TaqManPCR-positiveDNAsamples were u

TaqManPCR-positiveDNAsamples were used for specific identification of A. phagocytophilum, A. platys, E. chaffeensis, E. ewingii, E. canis, and E. muris by nested and single-tube conventional PCRs, as previously described, using species-specific primers (Table 1). The 16S rRNA gene fragment of A. phagocytophilum was amplified by a nested PCR assay according to the procedure of Barlough et al. (6). PCR for E. muris was performed using primers CAN M61f and MUR SPR1, targeting the gltA gene of E. muris (21). The primer sets for nested PCRs for A. platys, E. chaffeensis, E. ewingii, and E. canis DNAs were derived from the 16S rRNA gene sequences, with the same pair of outer primers and different sets of inner primers (36, 37). The oligonucleotide sequences for each pair of genus- and species-specific primers are shown in Table 1. PCR amplification of genomic DNAs of R. rickettsii, R. japonica, and Borrelia burg
dorferi was performed with species-specific primers (Table 1) as previously described (16, 42, 52).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

TaqManPCR-positiveDNAsamples ถูกใช้สำหรับ identification specific A. phagocytophilum, A. platys, E. chaffeensis, E. ewingii กลุ่มดาวสุนัข E. และ E. muris โดยซ้อน และ หลอดเดียวปกติ PCRs อธิบายไว้ก่อนหน้านี้เป็น ใช้ไพรเมอร์ชนิด specific (ตารางที่ 1) ชิ้นส่วนยีนใน rRNA 16S ของ A. phagocytophilum เป็น amplified โดยการทดสอบ PCR ซ้อนตามวิธีของ Barlough et al. (6) ทำ PCR สำหรับ E. muris ใช้ไพรเมอร์สามารถ M61f และว่า SPR1 ยีน gltA ของ E. muris (21) การกำหนดเป้าหมาย ตั้งพื้นที่ PCRs ซ้อน A. platys, E. chaffeensis, E. ewingii และกลุ่มดาวสุนัข E. DNAs ซึ่ง 16S rRNA ยีนลำดับที่ มีคู่เดียวกันของไพรเมอร์ภายนอกและชุดไพรเมอร์ภายใน (36, 37) ลำดับ oligonucleotide สำหรับแต่ละคู่ไพรเมอร์สกุล - และพันธุ์-specific จะแสดงในตารางที่ 1 Amplification PCR ของ genomic DNAs R. rickettsii, R. japonica, Borrelia burgทำกับไพรเมอร์ชนิด specific dorferi (ตารางที่ 1) ได้อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ (16, 42, 52)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

TaqManPCR-positiveDNAsamples ถูกนำมาใช้สำหรับ speci สายคไอออนบวกของสายระบุ phagocytophilum เอ Platys เออี chaffeensis อี ewingii อี canis และอี muris โดยซ้อนกันและหลอดเดียว PCRs ธรรมดาตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้โดยใช้คไฟชนิด speci ไพรเมอร์ (ตารางที่ 1) 16S rRNA ส่วนของยีน phagocytophilum เอเป็นสาย Ampli ed โดยทดสอบ PCR ที่ซ้อนกันไปตามขั้นตอนของการ Barlough et al, (6) PCR สำหรับอี muris ได้รับการดำเนินการโดยใช้ไพรเมอร์และ CAN M61f MUR SPR1 เป้าหมายยีน gltA อี muris (21) ชุดไพรเมอร์สำหรับ PCRs ที่ซ้อนกันสำหรับ Platys เออี chaffeensis อี ewingii และ DNAs อี canis ได้มาจาก 16S rRNA ลำดับยีนกับคู่เดียวกันของไพรเมอร์ด้านนอกและชุดที่แตกต่างของไพรเมอร์ด้านใน (36, 37 ) ลำดับ oligonucleotide สำหรับคู่ของ genus- และชนิด speci ไพรเมอร์คไฟแต่ละที่จะแสดงในตารางที่ 1 PCR ไอออนบวกไฟ Ampli ของดีเอ็นเอจีโนมของ rickettsii อาร์อาร์ japonica และ Borrelia burg
dorferi ได้ดำเนินการกับสายชนิด speci ไพรเมอร์ค (ตารางที่ 1) ในฐานะ อธิบายไว้ก่อนหน้า (16, 42, 52)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

taqmanpcr positivednasamples ถูกใช้เพื่อกาจึง C identi จึงบวกของ phagocytophilum อ. platys เช่น chaffeensis e . ewingii e . อยู่ และ E . มูริส โดยซ้อนกันและโสดหลอดธรรมดา pcrs ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ จึงใช้ไพรเมอร์ชนิดประเภท C ( ตารางที่ 1 ) ส่วนเบส 16S rRNA ยีนจำเพาะของ phagocytophilum คือ ampli จึงเอ็ดโดยซ้อน PCR assay ตามขั้นตอนของ barlough et al . ( 6 )ซึ่งการใช้ไพรเมอร์อีมูริสได้และรับ m61f MUR , glta ยีนเป้าหมาย . มูริส ( 21 ) ไพรเมอร์ชุดซ้อนกัน pcrs . platys เช่น chaffeensis e . ewingii และอี อยู่แถบ ได้มาจาก 16S rRNA ยีน ลำดับ กับคู่เดียวกันของไพรเมอร์ที่ด้านนอกและชุดที่แตกต่างกันของชนิดภายใน ( 36 , 37 )ที่ซึ่งลำดับสำหรับคู่ของแต่ละสกุลและชนิด C โดยมีกาจึงแสดงดังตารางที่ 1 ampli ไอออนบวกของจีโนมดีเอ็นเอจึงจำเพาะของ rickettsii , R ญี่ปุ่น และ borrelia เบิร์ก
dorferi แสดงกับสายพันธุ์กาจึงค PCR ( ตาราง 1 ) ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ( 16 , 42 , 52 )