2.1. Plant materialsMature green ‘F

2.1. Plant materials
Mature green ‘FL 47’ tomatoes were harvested from a
commercial field in Fort Pierce, FL, on May 7, 2014. Uniform and
defect-free fruits, 300, with an average weight of 265 g were
exposed to 80mL L1 of ethylene for 48 h at 20 C to initiate and
synchronize ripening. After removing immature (remaining at
green stage) and over-developed fruits, 240 tomatoes at breaker
stage (a* = 7.3 0.93; red area less than 10% of the whole surface)
(USDA, 1997) were then selected and divided into three lots of
80 fruits each for H2O (control), MeSA or MeJAvapor treatment. For
each lot, 80 fruits were placed in two 45-L airtight glass containers
with 40 fruits each. A 7-cm diameter filter paper disc soaked in one
of following agents, 31.0mL of DI water, 222.9mL of MeSA or
374.6mL of MeJA was suspended from the top of the glass container
with the fruits for 24 h at 20 C. The final chemical vapor
concentration in the containers was 0.05 mM. After fumigation,
the containers were opened, and ventilated for 12 h, 80 fruits in
each treatment were divided into two groups: one group was
directly placed at 20 C for ripening, while the other was
transferred to 5 C for 9 d before ripening at 20 C. Overall, this
was a two-factor combination experiment with 3 chemical
fumigations 2 storage temperatures, and each combination
(treatment) contained 40 fruits.
For non-chilled treatments, samples were taken on the same
day when the color of the control reached a plateau (red) after a
7-day storage, the a* values were 20.9 0.8, 19.5 1.2, and
19.1 0.6 for control, MeJA and MeSA, respectively. For chilled
treatments, ripening of fruits was delayed by 14 d (9 d at 5 C + 5 d
at 20 C), and the samples were taken when color reached a plateau
with an a* value of 18.6 0.6, 20.2 1.1 and 20.7 0.9 for
water + chilling (chilling control), MeJA + chilling and MeSA+ chilling,
respectively. Twenty four out of a total 40 fruits per treatment
were selected for volatile analysis with three fruit per replicate
eight replicates. The remaining fruits were used for sensory
panel.
2.2. Volatile analysis
Pericarp tissue was quickly collected from three fruits per
replicate with a sharp stainless steel knife, immersed in liquid N2,
crushed to roughly 0.5-cm pieces by mortar and pestle and then
stored at 80 C until analysis. Frozen pericarp tissue, removed
from frozen storage, was further ground to powder under liquid
nitrogen using mortar and pestle and 4.3 g of powder, together
with 1.7 mL of saturated CaCl2 solution were transferred to a 20-mL
vial sealed with Teflon-lined septa (Gerstel Inc., Linthicum, MD).
Volatiles were analyzed by a headspace, solid-phase microextraction,
and gas chromatography–mass spectrometry
(HS-SPME-GC–MS) system following Bai et al. (2011)’s method
with modifications. The sample vials were thawed under tap water,
vortexed for 30 s, and loaded onto an autosampler (Model MPS2,
Gerstel Inc.) equipped with a cooling tray (Laird Tech, Sweden)
controlled by a Peltier Thermostat (CTC Analytics AG, Switzerland)
with temperature setting at 4 C, and held until headspace analysis.
For headspace analysis, the sample vials were incubated for 30 min
at 40 C before a 2-cm solid phase microextraction (SPME) fiber
(50/30mm DVB/Carboxen/PDMS; Supelco, Bellefonte, PA) was
exposed to the headspace for another 30 min at 40 C. After
exposure, the SPME fiber was inserted into the injector of a GC–MS
(Model 6890, Agilent, Santa Clara, CA) to desorb the extract for
15 min at 250 C. The GC–MS equipment and settings were:
DB-5 column (60 m length, 0.25 mm i.d., 1.00mm film thickness;
J&W Scientific, Folsom, CA), coupled with a 5973 N MS detector
(Agilent Technologies). The column oven was programmed to
increase at 4 C min1 from the initial 40 C to 230 C, then ramped
at 100 C min1 to 260 C and held for 11.70 min for a total run time
of 60 min. Helium was used as carrier gas at flow rate of
1.5 mL min1
. Inlet, ionizing source and transfer line were kept
at 250, 230, and 280 C, respectively. Mass units were monitored
from 30 to 250 m/z and ionized at 70 eV. Data were collected using
the ChemStation G1701 AA data system (Hewlett–Packard, Palo
Alto, CA). A mixture of C-5 to C-18 n-alkanes was run at the
beginning of each day to calculate retention indices (RIs). Volatile
compounds were identified by comparison of their mass spectra
with library entries (NIST/EPA/NIH Mass Spectral Library, version
2.0d; National Institute of Standards and Technology, Gaithersburg,
MA), as well as by comparing RI with authorized standard aroma
compounds purchased from Sigma–Aldrich (St. Louis, MO) or Fluka
Chemical Corporation (Buchs, Switzerland).
Quantification was conducted by using a peak size vs.
concentration curve built by serially diluting five point standard
solutions (Bai et al., 2002). Briefly, a standard compound was
dissolved in pure methanol and the mixture was then introduced
into a deodorized tomato homogenate. The concentrations in the
standard curve for each compound covered the concentration
range found in the samples.
2.3. Sensory evaluation
Paired-comparison tests (Meilgaard et al., 1999) were performed
comparing either MeSA or MeJA treatment with water
control, separately. Because of the differences in ripening time,
panel evaluation for the chilled treatments was run separately
from the non-chilled treatments, and there was no chilling vs.
non-chilling comparison. Each sensory panel was carried out by
30 members for overall aroma evaluation. Tomatoes were cut into
2 cm3 wedges, and three wedges (about 35 g) were placed in
4-oz (118 mL) plastic souffle’ cups (Solo1 Cups Co., Lake Forest, IL)
with lids and labeled with three-digit coded numbers. Panelists
were presented the two coded samples with an alternated order
of presentation. They were asked to open the lids, smell the
samples and indicate which one had the most tomato odor. The
time between cutting fruit and sensory evaluation was less than
one hour. All panel members, untrained for the specific evaluation
of tomato aroma, were familiar with sensory evaluation of other
fruit and fruit products, and had evaluated tomato aroma
previously.
L. W

2.1. Plant materials
Mature green ‘FL 47’ tomatoes were harvested from a
commercial field in Fort Pierce, FL, on May 7, 2014. Uniform and
defect-free fruits, 300, with an average weight of 265 g were
exposed to 80mL L1 of ethylene for 48 h at 20 C to initiate and
synchronize ripening. After removing immature (remaining at
green stage) and over-developed fruits, 240 tomatoes at breaker
stage (a* = 7.3  0.93; red area less than 10% of the whole surface)
(USDA, 1997) were then selected and divided into three lots of
80 fruits each for H2O (control), MeSA or MeJAvapor treatment. For
each lot, 80 fruits were placed in two 45-L airtight glass containers
with 40 fruits each. A 7-cm diameter filter paper disc soaked in one
of following agents, 31.0mL of DI water, 222.9mL of MeSA or
374.6mL of MeJA was suspended from the top of the glass container
with the fruits for 24 h at 20 C. The final chemical vapor
concentration in the containers was 0.05 mM. After fumigation,
the containers were opened, and ventilated for 12 h, 80 fruits in
each treatment were divided into two groups: one group was
directly placed at 20 C for ripening, while the other was
transferred to 5 C for 9 d before ripening at 20 C. Overall, this
was a two-factor combination experiment with 3 chemical
fumigations  2 storage temperatures, and each combination
(treatment) contained 40 fruits.
For non-chilled treatments, samples were taken on the same
day when the color of the control reached a plateau (red) after a
7-day storage, the a* values were 20.9  0.8, 19.5 1.2, and
19.1 0.6 for control, MeJA and MeSA, respectively. For chilled
treatments, ripening of fruits was delayed by 14 d (9 d at 5 C + 5 d
at 20 C), and the samples were taken when color reached a plateau
with an a* value of 18.6  0.6, 20.2 1.1 and 20.7 0.9 for
water + chilling (chilling control), MeJA + chilling and MeSA+ chilling,
respectively. Twenty four out of a total 40 fruits per treatment
were selected for volatile analysis with three fruit per replicate
 eight replicates. The remaining fruits were used for sensory
panel.
2.2. Volatile analysis
Pericarp tissue was quickly collected from three fruits per
replicate with a sharp stainless steel knife, immersed in liquid N2,
crushed to roughly 0.5-cm pieces by mortar and pestle and then
stored at 80 C until analysis. Frozen pericarp tissue, removed
from frozen storage, was further ground to powder under liquid
nitrogen using mortar and pestle and 4.3 g of powder, together
with 1.7 mL of saturated CaCl2 solution were transferred to a 20-mL
vial sealed with Teflon-lined septa (Gerstel Inc., Linthicum, MD).
Volatiles were analyzed by a headspace, solid-phase microextraction,
and gas chromatography–mass spectrometry
(HS-SPME-GC–MS) system following Bai et al. (2011)’s method
with modifications. The sample vials were thawed under tap water,
vortexed for 30 s, and loaded onto an autosampler (Model MPS2,
Gerstel Inc.) equipped with a cooling tray (Laird Tech, Sweden)
controlled by a Peltier Thermostat (CTC Analytics AG, Switzerland)
with temperature setting at 4 C, and held until headspace analysis.
For headspace analysis, the sample vials were incubated for 30 min
at 40 C before a 2-cm solid phase microextraction (SPME) fiber
(50/30mm DVB/Carboxen/PDMS; Supelco, Bellefonte, PA) was
exposed to the headspace for another 30 min at 40 C. After
exposure, the SPME fiber was inserted into the injector of a GC–MS
(Model 6890, Agilent, Santa Clara, CA) to desorb the extract for
15 min at 250 C. The GC–MS equipment and settings were:
DB-5 column (60 m length, 0.25 mm i.d., 1.00mm film thickness;
J&W Scientific, Folsom, CA), coupled with a 5973 N MS detector
(Agilent Technologies). The column oven was programmed to
increase at 4 C min1 from the initial 40 C to 230 C, then ramped
at 100 C min1 to 260 C and held for 11.70 min for a total run time
of 60 min. Helium was used as carrier gas at flow rate of
1.5 mL min1
. Inlet, ionizing source and transfer line were kept
at 250, 230, and 280 C, respectively. Mass units were monitored
from 30 to 250 m/z and ionized at 70 eV. Data were collected using
the ChemStation G1701 AA data system (Hewlett–Packard, Palo
Alto, CA). A mixture of C-5 to C-18 n-alkanes was run at the
beginning of each day to calculate retention indices (RIs). Volatile
compounds were identified by comparison of their mass spectra
with library entries (NIST/EPA/NIH Mass Spectral Library, version
2.0d; National Institute of Standards and Technology, Gaithersburg,
MA), as well as by comparing RI with authorized standard aroma
compounds purchased from Sigma–Aldrich (St. Louis, MO) or Fluka
Chemical Corporation (Buchs, Switzerland).
Quantification was conducted by using a peak size vs.
concentration curve built by serially diluting five point standard
solutions (Bai et al., 2002). Briefly, a standard compound was
dissolved in pure methanol and the mixture was then introduced
into a deodorized tomato homogenate. The concentrations in the
standard curve for each compound covered the concentration
range found in the samples.
2.3. Sensory evaluation
Paired-comparison tests (Meilgaard et al., 1999) were performed
comparing either MeSA or MeJA treatment with water
control, separately. Because of the differences in ripening time,
panel evaluation for the chilled treatments was run separately
from the non-chilled treatments, and there was no chilling vs.
non-chilling comparison. Each sensory panel was carried out by
30 members for overall aroma evaluation. Tomatoes were cut into
2 cm3 wedges, and three wedges (about 35 g) were placed in
4-oz (118 mL) plastic souffle’ cups (Solo1 Cups Co., Lake Forest, IL)
with lids and labeled with three-digit coded numbers. Panelists
were presented the two coded samples with an alternated order
of presentation. They were asked to open the lids, smell the
samples and indicate which one had the most tomato odor. The
time between cutting fruit and sensory evaluation was less than
one hour. All panel members, untrained for the specific evaluation
of tomato aroma, were familiar with sensory evaluation of other
fruit and fruit products, and had evaluated tomato aroma
previously.
L. W

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

2.1. พืชวัสดุมะเขือเทศสุกเขียว 'FL 47' ถูกเก็บเกี่ยวจากการเขตพาณิชย์ในป้อมเพียร์ซ FL บน 7 พฤษภาคม 2014 สม่ำเสมอ และมีข้อบกพร่องฟรีผลไม้ 300 มีน้ำหนักตัวเฉลี่ยของ 265 gสัมผัสกับ 80mL L1 ของเอทิลีนสำหรับ h 48 ที่ 20 C จะเริ่มต้น และซิงโครไนส์ ripening หลังจากเอา immature (เหลือที่เวทีสีเขียว) และพัฒนาผลไม้ เกิน 240 มะเขือเทศที่ตัดขั้นตอน (แบบ * = 7.3 0.93 พื้นที่สีแดงน้อย กว่า 10% ของพื้นที่ทั้งหมด)(จาก 1997) จากนั้นเลือก และแบ่งออกเป็น 3 แหล่งผลไม้ 80 ละ H2O (ควบคุม), รักษา MeSA หรือ MeJAvapor สำหรับแต่ละล็อต ผลไม้ 80 ถูกวางในภาชนะแก้วแบบสุญญากาศ 45 L สองมี 40 ผลไม้แต่ละ แผ่นดิสก์กระดาษกรองเส้นผ่าศูนย์กลาง 7 เซนติเมตรนำไปแช่ในหนึ่งของตัวแทนต่อไปนี้ มล 31.0 น้ำ DI มล 222.9 ของ MeSA หรือmL ของ MeJA 374.6 ถูกระงับจากด้านบนของภาชนะแก้วมีผลไม้ใน 24 ชมที่ 20 เซลเซียส ไอเคมีขั้นสุดท้ายความเข้มข้นในบรรจุภัณฑ์ที่เป็น 0.05 mM หลังจาก fumigationภาชนะบรรจุที่เปิด และสม่ำเสมอสำหรับ 12 h ผลไม้ 80ทรีตเมนท์ถูกแบ่งออกเป็น 2 กลุ่ม: กลุ่มที่หนึ่งโดยตรงอยู่ที่ 20 C สำหรับ ripening ในขณะที่อีกคนโอนไป 5 C สำหรับ 9 d ก่อน ripening ที่ 20 C. รวม นี้ได้ทดลองผสมสองปัจจัย 3 เคมีfumigations 2 เก็บอุณหภูมิ และแต่ละชุด(รักษา) ประกอบด้วยผลไม้ 40สำหรับการรักษาไม่ใช่อาหาร ตัวอย่างที่ถ่ายบนเหมือนกันเมื่อสีของตัวควบคุมถึงที่ราบสูง (สีแดง) หลังจากวัน7 วันเก็บ * ค่าได้ 20.9 0.8, 19.5 1.2 และ19.1 0.6 สำหรับควบคุม MeJA และแห้ง ตามลำดับ สำหรับแช่รักษา ripening ผลไม้ล่าช้า โดย d 14 (9 d ที่ 5 C + 5 dที่ 20 C), และตัวอย่างที่ถ่ายเมื่อสีราบสูงด้วยการเป็น * ค่า 18.6 0.6, 20.2 1.1 และ 20.7 0.9 สำหรับน้ำ + หนาว (หนาวควบคุม), MeJA + หนาว และแห้ง + หนาวตามลำดับ ยี่สิบสี่จากผลไม้ 40 ตัวรวมต่อการรักษาเลือกสำหรับการวิเคราะห์ระเหยกับผลไม้สามต่อจำลองเหมือนกับแปด ผลไม้ที่เหลือใช้สำหรับรับความรู้สึกแผง2.2 การวิเคราะห์ระเหยเนื้อเยื่อ pericarp รวบรวมจากผลไม้สามต่อได้อย่างรวดเร็วจำลองแบบ ด้วยมีดสแตนเลสคม แช่อยู่ในของเหลว N2บดเป็นชิ้นประมาณ 0.5 ซม.โดยโกร่งแล้วเก็บที่ 80 C จนถึงการวิเคราะห์ เนื้อเยื่อแช่แข็ง pericarp เอาออกเก็บน้ำแข็ง ถูกพื้นดินเพิ่มเติมผงภายใต้ของเหลวไนโตรเจนที่ใช้ปูน และ pestle และ 4.3 g ผง กันมี 1.7 mL ของ CaCl2 อิ่มตัวถูกโอนย้ายไปเป็น 20 mLคอนแทคที่ปิดสนิท มี septa แมกเทฟลอน (Gerstel Inc., Linthicum, MD)Volatiles ถูกวิเคราะห์ โดย headspace เฟสของแข็ง microextractionและ spectrometry chromatography ก๊าซ – มวลต่อไบ et al. ระบบ (HS-SPME-GC – MS) วิธีการ (พ.ศ. 2554)มีการปรับเปลี่ยน Vials อย่างถูก thawed ภายใต้น้ำประปาvortexed สำหรับ 30 s และโหลดไปเป็น autosampler (รุ่น MPS2Gerstel Inc.) พร้อมถาดเย็น (Laird เทค สวีเดน)ควบคุม โดยอุณหภูมิ Peltier (CTC วิเคราะห์ AG สวิตเซอร์แลนด์)มีอุณหภูมิตั้งที่ 4 C และจัดขึ้นจนถึงการวิเคราะห์ headspaceสำหรับการวิเคราะห์ headspace, vials อย่างถูก incubated สำหรับ 30 นาทีที่ 40 C ก่อนเป็นเฟสของแข็ง 2 ซม. microextraction (SPME) ไฟเบอร์(50/30 มม. DVB/Carboxen/PDMS มี Supelco, Bellefonte, PA)สัมผัสกับ headspace สำหรับอีก 30 นาทีที่ 40 C. หลังแสง ไฟเบอร์ SPME ถูกแทรกเป็นหัวฉีดของ GC – MS(รุ่น 6890, Agilent ซานตาคลารา CA) สารสกัดสำหรับ desorbที่ 250 เซลเซียส 15 นาที อุปกรณ์ GC – MS และการตั้งค่าได้:คอลัมน์ DB 5 (ความยาว 60 เมตร ประชาชน 0.25 mm ความ หนา 1.00 มม.ฟิล์มJ และ W โฟลซัม CA), ควบคู่กับจับ 5973 N MS(Agilent เทคโนโลยี) เตาอบคอลัมน์โปรแกรมจะเพิ่ม 4 C min1 จากต้น 40 C 230 การ C แล้ว rampedที่ min1 100 C ถึง 260 C และสำหรับ 11.70 min สำหรับเวลาที่ใช้ของ 60 นาที ใช้ฮีเลียมเป็นก๊าซผู้ขนส่งที่อัตราการไหลของmin1 1.5 mL. ทางเข้าของ ionizing แหล่งและโอนย้ายบรรทัดที่ถูกเก็บไว้ที่ 250, 230, 280 C ตามลำดับ มีการตรวจสอบหน่วยมวลจาก 30 ถึง 250 m/z และ ionized ที่ 70 eV ได้รวบรวมข้อมูลโดยใช้ระบบข้อมูล ChemStation G1701 AA (Hewlett – Packard ปาโลอัลโต้ CA) ส่วนผสมของซี-5 ถึง C 18 n-alkanes ถูกเรียกใช้ในการจุดเริ่มต้นของแต่ละวันคำนวณดัชนีคง (RIs) เปลี่ยนแปลงได้ระบุ โดยเปรียบเทียบของแรมสเป็คตราของมวลสารรายการไลบรารี (ไลบรารีสเปกตรัมของมวล NIST EPA/NIH รุ่น2.0 d สถาบันมาตรฐานแห่งชาติและเทคโนโลยี GaithersburgMA), เช่น โดยการเปรียบเทียบ RI มีกลิ่นมาตรฐานที่ได้รับอนุญาตเป็นซื้อจากซิก-Aldrich (St. Louis, MO) หรือ Fluka สารประกอบบริษัทเคมี (Buchs สวิตเซอร์แลนด์)วิธีนับโดยเทียบกับขนาดสูงสุดเส้นโค้งความเข้มข้นที่สร้างขึ้น โดย serially diluting ห้าจุดมาตรฐานโซลูชั่น (ไบ et al., 2002) สั้น ๆ สารประกอบมาตรฐานถูกละลายในเมทานอลบริสุทธิ์ และส่วนผสมถูกนำมาใช้แล้วเป็น homogenate มะเขือเทศ deodorized ความเข้มข้นในการความเข้มข้นครอบคลุมเส้นมาตรฐานสำหรับสารประกอบแต่ละช่วงที่พบในตัวอย่าง2.3 การประเมินรับความรู้สึกดำเนินการทดสอบเปรียบเทียบคู่ (Meilgaard et al., 1999)เปรียบเทียบ MeSA หรือ MeJA บำบัดน้ำควบคุม แยกต่างหาก เนื่องจากความแตกต่างใน ripening เวลารันการประเมินบำบัดเย็นแผงแยกต่างหากจากการรักษาที่ไม่ใช่อาหาร และมีเทียบกับไม่รำคาญการเปรียบเทียบไม่ใช่หนาว แต่ละแผงรับความรู้สึกถูกดำเนินการโดยสมาชิก 30 สำหรับกลิ่นผลการประเมินฯ มะเขือเทศถูกตัดเป็นไว้ใน 2 cm3 wedges และ 3 wedges (ประมาณ 35 กรัม)4 ออนซ์ (118 mL) พลาสติก souffle' ถ้วย (บริษัทถ้วย Solo1 ป่าทะเลสาบ IL)มีฝา และป้ายชื่อที่ มีเลขรหัสสามหลัก Panelistsมีแสดงตัวอย่างรหัสที่สองสั่ง alternatedงานนำเสนอ พวกเขาถูกขอให้เปิดฝา กลิ่นตัวอย่าง และบ่งชี้ใดมีกลิ่นมะเขือเทศมากที่สุด ที่เวลาระหว่างผลไม้ตัดและประเมินผลทางประสาทสัมผัสมีน้อยกว่าหนึ่งชั่วโมง สมาชิกทั้งหมดในแผง ฝึกฝนสำหรับการประเมินเฉพาะมะเขือเทศหอม มีความคุ้นเคยกับการประเมินทางประสาทสัมผัสอื่น ๆผลิตภัณฑ์น้ำผลไม้ และผลไม้ และมีประเมินหอมมะเขือเทศก่อนหน้านี้L. W

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

2.1 วัสดุพืชผู้ใหญ่สีเขียวฟลอริด้า 47 'มะเขือเทศเก็บเกี่ยวจากสนามเชิงพาณิชย์ในฟอร์ตเพียร์ซ, ฟลอริด้าเมื่อวันที่ 7 พฤษภาคม 2014 เครื่องแบบและผลไม้ที่ปราศจากข้อบกพร่อง300 มีน้ำหนักเฉลี่ย 265 กรัมสัมผัสกับ80ml L1 เอทิลีน 48 ชั่วโมงที่ 20 องศาเซลเซียสในการเริ่มต้นและประสานสุก หลังจากลบที่ยังไม่บรรลุนิติภาวะ (เหลืออยู่ที่เวทีสีเขียว) และผลไม้ในช่วงการพัฒนา 240 มะเขือเทศที่เบรกเกอร์เวที(ก * = 7.3 0.93; พื้นที่สีแดงน้อยกว่า 10% ของพื้นผิวทั้งหมด) (USDA, 1997) ได้รับการคัดเลือกแล้วและแบ่งออกเป็น สามจำนวนมาก80 ผลไม้แต่ละ H2O (ควบคุม) MESA หรือการรักษา MeJAvapor สำหรับจำนวนมากในแต่ละ 80 ผลไม้ที่ถูกวางไว้ในสอง 45-L บรรจุภัณฑ์แก้วสุญญากาศที่มี40 ผลไม้แต่ละ เส้นผ่าศูนย์กลาง 7 ซมแผ่นกระดาษกรองแช่ในหนึ่งของตัวแทนต่อไปนี้31.0mL น้ำ DI, 222.9mL ของ MESA หรือ374.6mL ของเชื้อรถูกระงับจากด้านบนของภาชนะแก้วกับผลไม้เป็นเวลา24 ชั่วโมงที่ 20 องศาเซลเซียส ไอสารเคมีสุดท้ายความเข้มข้นในภาชนะบรรจุที่เป็น 0.05 มิลลิ หลังจากที่รมควัน, ตู้คอนเทนเนอร์ถูกเปิดและมีการระบายอากาศเป็นเวลา 12 ชั่วโมง 80 ผลไม้ในการรักษาแต่ละถูกแบ่งออกเป็นสองกลุ่มคือกลุ่มหนึ่งถูกวางโดยตรงที่20 องศาเซลเซียสเป็นเวลาสุกในขณะที่คนอื่น ๆ ? โอนถึง 5 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 9 วันก่อนหรือไม่ สุกที่ 20 องศาเซลเซียส ทั้งหมดนี้คือการทดสอบรวมกันสองปัจจัยมี 3 ทางเคมี fumigations? 2 อุณหภูมิการจัดเก็บและแต่ละรวมกัน(การรักษา) ที่มี 40 ผลไม้. สำหรับการรักษาที่ไม่แช่เย็นตัวอย่างถูกนำเดียวกันวันที่สีของการควบคุมถึงที่ราบสูง (สีแดง) หลังจากที่มีการจัดเก็บ7 วันที่ค่า * เป็น 20.9? 0.8, 19.5? 1.2 และ19.1? 0.6 สำหรับการควบคุมเชื้อรและเมซาตามลำดับ สำหรับแช่เย็นรักษาสุกของผลไม้ที่ถูกเลื่อนออกไป 14 d (9 d ที่ 5? C + 5 d ที่ 20 องศาเซลเซียส) และกลุ่มตัวอย่างถูกนำเมื่อมาถึงสีที่ราบสูงที่มีมูลค่า18.6 *? 0.6, 20.2? 1.1 และ 20.7? 0.9 สำหรับน้ำหนาว+ (ควบคุมหนาว) เชื้อร + หนาวและ MESA + หนาวตามลำดับ ยี่สิบสี่จากทั้งหมด 40 ผลไม้ต่อการรักษาได้รับการคัดเลือกในการวิเคราะห์สารระเหยที่มีสามผลไม้ต่อซ้ำ? แปดซ้ำ ผลไม้ที่เหลือถูกนำมาใช้ประสาทสัมผัสแผง. 2.2 การวิเคราะห์ระเหยเปลือกเนื้อเยื่อที่ถูกเก็บรวบรวมได้อย่างรวดเร็วจากสามผลไม้ต่อซ้ำด้วยมีดสแตนเลสคมแช่ของเหลวN2, บดประมาณชิ้น 0.5 ซม. โดยโกร่งบดยาแล้วเก็บไว้ที่80 องศาเซลเซียสจนการวิเคราะห์ เนื้อเยื่อเปลือกแช่แข็งออกจากการจัดเก็บแช่แข็งเป็นพื้นดินต่อไปผงภายใต้ของเหลวไนโตรเจนโดยใช้ครกและสากและ4.3 กรัมของผงร่วมกับ1.7 มิลลิลิตรของสารละลาย CaCl2 อิ่มตัวถูกย้ายไป 20 มิลลิลิตรขวดปิดผนึกด้วยSEPTA เทฟลอนเรียงราย ( Gerstel อิงค์ลินทิ, MD). Volatiles วิเคราะห์โดย headspace ของแข็งเฟส microextraction, และโค spectrometry มวลก๊าซ(HS-อยู-GC-MS) ระบบดังต่อไปตากใบ et al, (2011) 's วิธีการมีการปรับเปลี่ยน ขวดตัวอย่างถูกละลายภายใต้น้ำประปาการ vortex สำหรับ 30 วินาทีและโหลดลงบนเครื่องฉีดตัวอย่างอัตโนมัติ (รุ่น MPS2, Gerstel อิงค์) พร้อมกับถาดระบายความร้อน (สกอตแลนด์เทคสวีเดน) ควบคุมโดย Peltier เทอร์โม (CTC เอจี Analytics วิตเซอร์แลนด์) ด้วยการตั้งค่าอุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสและจัดขึ้นจนถึงการวิเคราะห์ headspace. สำหรับการวิเคราะห์ headspace, ขวดตัวอย่างถูกบ่มเป็นเวลา 30 นาทีที่40 องศาเซลเซียสก่อน 2 ซมของแข็ง microextraction (อยู) เส้นใย(50/30 มม DVB / Carboxen / PDMS; Supelco, เบลลาฟอน, PA) ได้รับการสัมผัสกับheadspace อีก 30 นาทีที่ 40 องศาเซลเซียส หลังจากการเปิดรับใยอยูที่ถูกใส่เข้าไปในหัวฉีดของ GC-MS (รุ่น 6890, Agilent, ซานตาคลารา, แคลิฟอร์เนีย) เพื่อ desorb สารสกัดสำหรับ15 นาทีที่ 250 องศาเซลเซียส อุปกรณ์ GC-MS และการตั้งค่าได้: DB-5 คอลัมน์ (60 เมตรความยาว 0.25 มมรหัสความหนาของฟิล์ม 1.00mm; J & W วิทยาศาสตร์, ฟอลซัม CA) ควบคู่ไปกับการตรวจจับ 5973 ไม่มี MS (Agilent Technologies) เตาอบคอลัมน์เป็นโปรแกรมที่จะเพิ่มขึ้นใน 4 องศาเซลเซียส min1 จากเริ่มต้น 40? C ถึง 230? C แล้ว ramped ที่ 100 องศาเซลเซียส min1 ถึง 260 องศาเซลเซียสและจัดขึ้นเป็นเวลา 11.70 นาทีเวลาทำงานรวม60 นาที ฮีเลียมถูกใช้เป็นก๊าซที่อัตราการไหล1.5 มิลลิลิตร min1 ปากน้ำแหล่งโอโซนและสายโอนถูกเก็บไว้ที่ 250, 230 และ 280 องศาเซลเซียสตามลำดับ หน่วยมวลถูกตรวจสอบ30-250 เมตร / z และแตกตัวเป็นไอออนที่ 70 eV เก็บรวบรวมข้อมูลโดยใช้ChemStation G1701 AA ระบบข้อมูล (Hewlett-Packard, พาโลอัลโตแคลิฟอร์เนีย) ส่วนผสมของ C-5 กับ C-n-18 แอลเคนก็วิ่งไปที่จุดเริ่มต้นของแต่ละวันในการคำนวณดัชนีการเก็บรักษา(RIS) ระเหยสารที่ถูกระบุโดยเปรียบเทียบสเปกตรัมของมวลของพวกเขาที่มีรายการห้องสมุด(NIST / EPA / NIH มวลสเปกตรัมห้องสมุด, รุ่น2.0d; สถาบันมาตรฐานและเทคโนโลยี Gaithersburg, MA) เช่นเดียวกับโดยการเปรียบเทียบกับผู้มีอำนาจ RI กลิ่นหอมมาตรฐานสารที่ซื้อมาจาก Sigma-Aldrich (เซนต์หลุยส์) หรือ Fluka คอร์ปอเรชั่นเคมี (Buchs วิตเซอร์แลนด์). ปริมาณได้ดำเนินการโดยใช้ขนาดสูงสุดเมื่อเทียบกับเส้นโค้งความเข้มข้นที่สร้างขึ้นโดยลำดับเจือจางจุดห้ามาตรฐานโซลูชั่น(ใบ et al., 2002) . สั้น ๆ , สารมาตรฐานละลายในเมทานอลบริสุทธิ์และส่วนผสมที่ได้รับการแนะนำจากนั้นเป็นhomogenate มะเขือเทศกลิ่น ความเข้มข้นในโค้งมาตรฐานสำหรับแต่ละสารประกอบครอบคลุมความเข้มข้นช่วงที่พบในตัวอย่าง. 2.3 การประเมินทางประสาทสัมผัสการทดสอบจับคู่เปรียบเทียบ (Meilgaard et al., 1999) ได้ดำเนินการเปรียบเทียบทั้งการรักษาMESA หรือเชื้อรด้วยน้ำควบคุมแยกต่างหาก เพราะความแตกต่างในเวลาสุกที่ประเมินแผงสำหรับการรักษาที่ถูกแช่เย็นทำงานแยกต่างหากจากการรักษาที่ไม่แช่เย็นและไม่มีหนาวกับการเปรียบเทียบที่ไม่หนาว แต่ละแผงประสาทสัมผัสได้ดำเนินการโดย30 คนสำหรับการประเมินผลโดยรวมกลิ่นหอม มะเขือเทศถูกตัดออกเป็น2 cm3 เวดจ์และสามเวดจ์ (ประมาณ 35 กรัม) ถูกวางไว้ใน4 ออนซ์ (118 มิลลิลิตร) พลาสติกถ้วยตีให้เป็นฟอง (Solo1 ถ้วย Co. , Lake Forest, IL) ที่มีฝาปิดและติดป้ายที่มีสามหลัก หมายเลขรหัส ผู้ร่วมอภิปรายที่มีการนำเสนอทั้งสองตัวอย่างรหัสคำสั่งสลับของงานนำเสนอ พวกเขาถูกขอให้เปิดฝา, กลิ่นตัวอย่างและบ่งบอกถึงความเป็นที่หนึ่งมีกลิ่นมะเขือเทศมากที่สุด เวลาระหว่างการตัดไม้และการประเมินผลทางประสาทสัมผัสน้อยกว่าหนึ่งชั่วโมง สมาชิกทุกคนในแผงรับการฝึกฝนสำหรับการประเมินผลที่เฉพาะเจาะจงของกลิ่นหอมมะเขือเทศคุ้นเคยกับประสาทสัมผัสอื่น ๆ ของผลไม้และผลิตภัณฑ์ผลไม้และได้รับการประเมินกลิ่นหอมมะเขือเทศก่อนหน้านี้. ลิตร W

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

2.1 . วัสดุพืช
mature green ' FL 47 ' มะเขือเทศถูกเก็บเกี่ยวจาก
ฟิลด์เชิงพาณิชย์ใน Fort Pierce , FL , เมื่อ 7 พฤษภาคม 2014 เครื่องแบบและ
ข้อบกพร่องผลไม้ ฟรี 300 มีน้ำหนักเฉลี่ย 265 กรัมจำนวน
ตาก 80ml L1 เอทิลีนที่ 20 ชั่วโมง 48 C คิดค้น
ประสานสุก หลังจากเอาเด็ก ( เหลือที่
เวทีสีเขียว ) และพัฒนาผลไม้ , 240
มะเขือเทศที่เบรกเกอร์เวที ( * = 7.3 0.93 ; พื้นที่สีแดงน้อยกว่า 10% ของพื้นผิวทั้งหมด )
( USDA , 1997 ) ได้เลือกและแบ่งออกเป็นสามมากมาย
80 ผลไม้แต่ละ h2o ( การควบคุม ) mejavapor Mesa หรือการรักษา สำหรับ
กันเยอะ 80 ผลไม้อยู่ใน 2 45-l airtight ภาชนะแก้ว
40 ผลไม้แต่ละ เป็น 7-cm เส้นผ่าศูนย์กลางกรองกระดาษแผ่นแช่ในหนึ่ง
ต่อไปนี้ตัวแทน 31.0ml ของ ดิ น้ำ 222.9ml ของ Mesa หรือ
374.6ml ของตารางถูกระงับจากด้านบนของภาชนะแก้ว
กับผลไม้เป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่ 20 C สุดท้ายไอ
เคมีความเข้มข้นในภาชนะ 0.05 มิลลิเมตร หลังจากรม ,
คอนเทนเนอร์ที่ถูกเปิดและระบายอากาศ 12 H 80 ผลไม้
รักษาแต่ละแบ่งออกเป็นสองกลุ่มหนึ่งเป็นกลุ่ม
โดยตรงอยู่ที่ 20 C สุก , ในขณะที่อื่น ๆคือ
ย้ายไป 5 C 9 D ก่อนที่จะสุกที่ 20 C . โดยรวมเป็นสองปัจจัยนี้
3
fumigations ชุดทดลองเคมี 2 ระดับอุณหภูมิ และแต่ละชุด
( รักษา ) บรรจุ 40 ผลไม้ .
ไม่ใช่เย็นรักษาจำนวนที่ถ่ายวันเดียวกัน
เมื่อสีของ ควบคุมถึงที่ราบสูง ( สีแดง ) หลังจาก
7 กระเป๋า , a * เท่ากับ 20.9 0.8 , 19.5 1.2 ,และ
0.6 บาทสำหรับการควบคุม และตาราง Mesa , ตามลำดับ แช่เย็น
การสุกของผลไม้ที่ล่าช้า โดย 14 D ( 9 D 5 C 5 D
ที่ 20 C ) , และจำนวนที่ถ่ายตอนสีถึงที่ราบสูง
กับ * มูลค่า 18.6 0.6 และ 0.9 ตามลำดับ สำหรับครอบครัว
น้ำหนาว ( การควบคุมอุณหภูมิสำหรับ ) , ตารางและหนาวและเย็น
ตามลำดับยี่สิบสี่จากทั้งหมด 40 ผลต่อการบำบัด
สุ่มการวิเคราะห์สารระเหย 3 ผลต่อ ทำซ้ำ
แปด ได้แก่ ผลไม้ที่เหลือใช้สำหรับแผงประสาทสัมผัส
.
2.2 . ระเหย การวิเคราะห์เนื้อเยื่อเปลือก
3
รีบเก็บผลไม้ต่อซ้ำด้วยคมมีดสแตนเลสแช่อยู่ในไนโตรเจนเหลวแหลกๆ
0

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.