electrodes (SPCEs) [21]. The electr

electrodes (SPCEs) [21]. The electrode was coupled with the
first E. coli O157:H7-specific antibody, E. coli O157:H7 intact
cells and the second E. coli O157:H7-specific antibody conjugated
with horseradish. The hydrogen peroxide and ferrocenedicarboxylic
acid (FeDC) were used as a substrate and
mediator, respectively. The presence of GNPs and FeDC
enhanced the response current by 13.1-folds, allowing for
detection of 6 CFU/strip and 50 CFU/strip in buffer and milk,
respectively. The concentration range from 102 CFU/mL to
107 CFU/mL could be detected by this amperometric method.
Cho et al [22] developed an electrochemical immunosensor
based on deposition of peptide nanotubes on SPCE
(PNseSPCE). The anti-E. coli O157:H7 antibody immobilized on
PNeSPCE adsorbed E. coli O157:H7 from samples through
antigeneantibody interaction and the response current was
measured by cyclic voltammetry. Some other E. coli strains
were also detected using sensors incorporating nanomaterials
such as MNPs [23], SNPs [24], GNPs [25], and carbon nanotubes
(CNTs) [26]. With D-mannose-functionalized MNPs, El-
Boubbou et al [23] developed a method to detect E. coli cells
at 104 cells/mL through incubation of the modified MNPs with
fluorescein-labeled concanavalin A at 4C for 12 hours, followed
by further incubation with E. coli cells in phosphatebuffered
saline (PBS) buffer, separation using magnetic field,
staining with fluorescent dye, and imaging with epifluorescent
microscopy. In a similar study, Kalele et al [24] used
rabbit immunoglobulin G (IgG) antibody-conjugated silver
nanoshells for rapid and highly selective detection of E. coli in
the range of 5e109 cells by monitoring the change in the SPR
band shift in the presence of E. coli cells. In addition, a rapid
anodic stripping voltammetric detection of E. coli using coreshell
Cu@GNPs as anti-E. coli sensors was also reported [25].
More recently, Maurer et al [26] developed a novel nanobiosensor
platform through decoration of CNTs with RNAcoated
GNPs for the selective detection of E. coli.
2.2. Salmonella
Salmonellosis is one of the most important bacterial diseases
caused mainly by Salmonella species such as Salmonella enteritidis
and Salmonella typhimurium [4]. The WHO statistics reveal
about tens of millions of new human cases affected and
100,000 deaths every year, with symptoms including fever,
abdominal pain, diarrhea, nausea, and vomiting [2,4,9]. A
highly sensitive electrochemical immunoassay for determination
of S. typhimurium was demonstrated by Dungchai et al
[27], who immobilized monoclonal antibodies on polystyrene
for capturing bacteria followed by adding polyclonal antibodyeGNPs
conjugate to bind the bacteria in the presence of
copper-enhancer solution and ascorbic acid. The copper
released upon reduction was deposited on GNPs for direct
measurement of S. typhimurium concentration by anodic
stripping voltammetry, with the limit of detection being
98.9 CFU/mL and the anodic current linearly depending on S.
typhimurium concentration over a working range of
1.30 102e2.6 103 CFU/mL [27]. In a later study, a reusable
capacitive immunosensor involving ethylenediamine and
GNPs grafted on glass carbon electrode was developed for
detection of Salmonella spp. in commercial pork samples [28].
The interaction of monoclonal antibodyeGNPs conjugated

electrodes (SPCEs) [21]. The electrode was coupled with the
first E. coli O157:H7-specific antibody, E. coli O157:H7 intact
cells and the second E. coli O157:H7-specific antibody conjugated
with horseradish. The hydrogen peroxide and ferrocenedicarboxylic
acid (FeDC) were used as a substrate and
mediator, respectively. The presence of GNPs and FeDC
enhanced the response current by 13.1-folds, allowing for
detection of 6 CFU/strip and 50 CFU/strip in buffer and milk,
respectively. The concentration range from 102 CFU/mL to
107 CFU/mL could be detected by this amperometric method.
Cho et al [22] developed an electrochemical immunosensor
based on deposition of peptide nanotubes on SPCE
(PNseSPCE). The anti-E. coli O157:H7 antibody immobilized on
PNeSPCE adsorbed E. coli O157:H7 from samples through
antigeneantibody interaction and the response current was
measured by cyclic voltammetry. Some other E. coli strains
were also detected using sensors incorporating nanomaterials
such as MNPs [23], SNPs [24], GNPs [25], and carbon nanotubes
(CNTs) [26]. With D-mannose-functionalized MNPs, El-
Boubbou et al [23] developed a method to detect E. coli cells
at 104 cells/mL through incubation of the modified MNPs with
fluorescein-labeled concanavalin A at 4C for 12 hours, followed
by further incubation with E. coli cells in phosphatebuffered
saline (PBS) buffer, separation using magnetic field,
staining with fluorescent dye, and imaging with epifluorescent
microscopy. In a similar study, Kalele et al [24] used
rabbit immunoglobulin G (IgG) antibody-conjugated silver
nanoshells for rapid and highly selective detection of E. coli in
the range of 5e109 cells by monitoring the change in the SPR
band shift in the presence of E. coli cells. In addition, a rapid
anodic stripping voltammetric detection of E. coli using coreshell
Cu@GNPs as anti-E. coli sensors was also reported [25].
More recently, Maurer et al [26] developed a novel nanobiosensor
platform through decoration of CNTs with RNAcoated
GNPs for the selective detection of E. coli.
2.2. Salmonella
Salmonellosis is one of the most important bacterial diseases
caused mainly by Salmonella species such as Salmonella enteritidis
and Salmonella typhimurium [4]. The WHO statistics reveal
about tens of millions of new human cases affected and
100,000 deaths every year, with symptoms including fever,
abdominal pain, diarrhea, nausea, and vomiting [2,4,9]. A
highly sensitive electrochemical immunoassay for determination
of S. typhimurium was demonstrated by Dungchai et al
[27], who immobilized monoclonal antibodies on polystyrene
for capturing bacteria followed by adding polyclonal antibodyeGNPs
conjugate to bind the bacteria in the presence of
copper-enhancer solution and ascorbic acid. The copper
released upon reduction was deposited on GNPs for direct
measurement of S. typhimurium concentration by anodic
stripping voltammetry, with the limit of detection being
98.9 CFU/mL and the anodic current linearly depending on S.
typhimurium concentration over a working range of
1.30  102e2.6  103 CFU/mL [27]. In a later study, a reusable
capacitive immunosensor involving ethylenediamine and
GNPs grafted on glass carbon electrode was developed for
detection of Salmonella spp. in commercial pork samples [28].
The interaction of monoclonal antibodyeGNPs conjugated

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

electrodes (SPCEs) [21]. The electrode was coupled with thefirst E. coli O157:H7-specific antibody, E. coli O157:H7 intactcells and the second E. coli O157:H7-specific antibody conjugatedwith horseradish. The hydrogen peroxide and ferrocenedicarboxylicacid (FeDC) were used as a substrate andmediator, respectively. The presence of GNPs and FeDCenhanced the response current by 13.1-folds, allowing fordetection of 6 CFU/strip and 50 CFU/strip in buffer and milk,respectively. The concentration range from 102 CFU/mL to107 CFU/mL could be detected by this amperometric method.Cho et al [22] developed an electrochemical immunosensorbased on deposition of peptide nanotubes on SPCE(PNseSPCE). The anti-E. coli O157:H7 antibody immobilized onPNeSPCE adsorbed E. coli O157:H7 from samples throughantigeneantibody interaction and the response current wasmeasured by cyclic voltammetry. Some other E. coli strainswere also detected using sensors incorporating nanomaterialssuch as MNPs [23], SNPs [24], GNPs [25], and carbon nanotubes(CNTs) [26]. With D-mannose-functionalized MNPs, El-Boubbou et al [23] developed a method to detect E. coli cellsat 104 cells/mL through incubation of the modified MNPs withfluorescein-labeled concanavalin A at 4C for 12 hours, followedby further incubation with E. coli cells in phosphatebufferedsaline (PBS) buffer, separation using magnetic field,staining with fluorescent dye, and imaging with epifluorescentmicroscopy. In a similar study, Kalele et al [24] usedrabbit immunoglobulin G (IgG) antibody-conjugated silvernanoshells for rapid and highly selective detection of E. coli inthe range of 5e109 cells by monitoring the change in the SPRband shift in the presence of E. coli cells. In addition, a rapidanodic stripping voltammetric detection of E. coli using coreshellCu@GNPs as anti-E. coli sensors was also reported [25].More recently, Maurer et al [26] developed a novel nanobiosensorplatform through decoration of CNTs with RNAcoatedGNPs for the selective detection of E. coli.2.2. SalmonellaSalmonellosis is one of the most important bacterial diseasescaused mainly by Salmonella species such as Salmonella enteritidisand Salmonella typhimurium [4]. The WHO statistics revealabout tens of millions of new human cases affected and100,000 deaths every year, with symptoms including fever,abdominal pain, diarrhea, nausea, and vomiting [2,4,9]. Ahighly sensitive electrochemical immunoassay for determinationof S. typhimurium was demonstrated by Dungchai et al[27], who immobilized monoclonal antibodies on polystyrenefor capturing bacteria followed by adding polyclonal antibodyeGNPsconjugate to bind the bacteria in the presence ofcopper-enhancer solution and ascorbic acid. The copperreleased upon reduction was deposited on GNPs for directmeasurement of S. typhimurium concentration by anodicstripping voltammetry, with the limit of detection being98.9 CFU/mL and the anodic current linearly depending on S.typhimurium concentration over a working range of1.30 102e2.6 103 CFU/mL [27]. In a later study, a reusablecapacitive immunosensor involving ethylenediamine andGNPs grafted on glass carbon electrode was developed fordetection of Salmonella spp. in commercial pork samples [28].The interaction of monoclonal antibodyeGNPs conjugated

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

ขั้วไฟฟ้า (SPCEs) [21] ขั้วไฟฟ้าเป็นคู่กับ
ครั้งแรกของเชื้อ E. coli O157: H7 แอนติบอดีเฉพาะเชื้อ E. coli O157: H7 เหมือนเดิม
เซลล์และครั้งที่สองเชื้อ E. coli O157: H7 แอนติบอดีเฉพาะผัน
กับพืชชนิดหนึ่ง ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์และ ferrocenedicarboxylic
Acid (FeDC) ถูกนำมาใช้เป็นสารตั้งต้นและ
คนกลางตามลำดับ การปรากฏตัวของ GNPs และ FeDC
เพิ่มการตอบสนองในปัจจุบัน 13.1 เท่าเพื่อให้สามารถ
ตรวจสอบของ 6 CFU / แถบและ 50 CFU / แถบในบัฟเฟอร์และนม
ตามลำดับ ช่วงความเข้มข้นจาก 102 CFU / มล
107 CFU / มิลลิลิตรสามารถตรวจพบได้โดยวิธี amperometric นี้.
โช et al, [22] การพัฒนา immunosensor ไฟฟ้า
ขึ้นอยู่กับการสะสมของท่อนาโนเปปไทด์ใน SPCE
(PNseSPCE) ต่อต้าน-E coli O157: H7 แอนติบอดีตรึงบน
PNeSPCE ดูดซับเชื้อ E. coli O157: H7 จากตัวอย่างที่ผ่าน
การมีปฏิสัมพันธ์ antigeneantibody และการตอบสนองในปัจจุบันได้รับการ
วัดโดย voltammetry วงจร บางสายพันธุ์อื่น ๆ E. coli
ยังถูกตรวจพบโดยใช้เซ็นเซอร์ผสมผสานวัสดุนาโน
เช่น MNPs [23], SNPs [24], GNPs [25] และท่อนาโนคาร์บอน
(CNTs) [26] กับ D-mannose-ฟังก์ชัน MNPs, El-
Boubbou et al, [23] การพัฒนาวิธีการตรวจหาเซลล์ E. coli
ที่ 104 เซลล์ / มลผ่านการบ่ม MNPs การแก้ไขด้วย
fluorescein ป้าย concanavalin ที่ 4 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 12 ชั่วโมง ตาม
ด้วยการบ่มต่อกับเซลล์อีโคไลใน phosphatebuffered
น้ำเกลือ (PBS) บัฟเฟอร์แยกโดยใช้สนามแม่เหล็ก
การย้อมสีด้วยสีย้อมเรืองแสงและการถ่ายภาพกับ epifluorescent
กล้องจุลทรรศน์ ในการศึกษาที่คล้ายกัน Kalele et al, [24] ใช้
กระต่ายอิมมูโนจี (IgG) เงินแอนติบอดีผัน
nanoshells สำหรับการตรวจสอบอย่างรวดเร็วและการเลือกสรรของเชื้อ E. coli ใน
ช่วงของเซลล์ 5e109 โดยการตรวจสอบการเปลี่ยนแปลงใน SPR
กะวงใน การปรากฏตัวของเซลล์ E. coli นอกจากนี้ยังมีอย่างรวดเร็ว
ไลลอกการตรวจสอบ voltammetric ของเชื้อ E. coli ใช้ coreshell
Cu @ GNPs AS Anti-E coli เซ็นเซอร์ยังมีรายงาน [25].
เมื่อเร็ว ๆ นี้ Maurer et al, [26] พัฒนา nanobiosensor นวนิยาย
แพลตฟอร์มผ่านการตกแต่งของ CNTs กับ RNAcoated
GNPs สำหรับการตรวจสอบการคัดเลือกเชื้อ E. coli.
2.2 Salmonella
Salmonellosis เป็นหนึ่งในโรคติดเชื้อแบคทีเรียที่สำคัญที่สุด
ส่วนใหญ่เกิดจากเชื้อ Salmonella ชนิดเช่นเชื้อ Salmonella Enteritidis
และ Salmonella typhimurium [4] สถิติขององค์การอนามัยโลกเปิดเผย
เกี่ยวกับหลายสิบล้านของมนุษย์กรณีใหม่และได้รับผลกระทบ
100,000 เสียชีวิตทุกปีรวมทั้งมีอาการไข้
ปวดท้องท้องเสียคลื่นไส้และอาเจียน [2,4,9]
immunoassay ไฟฟ้ามีความไวสูงสำหรับความมุ่งมั่น
ของเอส typhimurium ถูกแสดงให้เห็นโดย Dungchai et al,
[27] ที่ตรึงโคลนอลแอนติบอดีในสไตรีน
สำหรับการจับแบคทีเรียตามมาด้วยการเพิ่ม antibodyeGNPs โพลี
คอนจูเกตที่จะผูกแบคทีเรียในการปรากฏตัวของ
การแก้ปัญหาทองแดงเพิ่มและวิตามินซี กรด. ทองแดง
ได้รับการปล่อยตัวเมื่อลดถูกวางลงบน GNPs โดยตรง
วัดความเข้มข้นของเอส typhimurium โดยขั้วบวก
ลอก voltammetry กับขีด จำกัด ของการตรวจสอบการเป็น
98.9 CFU / มิลลิลิตรและขั้วบวกปัจจุบันเป็นเส้นตรงขึ้นอยู่กับเอส
ความเข้มข้น typhimurium ในช่วงการทำงานของ
1.30? 102e2.6? 103 CFU / มิลลิลิตร [27] ในการศึกษาต่อมานำมาใช้ใหม่
immunosensor capacitive ที่เกี่ยวข้องกับ ethylenediamine และ
GNPs ทาบบนขั้วไฟฟ้าคาร์บอนแก้วได้รับการพัฒนาสำหรับการ
ตรวจหาเชื้อ Salmonella spp ในตัวอย่างเนื้อหมูในเชิงพาณิชย์ [28].
ปฏิสัมพันธ์ของโมโนโคลนอล antibodyeGNPs ผัน

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

ขั้วไฟฟ้า ( spces ) [ 21 ] ขั้วไฟฟ้าอยู่คู่กับเป็นสมาชิก : H7 E . coli แรกเฉพาะแอนติบอดี , E . coli ) ยังคงเป็นสมาชิกเซลล์และเป็นสมาชิก E . coli ที่สอง : H7 ที่เฉพาะเจาะจงและแอนติบอดีด้วยผงมะรุม ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ และ ferrocenedicarboxylicกรด ( fedc ) ใช้เป็นสารตั้งต้น และคนกลาง ตามลำดับ การปรากฏตัวของ gnps และ fedcปรับปรุงการตอบสนองในปัจจุบัน โดย 13.1-folds ให้สำหรับการตรวจหาแถบ 6 cfu / 50 CFU / แถบในบัฟเฟอร์ และนมตามลำดับ ความเข้มข้นตั้งแต่ CFU / ml ถึง 102107 CFU / ml สามารถตรวจพบได้โดยวิธีการที่สำคัญนี้โช et al [ 22 ] พัฒนาต่อไฟฟ้าเคมีตามการสะสมของเปปไทด์นาโนบนก่อน( pnsespce ) การ anti-e. ( เป็นสมาชิก ) แอนติบอดีที่ถูกตรึงบนpnespce ดูดซับ E . coli เป็นสมาชิก ) จากตัวอย่างที่ผ่านantigeneantibody ปฏิสัมพันธ์และการตอบสนองในปัจจุบันวัดไซคลิกโวลแทมเมทรี E . coli สายพันธุ์อื่น ๆบางนอกจากนี้ยังตรวจพบการผสมผสาน nanomaterials เซ็นเซอร์เช่น mnps [ 23 ] , snps [ 24 ] gnps [ 25 ] และคาร์บอนนาโนทิวป์( cnts ) [ 26 ] กับ d-mannose-functionalized mnps เอล -boubbou et al [ 23 ] พัฒนาวิธีการตรวจหาเชื้อ E . coli เซลล์104 เซลล์ / มล. ผ่านการบ่มเพาะของการปรับเปลี่ยน mnps กับี่ถูกติดป้ายที่ 4C เป็นเวลา 12 ชั่วโมง ตามโดยเพิ่มเติมบ่มกับ E . coli เซลล์ใน phosphatebufferedน้ำเกลือ ( PBS ) บัฟเฟอร์ การแยกโดยใช้สนามแม่เหล็กย้อมด้วยสีย้อมฟลูออเรสเซนต์ และการถ่ายภาพด้วย epifluorescentกล้องจุลทรรศน์ . ในการศึกษาที่คล้ายกัน kalele et al [ 24 ] ใช้กระต่ายอิมมูโนโกลบูลินจี ( IgG ) แอนติบอดีและเงินnanoshells สำหรับอย่างรวดเร็ว และสูง การตรวจหาเชื้อ E . coli ในช่วง 5e109 เซลล์โดยการตรวจสอบการเปลี่ยนแปลงในสมบูรณ์วงดนตรี Shift ในการปรากฏตัวของ E . coli เซลล์ นอกจากนี้ อย่างรวดเร็วการตรวจหาเชื้อ E . coli มากการใช้ coreshellทองแดง @ gnps เป็น anti-e. coli เซ็นเซอร์ก็รายงาน [ 25 ]เมื่อเร็วๆ นี้ เมาเร่อ et al [ 26 ] พัฒนานาโนไบโอเซ็นเซอร์ใหม่แพลตฟอร์มที่ผ่านการตกแต่งด้วย rnacoated cntsgnps สำหรับการเลือกของ E . coli2.2 . ซัลโมเนลลาซาลโมเนลโลซิสเป็นหนึ่งในที่สำคัญที่สุดของโรคสาเหตุส่วนใหญ่ของเชื้อ Salmonella enteritidis ชนิด เช่นSalmonella Typhimurium [ 4 ] ที่สถิติเปิดเผยประมาณ 10 ล้านคนได้รับผลกระทบ และรายใหม่100000 เสียชีวิตทุกปีด้วย รวมถึงอาการไข้ปวดท้อง ท้องเสีย คลื่นไส้ และอาเจียน [ 2,4,9 ] เป็นที่มีความไวสูงสำหรับการตรวจวัดทางเคมีไฟฟ้าของ S . typhimurium พบ dungchai et al โดย[ 27 ] , ผู้ที่ถูกตรึงบนพอลิสไตรีนโมโนโคลนอลแอนติบอดีสำหรับการจับภาพโดยการเพิ่ม antibodyegnps ใช้แบคทีเรียตามผันผูกแบคทีเรีย ต่อหน้าโซลูชั่นเสริมทองแดงและกรดแอสคอร์บิค ทองแดงออกเมื่อมีการตกตะกอนใน gnps โดยตรงการวัดปริมาณ S . typhimurium โดยการแสงยูวีลอก , มีขีด จำกัด ของการเป็น98.9 CFU / ml และพระเนตรพระกรรณเป็นเส้นตรงขึ้นอยู่กับ .สารความเข้มข้นมากกว่าทำงาน ช่วงของ1 102e2.6 103 CFU / ml [ 27 ] ในการศึกษาใช้ในภายหลังแบบที่เกี่ยวข้องกับและต่อธิลีนไดเ ีนgnps ต่อกิ่งบนขั้วไฟฟ้าคาร์บอนแก้วได้รับการพัฒนาสำหรับการตรวจหาเชื้อ Salmonella spp . ในตัวอย่างหมูพาณิชย์ [ 28 ]ปฏิสัมพันธ์ของโมโนโคลนอล antibodyegnps คอนจูเกต

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.