA 200 g/l diced potatoes; 20 g/l glucose; 15 g/l agar) medium
at 25 C for regular subculture. Oyster mushroom spawn
was prepared in 850-ml polypropylene plastic bottles filled
with cotton seed hull 87%, wheat bran 10%, sucrose 1%, plaster
stone 1%, and calcium superphosphate 1% (w/w, in terms
of dry weight), which were widely used in central China, and
then autoclave sterilized at 121 C for 80 min. After cooling
down to room temperature, the sterilized cotton seed hulls of
every bottle were inoculated with 5 cm2 mycelial agar discs.
The spawn was incubated in the laboratory at 26 ±2 C and
70% relative humidity for two weeks.
2.2. Substrate preparation, inoculation, and incubation
The straws were completely dried under the Sun, and then
chopped into 4 cm lengths, and soaked in water for overnight
before substrate preparation. After draining the excess water,
they were used as substrate for replacing partially wheat bran
and cotton seed hull. In order to determine suitable substrates
and suitable ratios for the cultivation of oyster mushroom, various
materials and combination substrates were tested (Table 1).
Water content of the final mixture was adjusted to 65%
(w/w). The sterilized substrate cultivation was that the mixture
was filled into polyethylene bags and autoclave sterilized at
121 C for 80 min. After the substrates were cooled down to
room temperature, they were inoculated with 5 g of oyster
mushroom spawn. The non-sterilized substrate cultivation was
that three layers of 5 g of oyster mushroom spawn per layer were
inoculated in the bottom, middle and surface of substrate when
the mixture was filled into polyethylene bags. Twenty replicate
polyethylene bags were used for each substrate.
The inoculated substrates were kept in a spawn running
room at 25 C and 70% relative humidity under dark conditions.
The spawn run period to total colonization (the number
of days from inoculation to complete colonization of the substrate
by the mycelium) was recorded. The mycelial growth
rate was determined as the height (mm) of mycelia in the colonized
culture bag divided by the incubation time (days).
2.3. Cropping, harvest and determination of biological efficiency
After the primordia appeared on the top layer of substrate in
each polyethylene bag, the bag was moved to a cropping room
in which the temperature was controlled at 28 C, relative
humidity at 80% or above, and light intensity at about
100 lux. The cropping room was watered intermittently to
maintain the moisture during the cropping time.
Mushrooms were harvested when the mushroom cap surface
were flat to slightly up-rolled at the cap margins. The harvested
fruiting bodies in each bag were then counted and weighed. At
the end of the harvest period, the accumulated data were used
to calculate the biological efficiency and mushroom weight.
Biological efficiency (%)= eight of fresh mushrooms harvested
per bag/weight of dry substrate per bag · 100.
Mushroom weight (g) = Total weight of harvested fresh
mushrooms per bag/total number of mushrooms harvested
per bag.
2.4. Substrate analysis
Tested samples of substrate after sterilization were dried at
60 C to a constant weight, then ground into a coarse powder
(8 openings/cm) using a mill. The method used to obtain carbon
content was that of Nelson and Sommers (1982) and nitrogen
content was measured using the Kjeldahl method. Then the carbon/
nitrogen ratio of each substrate was calculated.
2.5. Statistical analysis
Differences between the means of individual groups were assessed
by one-way ANOVA with Duncan’s multiple range tests.
3. Results
3.1. Chemical composition and colonization of different
substrates
C/N ratio varied considerably among substrates (Table 1). The
mycelial growth rate, surface mycelial density, total colonization
period and days from bag opening to primordia formation

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2. วัสดุและวิธีการ
2.1 เตรียมจุลินทรีย์และวางไข่
เห็ดนาง ostreatus ได้รับจากการวิจัยวางไข่เห็ด
ศูนย์ Huazhong เกษตรมหาวิทยาลัย (ฮั่น
เมือง หูเป่ย จีน), ถูกปลูกใน agar ขึ้นมันฝรั่ง
(มันฝรั่ง 200 g/l วุ้น PDA กลูโคส 20 g/l; agar 15 g/l) กลาง
ที่ 25 C สำหรับวัฒนธรรมปกติ วางไข่หอยนางรมเห็ด
ถูกเตรียมใน 850 ml polypropylene พลาสติกขวดเติม
ฝ้ายเมล็ดฮัลล์ 87% ข้าวสาลีรำ 10% ซูโครส 1% ปูน
หิน 1% และแคลเซียม superphosphate 1% (w/w ใน
ของน้ำหนักแห้ง), ซึ่งถูกใช้อย่างกว้างขวางในจีนกลาง และ
แล้วด้วย sterilized ที่ 121 C สำหรับ 80 นาที หลังจากทำความเย็น
ลงอุณหภูมิห้อง hulls เมล็ดฝ้าย sterilized ของ
ทุกขวดถูก inoculated กับ 5 cm2 mycelial agar ดิสก์
วางไข่ถูก incubated ในห้องปฏิบัติการที่± 2 26 C และ
ความชื้นสัมพัทธ์ 70% สำหรับสองสัปดาห์
2.2 เตรียมพื้นผิว inoculation และบ่ม
หลอดได้แห้งอย่างสมบูรณ์ภายใต้ดวงอาทิตย์ แล้ว
สับลงในความยาว 4 ซม. และนำไปแช่ในน้ำพรรณไม้หลากหลายชนิด
ก่อนขั้นตอนการเตรียมการ หลังจากระบายน้ำส่วนเกิน,
พวกเขาใช้เป็นพื้นผิวสำหรับการแทนที่โป่งบางส่วน
และฮัลล์เมล็ดฝ้าย เพื่อกำหนดพื้นผิวเหมาะ
และอัตราส่วนที่เหมาะสมสำหรับการเพาะปลูกเห็ดหอยนางรม ต่าง ๆ
ทดสอบวัสดุและพื้นผิวรวมกัน (ตารางที่ 1) .
น้ำเนื้อหาส่วนผสมสุดท้ายถูกปรับ 65%
(w/w) เพาะปลูก sterilized พื้นผิวที่มีส่วนผสม
มีการกรอกข้อมูลลงในถุงพลาสติกและด้วย sterilized ที่
C 121 สำหรับ 80 min หลังจากพื้นผิวได้ระบายความร้อนด้วยลง
ที่อุณหภูมิห้อง พวกเขาก็ inoculated กับ g 5 หอยนางรม
เห็ดวางไข่ ปลูกพื้นผิว sterilized ไม่ถูก
g 5 ของเห็ดหอยนางรมวางไข่ต่อชั้นสามชั้นถูก
inoculated ด้านล่าง กลาง และพื้นผิวของพื้นผิวเมื่อ
ส่วนผสมมีการกรอกข้อมูลลงในถุงพลาสติก ทำซ้ำ 20
ถุงพลาสติกใช้สำหรับพื้นผิวแต่ละ
พื้นผิว inoculated ถูกเก็บไว้ในการวางไข่ที่ทำงาน
ห้องที่ 25 C และ 70% ชื้นภายใต้เงื่อนไขเข้มขึ้น
ระยะวางไข่ทำให้อาณานิคมรวม (หมายเลข
วันจาก inoculation สมบูรณ์สนามของพื้นผิว
โดย mycelium) บันทึก เติบโต mycelial
อัตรากำหนดเป็นความสูง (mm) ของ mycelia ในการยึดครอง
กระเป๋าวัฒนธรรมหารบ่มที่เวลา (วัน) .
2.3 ครอบ เก็บเกี่ยว และการวัดประสิทธิภาพทางชีวภาพ
หลังจาก primordia ปรากฏบนชั้นบนสุดของพื้นผิวใน
แต่ละถุงพลาสติก ถุงถูกย้ายไปห้องครอบ
ในที่ ถูกควบคุมอุณหภูมิที่ 28 C ญาติ
ความชื้น ที่ 80% หรือเหนือ และความเข้มแสงที่เกี่ยวกับ
100 ลักซ์ ห้องครอบถูกผู้เป็นระยะ ๆ ถึง
รักษาความชื้นในการครอบครั้ง.
เห็ดถูกเก็บเกี่ยวเมื่อเห็ดที่ฝาผิว
ถูกแบนเล็กน้อยขึ้นม้วนที่หมวกขอบ การเก็บเกี่ยวผลผลิต
fruiting ศพในแต่ละถุงแล้วตรวจนับ และชั่งน้ำหนัก ใน
จุดสิ้นสุดของรอบระยะเวลาการเก็บเกี่ยว ใช้ข้อมูลสะสม
คำนวณชีวภาพประสิทธิภาพและน้ำหนักเห็ด.
ชีวภาพประสิทธิภาพ (%) = 8 เห็ดสดที่เก็บเกี่ยว
ต่อกระเป๋า/น้ำหนักของพื้นผิวแห้งต่อกระเป๋า· 100.
เห็ดน้ำหนัก (กรัม) =น้ำหนักรวมของสดเก็บเกี่ยว
เห็ดต่อกระเป๋า/รวมจำนวนเห็ดที่เก็บเกี่ยว
ต่อกระเป๋า
2.4 การวิเคราะห์พื้นผิว
ตัวอย่างพื้นผิวหลังจากฆ่าเชื้อทดสอบได้แห้งที่
C 60 น้ำหนักคง พื้นดินแล้วเป็นผงหยาบ
(8 ช่อง/cm) ใช้เป็นโรงงานผลิต วิธีที่ใช้ในการรับคาร์บอน
เนื้อหาถูกที่เนลสัน Sommers (1982) และไนโตรเจน
เนื้อหาถูกวัดโดยวิธี Kjeldahl แล้วคาร์บอน /
คำนวณอัตราส่วนไนโตรเจนของแต่ละพื้นผิว.
2.5 วิเคราะห์ทางสถิติ
ความแตกต่างระหว่างวิธีการของแต่ละกลุ่มได้ประเมิน
โดยวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบทางเดียวกับของดันแคนหลายช่วงทดสอบ
3 ผล
3.1 องค์ประกอบทางเคมีและสนามอื่น
วัสดุ
อัตราส่วน C/N แตกต่างกันมากระหว่างพื้นผิว (ตารางที่ 1) ใน
อัตราการเติบโต mycelial ความหนาแน่น mycelial ผิว สนามรวม
วันจากกระเป๋าเปิดก่อ primordia และรอบระยะเวลา

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2 วัสดุและวิธีการ
2.1 จุลินทรีย์และการเตรียมการวางไข่
Pleurotus ostreatus ได้จากเห็ดไข่วิจัย
ศูนย์ Huazhong มหาวิทยาลัยเกษตร (หวู่ฮั่น
City, Hubei, จีน) ได้รับการปลูกในอาหารเลี้ยงเชื้อเดกซ์โทรสมันฝรั่ง
(PDA 200 g / l มันฝรั่งหั่นสี่เหลี่ยมลูกเต๋า 20 g / l กลูโคส 15 g / l วุ้น) ขนาดกลาง
ที่ 25 องศาเซลเซียสสำหรับวัฒนธรรมปกติ วางไข่เห็ดนางรม
ได้รับการจัดทำขึ้น 850 มิลลิลิตรขวดพลาสติกโพรพิลีนที่เต็มไป
ด้วยเมล็ดฝ้ายเรือ 87% รำข้าวสาลี 10% ซูโครส 1%, ปูน
หิน 1% และแคลเซียม superphosphate 1% (w / w ในแง่
ของน้ำหนักแห้ง) ซึ่งถูกนำมาใช้กันอย่างแพร่หลายในภาคกลางของจีนและ
จากนั้นนึ่งฆ่าเชื้อที่อุณหภูมิ 121 องศาเซลเซียส 80 นาที หลังจากที่ระบายความร้อน
ลงไปที่อุณหภูมิห้องฆ่าเชื้อเปลือกเมล็ดฝ้ายของ
ทุกขวดถูกเชื้อด้วยแผ่นวุ้น 5 cm2 เส้นใย
วางไข่ถูกบ่มในห้องปฏิบัติการที่ 26 ± 2 องศาเซลเซียสและ
70% ความชื้นสัมพัทธ์เป็นเวลาสองสัปดาห์
2.2 การเตรียมพื้นผิว, การฉีดวัคซีนและบ่ม
หลอดแห้งอย่างสมบูรณ์ภายใต้ดวงอาทิตย์และจากนั้น
หั่นเป็นความยาว 4 เซนติเมตรและแช่ในน้ำค้างคืน
ก่อนที่จะเตรียมพื้นผิว หลังจากที่การระบายน้ำน้ำส่วนเกิน
ที่พวกเขาถูกนำมาใช้เป็นสารตั้งต้นสำหรับการเปลี่ยนรำข้าวสาลีบางส่วน
และผ้าฝ้ายเปลือกเมล็ด เพื่อตรวจสอบพื้นผิวที่เหมาะสม
และอัตราส่วนที่เหมาะสมสำหรับการเพาะปลูกของเห็ดนางรม, ต่างๆ
วัสดุและพื้นผิวรวมกันได้มีการทดสอบ (ตารางที่ 1)
ปริมาณน้ำของส่วนผสมสุดท้ายที่ถูกปรับให้ 65%
(w / W) การเพาะปลูกพื้นผิวผ่านการฆ่าเชื้อที่เป็นส่วนผสม
ที่เต็มไปลงในถุงพลาสติกและนึ่งฆ่าเชื้อที่อุณหภูมิ
121 องศาเซลเซียส 80 นาที หลังจากที่พื้นผิวที่ได้รับการระบายความร้อนลงไปที่
อุณหภูมิห้องที่พวกเขาถูกเชื้อด้วย 5 กรัมของหอยนางรม
เห็ดวางไข่ การเพาะปลูกพื้นผิวที่ไม่ผ่านการฆ่าเชื้อเป็น
ที่สามชั้น 5 กรัมวางไข่เห็ดนางรมต่อชั้นได้รับ
เชื้อในด้านล่างกลางและพื้นผิวของพื้นผิวเมื่อ
ส่วนผสมที่เต็มไปลงในถุงพลาสติก ยี่สิบซ้ำ
ถุงพลาสติกถูกนำมาใช้สำหรับพื้นผิวแต่ละ
พื้นผิวเชื้อถูกเก็บไว้ในการทำงานวางไข่
ห้องพักที่ 25 องศาเซลเซียสและความชื้น 70% เมื่อเทียบภายใต้เงื่อนไขที่มืด
ใช้ระยะเวลาในการวางไข่อาณานิคมรวม (จำนวน
วันจากการฉีดวัคซีนเพื่อให้การล่าอาณานิคม ของพื้นผิว
โดยไมซีเลียม) จะถูกบันทึก การเจริญเติบโตของเส้นใย
อัตราการถูกกำหนดความสูง (มม) ของเส้นใยในอาณานิคม
ถุงวัฒนธรรมหารด้วยเวลาบ่ม (วัน)
2.3 การปลูกพืช, การเก็บเกี่ยวและความมุ่งมั่นของประสิทธิภาพทางชีวภาพ
หลังจาก primordia ที่ปรากฏบนชั้นบนสุดของพื้นผิวใน
ถุงพลาสติกแต่ละถุงที่ถูกย้ายไปที่ห้องของการปลูกพืช
ในที่อุณหภูมิถูกควบคุมที่ 28 องศาเซลเซียสญาติ
ความชื้น 80% หรือสูงกว่า และความเข้มของแสงที่ประมาณ
100 ลักซ์ ห้องพักได้รับการปลูกพืชน้ำเป็นช่วง ๆ เพื่อ
รักษาความชุ่มชื้นในช่วงเวลาการปลูกพืช
เห็ดถูกเก็บเกี่ยวเมื่อพื้นผิวหมวกเห็ด
ทรงตัวที่จะเพิ่มขึ้นเล็กน้อยรีดที่ขอบหมวก เก็บเกี่ยว
ดอกเห็ดในแต่ละถุงนับแล้วและชั่งน้ำหนัก ที่
สิ้นสุดระยะเวลาการเก็บเกี่ยวข้อมูลสะสมถูกนำมาใช้
ในการคำนวณประสิทธิภาพทางชีวภาพและน้ำหนักเห็ด
ประสิทธิภาพทางชีวภาพ (%) = แปดของเห็ดสดเก็บเกี่ยว
ต่อถุง / น้ำหนักของพื้นผิวแห้งต่อถุง· 100
น้ำหนักเห็ด (ช) = น้ำหนักรวมเก็บเกี่ยวสด
เห็ดต่อถุง / จำนวนรวมของเห็ดที่เก็บเกี่ยว
ต่อถุง
2.4 การวิเคราะห์พื้นผิว
การทดสอบตัวอย่างของพื้นผิวหลังจากการทำหมันแห้งที่
60 องศาเซลเซียสเพื่อให้น้ำหนักคงที่แล้วบดเป็นผงหยาบ
(8 ช่อง / cm) โดยใช้โรงสี วิธีการที่ใช้เพื่อให้ได้คาร์บอน
เนื้อหาเป็นที่ของเนลสันและซอมเมอร์ (1982) และไนโตรเจน
เนื้อหาถูกวัดโดยวิธี Kjeldahl แล้วคาร์บอน /
อัตราส่วนไนโตรเจนของแต่ละพื้นผิวที่คำนวณ
2.5 การวิเคราะห์ทางสถิติ
ความแตกต่างระหว่างความหมายของกลุ่มบุคคลที่ได้รับการประเมิน
โดยหนึ่งในวิธีการวิเคราะห์ความแปรปรวนที่มีหลายการทดสอบของดันแคนช่วง
3 ผลลัพธ์
3.1 องค์ประกอบทางเคมีและการล่าอาณานิคมที่แตกต่างกัน
พื้นผิว
C / N ratio แตกต่างกันอย่างมากในหมู่พื้นผิว (ตารางที่ 1)
อัตราการเจริญเติบโตของเส้นใยพื้นผิวมีความหนาแน่นของเส้นใย, การล่าอาณานิคมรวม
ระยะเวลาและวันจากการเปิดถุงเพื่อการก่อกำเนิด

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . จุลินทรีย์และการเตรียม
เชื้อ Pleurotus ostreatus ได้มาจากเห็ดวางไข่วิจัย
ศูนย์มหาวิทยาลัยเกษตร Huazhong (
เมืองหวู่ฮั่น , Hubei , ประเทศจีน ) ที่ปลูกบนอาหาร Potato Dextrose Agar ( PDA
200 กรัม / ลิตร มันฝรั่งหั่นสี่เหลี่ยมลูกเต๋า 20 g / l ; กลูโคส ; 15 กรัม / ลิตร
ที่ 25  วุ้น ) ขนาดกลาง C สำหรับวิถีชีวิตปกติ เห็ดนางรมวางไข่
เตรียม 850 ml ขวดพลาสติกโพลีโพรพีลีนบรรจุ
กับเมล็ดฝ้ายฮัล 87% , รําข้าวสาลี 10% sucrose ร้อยละ 1 หินปูน
1 % และแคลเซียมซูเปอร์ฟอสเฟต 1% ( w / w ในแง่
ของน้ำหนักแห้ง ) ซึ่งใช้กันอย่างแพร่หลายในภาคกลางของจีน และเครื่องนึ่งฆ่าเชื้อที่
จากนั้น 121  เป็นเวลา 80 นาที หลังจากเย็น
ลงไปที่อุณหภูมิห้อง โดยเปลือก
เมล็ดฝ้ายทุกขวดถูก inoculated กับ 5 ตร. ซม. มีแผ่นวุ้น .
วางไข่คือบ่มในห้องปฏิบัติการที่ 26 ± 2  C และความชื้นสัมพัทธ์ 70 %
2 สัปดาห์
2.2 . การเตรียมเชื้อตั้งต้น และบ่มเพาะ
หลอดจะแห้งภายใต้ดวงอาทิตย์และจากนั้น
สับเป็น 4 เซนติเมตร ความยาว และแช่น้ำข้ามคืน
ก่อนการเตรียมพื้นผิว หลังจากที่ระบายน้ำส่วนเกิน
พวกเขาถูกใช้เป็นสารทดแทนบางส่วน และรำข้าวสาลี
เปลือกเมล็ดฝ้าย เพื่อตรวจสอบ
พื้นผิวเหมาะและอัตราส่วนให้เหมาะสมกับการปลูกเห็ดนางรม , วัสดุและพื้นผิวต่าง ๆรวมกัน
ทดสอบ ( ตารางที่ 1 ) .
ปริมาณน้ำในส่วนผสมสุดท้ายคือปรับให้ 65 %
( w / w ) โดยการใช้วัสดุเพาะเป็นส่วนผสม
ถูกเติมลงในถุงพลาสติกและเครื่องนึ่งฆ่าเชื้อที่ 121 
นาน 80 นาที หลังจากพื้นผิวเป็นเย็นลง

อุณหภูมิห้องก็ใส่ 5 กรัมเชื้อเห็ดนางรม

ไม่ใช่การฆ่าเชื้อพื้นผิวคือ
ที่ 3 ชั้น 5 กรัมของเห็ดนางรมวางไข่ต่อชั้นมี
หัวเชื้อในด้านล่างกลางและพื้นผิวของพื้นผิวเมื่อ
ส่วนผสมจะถูกเติมลงในถุงโพลีเอทธีลีน ยี่สิบถุงพลาสติกที่ใช้มาก

แต่สำหรับแต่ละพื้นผิว พื้นผิวที่ถูกเก็บไว้ในห้อง  วางไข่วิ่ง
ที่ 25 องศาเซลเซียส และความชื้นสัมพัทธ์ 70% ภายใต้เงื่อนไขที่มืด
ระยะเวลาการวางไข่วิ่งทั้งหมด ( หมายเลข
วัน ( เสร็จจากการล่าอาณานิคมของพื้นผิว
โดยเจริญ ) คือ บันทึกอัตราการเจริญเติบโต
เจริญตั้งใจเป็นความสูง ( mm ) ของเส้นใยในเมืองขึ้น
วัฒนธรรมถุงแบ่งตามระยะเวลา ( วัน ) .
2.3 การปลูกพืช , การเก็บเกี่ยวและการหาประสิทธิภาพทางชีวภาพ
หลังจากไพรม ์เดียปรากฏบนชั้นบนสุดของพื้นผิวใน
แต่ละถุงโพลีเอทธิลีน , กระเป๋าย้ายไปปลูกในที่ห้อง
อุณหภูมิถูกควบคุมไว้ที่ 28  ญาติ
Cความชื้นที่ 80% ขึ้นไป และความเข้มแสงที่เกี่ยวกับ
100 ลักซ์ การปลูกพืชห้องรดน้ำเป็นระยะๆ

รักษาความชุ่มชื้นในช่วงการเวลา .
เห็ดเก็บเห็ดหมวกผิว
เมื่อถูกแบนเล็กน้อยขึ้นรีดที่หมวกขอบ . เก็บเกี่ยว
ติดร่างกายในแต่ละถุง แล้วนับและชั่งน้ำหนัก ที่
สิ้นสุดระยะเวลาเก็บเกี่ยวการสะสมข้อมูลที่ใช้
หาประสิทธิภาพทางชีวภาพและน้ำหนักเห็ด .
ประสิทธิภาพทางชีวภาพ ( % ) = แปดของเห็ดสดเก็บเกี่ยว
ต่อถุง / น้ำหนัก ( แห้งต่อถุงด้วย 100
น้ำหนักเห็ด ( g ) = น้ำหนักรวมเก็บเกี่ยวสด
เห็ดต่อถุง / จำนวนของเห็ดเก็บเกี่ยว
ต่อ กระเป๋า
2.4 .
วิเคราะห์พื้นผิวทดสอบตัวอย่างของพื้นผิวหลังจากการฆ่าเชื้อที่อุณหภูมิ 60 องศาเซลเซียส เพื่อ 
น้ำหนักคงที่ แล้วบดให้เป็นผงละเอียดเป็น
( 8 ช่อง / ซม. ) โดยใช้เครื่อง วิธีการที่ใช้เพื่อให้ได้เนื้อหาคาร์บอน
ที่ Nelson และ ซอมเมอร์ ( 1982 ) และไนโตรเจน
0 วัดโดยใช้วิธี แล้วคาร์บอนต่อไนโตรเจน /
ของแต่ละพื้นผิวมีค่า .
2.5
สถิติที่ใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูลความแตกต่างระหว่างค่าเฉลี่ยของแต่ละกลุ่มประเมินโดยการวิเคราะห์ความแปรปรวนการทดสอบ
หลายช่วงดันแคน .
3 ผลลัพธ์
3.1 . องค์ประกอบทางเคมีและการล่าอาณานิคมของพื้นผิวแตกต่างกัน

C / N ratio ที่แตกต่างกันมากระหว่างพื้นผิว ( ตารางที่ 1 )
อัตราการเจริญของเส้นใยผิว รวมระยะเวลาจากการเปิดและการล่าอาณานิคม
วันถุงเพื่อการพัฒนา ไพรม ์เดีย