Root length and shoot height were m

Root length and shoot height were measured
manually with a ruler and dry weights of shoot and
root were determined after drying at 80 °C for 24 h.
Relative electrolyte leakage as a measurement for
membrane permeability was determined according to
the method of Li (2001). Leaves of seedlings were cut
into segments of about 5 mm. Each replication (0.2 g
fresh weight (FW)) was collected and washed with
deionized water, and then placed in the test tube with
10 ml deionized water and covered with a plug. After
incubation at 25 °C for 6 h, the relative electrolyte
leakage of the leaves was measured using a conductometer
(DDS-11A, Shanghai, China), and the value
was named E1. Subsequently, the test tube was kept in
water at 100 °C for 30 min, and then cooled to 25 °C,
and the second relative electrolyte leakage was
measured as E2. The relative electrolyte leakage of
deionized water was named E0. The relative electrolyte
leakage (REL) was calculated as follows: REL
(%)=(E1−E0)/(E2−E0)×100. The concentrations of
malondialdehyde (MDA), proline, and soluble sugar
in leaves were measured using thiobarbituric acid
(TBA) reaction method, colorimetric method, and
anthrone colorimetric method, respectively (Li, 2001).
Leaf peroxidase (POD) activity was determined by
guaiacol method (Zhu and Zhong, 1990), and leaf
catalase (CAT) activity was determined by the
method described by Fu and Huang (2001). All
measurements mentioned above were made after seed
germination for 8 d (at 25 °C under alternating cycle
of 12 h illumination and 12 h darkness for 5 d, followed
by low temperature stress at 5 °C for 3 d) on 20
randomly selected seedlings per measurement

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ความยาวรากและความสูงยิงถูกวัดด้วยตนเองกับผู้ปกครองและน้ำหนักแห้งของยอดและรากผลหลังจากการอบแห้งที่80 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชม. การรั่วไหลของอิเล็กโทรไลญาติเป็นวัดสำหรับการซึมผ่านเยื่อหุ้มเซลล์ได้รับการพิจารณาตามวิธีการของหลี่(2001) . ใบของต้นกล้าถูกตัดออกเป็นกลุ่มประมาณ 5 มม การจำลองแบบแต่ละคน (0.2 กรัมน้ำหนักสด(FW)) ได้รับการเก็บรวบรวมและล้างด้วยน้ำปราศจากไอออนและวางไว้ในหลอดทดลองที่มี10 มล. น้ำปราศจากไอออนและปกคลุมด้วยปลั๊ก หลังจากบ่มที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 6 ชั่วโมงที่อิเล็กโทรไลญาติการรั่วไหลของใบที่ถูกวัดโดยใช้conductometer (DDS-11A, เซี่ยงไฮ้, ประเทศจีน) และค่าที่ถูกตั้งชื่อE1 ต่อจากนั้นหลอดทดลองที่ถูกเก็บไว้ในน้ำที่อุณหภูมิ 100 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาทีแล้วเย็นที่ 25 ° C, และครั้งที่สองการรั่วไหลของอิเล็กโทรไลญาติได้รับการวัด E2 การรั่วไหลของอิเล็กโทรไลญาติของน้ำปราศจากไอออนเป็นชื่อ E0 อิญาติรั่วไหล (REL) ที่คำนวณได้ดังนี้ REL (%) = (E1-E0) / (E2-E0) × 100 ความเข้มข้นของMalondialdehyde (MDA) โพรลีนและน้ำตาลที่ละลายน้ำได้ในใบถูกวัดโดยใช้กรดthiobarbituric (TBA) วิธีปฏิกิริยาวิธีการสีและวิธีการสีanthrone ตามลำดับ (Li, 2001). ใบ peroxidase (POD) กิจกรรมถูกกำหนดโดยวิธี guaiacol (จู้และ Zhong, 1990) และใบcatalase (กสท.) กิจกรรมถูกกำหนดโดยวิธีการอธิบายโดยFu และ Huang (2001) ทุกวัดดังกล่าวข้างต้นที่ถูกสร้างขึ้นหลังจากเมล็ดงอก8 d (ที่ 25 ° C ภายใต้สลับรอบ12 ไฟส่องสว่างชั่วโมงและ 12 ชั่วโมงในความมืดเป็นเวลา 5 วันตามจากความเครียดอุณหภูมิต่ำ5 ° C เป็นเวลา 3 ง) เมื่อวันที่ 20 ต้นกล้าสุ่มเลือก ต่อการวัด

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ความยาวราก ความสูงวัดยิง
ด้วยตนเองด้วยไม้บรรทัดและน้ำหนักแห้งของต้น และรากถูก
หลังจากการอบแห้งที่อุณหภูมิ 80 องศา C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง
ญาติอิเล็กโทรไลต์รั่วเป็นวัดการซึมผ่านเมมเบรนถูกกำหนดตาม

วิธีการของหลี่ ( 2001 ) ใบของต้นกล้าที่ถูกตัด
ในกลุ่มประมาณ 5 มิลลิเมตร แต่ละแบบ ( 0.2 g
น้ำหนักสด ( FW ) ถูกเก็บและล้างด้วยน้ำ
คล้ายเนื้อเยื่อประสานและวางไว้แล้วในหลอดทดลองด้วย
10 น้ำคล้ายเนื้อเยื่อประสาน ml และปกคลุมด้วยปลั๊ก หลังจากบ่มที่อุณหภูมิ 25 ° C
6 h , ญาติอิเล็กโทรไลต์
รั่วของใบวัดโดยใช้ conductometer
( จีน dds-11a เซี่ยงไฮ้ ) และค่า
ชื่อ E1 โดยถูกเก็บไว้ในหลอดทดลอง
น้ำที่ 100 องศา C เป็นเวลา 30 นาทีแล้วเย็น 25 ° C ,
และสองของอิเล็กโทรไลต์เมื่อวัดเป็น E2
. ญาติอิเล็กโทรไลต์การรั่วไหลของน้ำเป็นชื่อ E0
คล้ายเนื้อเยื่อประสาน . การรั่วไหลของอิเล็กโทรไลต์
ญาติ ( rel ) คำนวณได้ดังนี้ : rel
( % ) = ( E1 / E2 −− E0 ) E0 ) × 100 ความเข้มข้นของ
มาลอนไดอัลดีไฮด์ ( MDA ) , โพรลีนและน้ำตาลในใบ
ได้ทดลองใช้เป็นเวลาเท่ากับกรด
( TBA ) ด้วยวิธีปฏิกิริยาColorimetric method และวิธี Colorimetric
แอนโทรน ตามลำดับ ( Li , 2001 ) .
ทั้งใบ ( ฝัก ) กิจกรรมที่กำหนดโดยวิธีได
( Zhu Zhong และ 1990 ) และคะตะเลสใบ
( แมว ) กิจกรรมที่กำหนดโดยวิธีบรรยายโดย
ฟูและหวง ( 2001 ) การวัดข้างต้นทั้งหมด
หลังจากเมล็ดงอก
8 D ( ที่อุณหภูมิ 25 ° C ภายใต้การสลับวงจร
12 ชั่วโมง 12 ชั่วโมง แสงสว่างและความมืด 5 D ตาม
โดยความเครียดอุณหภูมิต่ำ 5 ° C 3 D )
สุ่ม 20 ต้นต่อการวัด