Protoplastculture and microcolony f

Protoplastculture and microcolony formation
Purified protoplasts derived from in vitro leaves and calli were cultured separately at a plating density of 3–3.5×105 Pp ml−1 for cell wall regeneration, cell multiplication, and
microcolony formation. Leaf- and calli-derived protoplasts cultured in both liquid and agarose systems were able to synthesis cell walls, divide, and form cell colonies. Cells
became larger and oval in shape within 30–48 h after culture in medium augmented with auxins (NAA or 2,4-D) plus BA, showing new cell wall synthesis followed by first cell division. Further divisions of the leaf- and callus- derived protoplasts led to the formation of several daughter cells and eventually microcolony development. Three modified basal media (B5, MS, and KM8p) as liquid or semi-solid medium, and NAA or 2,4-D plus 2.2 µM BA, were assessed for the effect on microcolony formation and subsequent microcalli growth (Supplementary Table 2). In addition, KM8p medium supplemented with 1.4% agarose was compared.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ก่อ Protoplastculture และ microcolonyพลาสต์บริสุทธิ์มาจากใบไม้ในหลอดทดลอง และเอเรียถูกล้างต่างหากที่ชุบของ ml−1 Pp 3 – 3.5 × 105 สำหรับฟื้นฟูผนังเซลล์ เซลล์คูณ และการก่อ microcolony มาใบ และ calli ล้างในระบบของเหลวและ agarose พลาสต์สามารถสังเคราะห์ผนังเซลล์ แบ่ง และแบบฟอร์มเซลล์อาณานิคมได้ เซลล์กลายเป็นขนาดใหญ่ และรูปไข่รูปภายใน 30 – 48 ชม.หลังจากวัฒนธรรมในเติมเต็ม ด้วยสารกระตุ้น (ราดหน้าหรือ 2, 4-D) บวก BA แสดงการสังเคราะห์ผนังเซลล์ใหม่ตาม ด้วยการแบ่งเซลล์ครั้งแรก ส่วนเพิ่มเติมของใบ - และแคลลัส - ได้มานำไปสู่การก่อตัวของหลายเซลล์ลูกสาวและในที่สุด microcolony พัฒนาพลาสต์ สามแก้ไขฐานสื่อ (B5, MS และ KM8p) เป็นของเหลว หรือกึ่งของแข็ง ปานกลาง และราดหน้า หรือ 2, 4-D บวก 2.2 µM BA ถูกประเมินผลใน microcolony ก่อตัวและเจริญเติบโตตามมา microcalli (เสริมตาราง 2) นอกจากนี้ KM8p กลางเสริม ด้วย 1.4% agarose ถูกเปรียบเทียบ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

Protoplastculture และ microcolony ก่อ
บริสุทธิ์โปรโตพลาที่ได้มาจากการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อในใบและแคลลัสที่ถูกเลี้ยงแยกต่างหากที่มีความหนาแน่นชุบ 3-3.5 × 105 Pp ML-1 สำหรับการฟื้นฟูเซลล์ผนังคูณมือถือและ
การก่อ microcolony Leaf- และโปรโตพลาแคลลัสที่ได้มาจากการเพาะเลี้ยงในระบบทั้งของเหลวและ agarose ก็สามารถที่จะสังเคราะห์ผนังเซลล์หารและอาณานิคมรูปแบบเซลล์ เซลล์
กลายเป็นขนาดใหญ่และในรูปวงรีภายใน 30-48 ชั่วโมงหลังจากวัฒนธรรมในสื่อเสริมเข้ากับ auxins (NAA หรือ 2,4-D) บวก BA แสดงสังเคราะห์ผนังเซลล์ใหม่ตามมาด้วยการแบ่งเซลล์แรก หน่วยงานต่อไปของ leaf- และ callus- โปรโตพลามานำไปสู่การก่อตัวของเซลล์ลูกสาวหลายและการพัฒนา microcolony ที่สุด สามการปรับเปลี่ยนสื่อพื้นฐาน (B5, MS และ KM8p) เป็นของเหลวหรือขนาดกลางกึ่งของแข็งและ NAA หรือ 2,4-D บวก 2.2 ไมครอนบริติชแอร์เวย์ได้รับการประเมินผลเกี่ยวกับการก่อ microcolony และการเจริญเติบโต microcalli ที่ตามมา (เสริมตารางที่ 2) . นอกจากนี้สื่อ KM8p เสริมด้วย 1.4% agarose เปรียบเทียบ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

และการ protoplastculture microcolonyเอนไซม์บริสุทธิ์ที่ได้จากการเพาะเลี้ยงแคลลัสในใบและแยกที่ชุบความหนาแน่น 3 – 3.5 × 105 ml − 1 สำหรับ PP ผนังเซลล์ผิวเซลล์คูณการพัฒนา microcolony . ใบ - แคลลัสได้มาพบเลี้ยงในระบบของเหลวทั้งสองและโรสสามารถสังเคราะห์เซลล์ผนังแบ่ง , และรูปแบบเซลล์อาณานิคม เซลล์กลายเป็นขนาดใหญ่และรูปไข่รูปร่างภายใน 30 - 48 ชั่วโมงหลังจากวัฒนธรรมในสื่อกับออกซิน ( เติม NAA หรือ 2 , 4-D ) บวกบาแสดงเซลล์สังเคราะห์ใหม่ผนังตามการแบ่งเซลล์ครั้งแรก ส่วนเพิ่มเติมของใบไม้และแคลลัสเลส - ซึ่งนำไปสู่การก่อตัวของเซลล์ลูกสาวหลายและในที่สุด microcolony การพัฒนา 3 แก้ไขแรกเริ่มสื่อ ( B5 , MS , และ km8p ) ของเหลวหรือกึ่งแข็งปานกลาง และ NAA หรือ 2 , 4-D บวก 2.2 µ M BA , มีการประเมินสำหรับผลกระทบต่อการก่อตัว microcolony และการเจริญเติบโต microcalli ตามมา ( โต๊ะเสริม 2 นอกจากนี้ km8p เติม 1.4% , หอยเป๋าฮื้อ