Immunology-based assaysImmunology-b

Immunology-based assays
Immunology-based assays which employ specific mono- or
polyclonal antibodies binding with somatic or flagella antigens
have been broadly used for detection of Salmonella spp. in a variety
of sample matrices (Betts, 2002; Blivet et al., 1998; Iqbal et al.,
2000; Maciorowski et al., 2006). The immunology-based assays
include enzyme-linked immunoabsorbent assay (ELISA), latex
agglutination tests, immunodiffusion, and immunochromatography
(dipstick). As routine analysis techniques, these assays
remain a valuable option due to the ability to detect viable nonculturable
Salmonella cells (Maciorowski et al., 2006). The previous
studies showed that the immunology-based assays are comparable
to and more rapid and specific than cultural methods,
feasible to isolate Salmonella spp. in conjunction with immunomagnetic
separation (IMS) techniques to handle large samples, and
readily automated to reduce time and labor (Keith, 1997; Tietjen &
Fung, 1995; Uyttendaele, Vanwildemeersch, & Debevere, 2003).
However, these methods have some potential shortcomings for
detection of Salmonella including a longer enrichment time to
obtain the appropriate number of cells, cross-reactions with closely
related antigens, antigen variation, limits in sensitivity for some
sample matrices and stressed cells, and high cost for automation
(Blivet et al., 1998; Bolton, Fritz, & Poynton, 2000; Dill, Stanker, &
Young, 1999; Uyttendaele et al., 2003)

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

Immunology-based assaysImmunology-based assays which employ specific mono- orpolyclonal antibodies binding with somatic or flagella antigenshave been broadly used for detection of Salmonella spp. in a varietyof sample matrices (Betts, 2002; Blivet et al., 1998; Iqbal et al.,2000; Maciorowski et al., 2006). The immunology-based assaysinclude enzyme-linked immunoabsorbent assay (ELISA), latexagglutination tests, immunodiffusion, and immunochromatography(dipstick). As routine analysis techniques, these assaysremain a valuable option due to the ability to detect viable nonculturableSalmonella cells (Maciorowski et al., 2006). The previousstudies showed that the immunology-based assays are comparableto and more rapid and specific than cultural methods,feasible to isolate Salmonella spp. in conjunction with immunomagneticseparation (IMS) techniques to handle large samples, andreadily automated to reduce time and labor (Keith, 1997; Tietjen &Fung, 1995; Uyttendaele, Vanwildemeersch, & Debevere, 2003).However, these methods have some potential shortcomings fordetection of Salmonella including a longer enrichment time toobtain the appropriate number of cells, cross-reactions with closelyrelated antigens, antigen variation, limits in sensitivity for somesample matrices and stressed cells, and high cost for automation(Blivet et al., 1998; Bolton, Fritz, & Poynton, 2000; Dill, Stanker, &หนุ่ม 1999 Uyttendaele et al. 2003)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ตรวจภูมิคุ้มกันตาม
การวิเคราะห์ภูมิคุ้มกันตามที่การจ้างงานขาวดำที่เฉพาะเจาะจงหรือ
แอนติบอดีโพลีผูกพันกับร่างกายหรือ flagella แอนติเจน
ที่มีการใช้อย่างกว้างขวางในการตรวจหาเชื้อ Salmonella spp ในความหลากหลาย
ของการฝึกอบรมกลุ่มตัวอย่าง (เบตต์ 2002; Blivet et al, 1998;. อิคบาล, et al.,
2000. Maciorowski et al, 2006) ตรวจภูมิคุ้มกันตาม
ได้แก่ เอนไซม์ที่เชื่อมโยง immunoabsorbent ทดสอบ (ELISA) น้ำยาง
ทดสอบการเกาะติดกัน, immunodiffusion และอิมมูโน
(dipstick) ในฐานะที่เป็นเทคนิคการวิเคราะห์ประจำการตรวจเหล่านี้
ยังคงเป็นตัวเลือกที่มีคุณค่าเนื่องจากความสามารถในการตรวจสอบการทำงานได้ nonculturable
เซลล์เชื้อ Salmonella (Maciorowski et al., 2006) ก่อนหน้านี้
การศึกษาแสดงให้เห็นว่าการตรวจภูมิคุ้มกันตามที่มีการเทียบเคียง
และมากขึ้นอย่างรวดเร็วและเฉพาะเจาะจงกว่าวิธีการทางวัฒนธรรม
ที่เป็นไปได้ในการแยกเชื้อ Salmonella spp ร่วมกับ immunomagnetic
แยก (IMS) เทคนิคในการจัดการกับกลุ่มตัวอย่างขนาดใหญ่และ
พร้อมอัตโนมัติเพื่อลดเวลาและแรงงาน (คี ธ 1997; Tietjen &
Fung, 1995; Uyttendaele, Vanwildemeersch และ Debevere, 2003).
อย่างไรก็ตามวิธีการเหล่านี้มีศักยภาพบางอย่าง ข้อบกพร่องสำหรับการ
ตรวจหาเชื้อ Salmonella รวมทั้งการเพิ่มปริมาณเป็นเวลานานกว่าจะ
ได้รับจำนวนที่เหมาะสมของเซลล์ปฏิกิริยาข้ามกับอย่างใกล้ชิด
แอนติเจนที่เกี่ยวข้องกับการเปลี่ยนแปลงแอนติเจนข้อ จำกัด ในความไวสำหรับบางคน
การฝึกอบรมและเน้นตัวอย่างเซลล์และค่าใช้จ่ายสูงสำหรับระบบอัตโนมัติ
(Blivet et al, 1998; โบลตัน, ฟริตซ์และ Poynton 2000; ดิลล์ Stanker และ
หนุ่มสาว 1999;. Uyttendaele, et al, 2003)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วิทยาภูมิคุ้มกันพื้นฐาน )วิทยาภูมิคุ้มกันพื้นฐานและวิธีการซึ่งใช้เฉพาะเดี่ยวหรือใช้ผูกกับโซมาติกหรือแฟลกเจลลาแอนติเจนแอนติบอดีได้ถูกใช้อย่างกว้างขวางในการตรวจหาเชื้อ Salmonella spp . ในความหลากหลายตัวอย่างของเมทริกซ์ ( เบต , 2002 ; blivet et al . , 1998 ; บัล et al . ,2000 ; maciorowski et al . , 2006 ) ด้านวิทยาภูมิคุ้มกันจากพยายามรวม immunoabsorbent enzyme-linked assay ( ELISA ) , น้ำยางข้นทดสอบ immunodiffusion เกาะติดกัน และ immunochromatography( โง่ ) เป็นเทคนิคการวิเคราะห์ตามปกติ วิธีเหล่านี้ยังคงเป็นตัวเลือกที่มีคุณค่าเนื่องจากความสามารถในการตรวจสอบได้ nonculturableซัลโมเนลลา เซลล์ ( maciorowski et al . , 2006 ) ก่อนหน้านี้การศึกษาพบว่าใช้วิธีภูมิคุ้มกันวิทยา เปรียบเทียบกับและมากขึ้นกว่าวิธีการอย่างรวดเร็วและเฉพาะทางวัฒนธรรมเป็นไปได้ที่จะแยก Salmonella spp . ที่ร่วมกับการแยก ( IMS ) เทคนิคจัดการตัวอย่างขนาดใหญ่พร้อมแบบอัตโนมัติเพื่อลดเวลาและแรงงาน ( 1997 ; tietjen & คีธฟง , 1995 ; uyttendaele vanwildemeersch , และ debevere , 2003 )อย่างไรก็ตาม วิธีการเหล่านี้มีบางอย่างที่อาจเป็นจุดอ่อนสำหรับตรวจ รวมทั้งเสริมเวลาอีกต่อไปได้รับหมายเลขที่เหมาะสมของเซลล์ ปฏิกิริยาข้ามกับอย่างใกล้ชิดที่เกี่ยวข้องกับการเปลี่ยนแปลงแอนติเจนแอนติเจน , ขีด จำกัด ความไวบางตัวอย่างเมทริกซ์และเน้นเซลล์ , และค่าใช้จ่ายสูงสำหรับระบบอัตโนมัติ( blivet et al . , 1998 ; โบลตัน ฟริตซ์ & Poynton , 2000 ; ดิล stanker , และหนุ่ม , 1999 ; uyttendaele et al . , 2003 )