Raw material and additivesFresh por

Raw material and additives
Fresh pork hams (Musculus biceps femoris, M. semitendinosus,and M. semimembranosus) and pork back fat were purchased from a local processor at post-mortem 48 h. Shade-dried safflower (C. tinctorius L.) petal was purchased from a local food market after the harvest within three months. The wheat fiber (Vitacel® Wheat Fiber-200, Barcelona, Spain), which contains approximately 74% cellulose and 26% hemicellulose (S
anchez-Alonso, Haji-Maleki, & Borderias, 2007), was also purchased.

2.2. Extraction of safflower red pigment and coloring of wheat fiber
The extraction of safflower red pigment and coloring of wheat fiber were conducted with the modification method described by Yoon et al. (2001). The safflower petalwas finely ground with a food blender in order to easily extract the safflower pigments. The ground safflower petal was placed in a cheese cloth bag and washed with water, at the top, for twenty-four hours to remove safflower yellow pigment, which is water-soluble. To extract safflower red pigments, which are solubilized in alkali condition, the washed safflower petal was added to ten volumes (v/w) of 0.1 N potassium carbonate solution (K2CO3) and stirred for twenty-four hours. To eliminate the petal, the extract solution passes through 2e3 layers of cheese cloth, and pH of the extracts solution (yellow color) was adjusted with 0.1Macetic acid solution until pH 5.5e5.7 to red color of xpression. And then, the colored wheat fiber was prepared as follows; the wheat fiber (WF) was colored with the safflower red pigment solution (1:10 ratio) and stirred for 12 h. after coloring, the wheat fiber colored with safflower red pigments (WFC) in the solution was separated with centrifugation at 6000 g for 15 min at 4 C, and the supernatant was discarded and the residues was collected. The residues obtained were dried in a 50 C hot-air dryer (Enex-Co-600, Enexs, Korea) for twenty-four hours.
The dried residues were powdered using a food blender, and the powder was passed through the 270 mesh testing sieves. The WFC collected was used to manufacture cooked sausages

2.3. Manufacturing of cooked sausages
six cooked sausages varying in sodium nitrite (0 and 120 ppm) and WFC (0, 1, and 2%) according to a 2  3 factorial design were prepared. All treatments were formulated with pork meat 900 g,pork back fat 300 g, ice 300 g, sodium chloride (NaCl) 22.5 g, and sodium tri-polyphosphate (STPP) 4.5 g. The cooked sausages were prepared with the procedures of Kim et al. (2014).

2.4. Scanning electron microscopy
The ultrastructure ofWF and WFC was observed using scanning electron microscopy (SEM). Samples were gold-coated using an ion sputter (E-1010, Hitachi, Tokyo, Japan), and the coated samples were scanned using electron microscopy (SEM, S-3000N, Hitachi) under standard procedures.

2.5. Proportions of myoglobin related pigments
The proportions of myoglobin related pigments, oxymyoglobin (MbFe2þO2), deoxymyoglobin (MbFe2þ), and metmyoglobin
(MbFe3þ) in meat batter were determined with method of Krzywicki (1982) described by Carlez, Veciana-Nogues, and Cheftel
(1995).

2.6. Cooking yield
The cooking yields of cooked sausages were determined by calculating the difference in weight after and before cooking (Kim
et al., 2014).

2.7. Color measurement
The color of cooked samples was determined with a colorimeter (Minolta Chroma meter CR-210, Osaka, Japan; illuminate C, calibrated with a white plate, CIE L*¼þ97.83, a*¼0.43, b* ¼þ1.98),equipped with a 50-mm aperture. The setting for the illuminant was C illuminant source and the standard observer was 2. Measurements were taken from the cross-section of the sample. The CIE L* (lightness), a* (redness), and b* (yellowness) values were recorded. The hue angle and chroma were calculated as follows; hue angle ¼ tan1(a*/b*) and chroma ¼ [(a*)2 þ (b*)2]1/2 (Deda, Bloukas,
& Fista, 2007).

2.8. Nitrosoheme pigments content
The nitrosoheme content were measured by the method of Hornsey (1956) described by Ahn et al. (2003). The pigments in
cooked samples were extracted by aceton-distilled water solvent system. The extract was filtered with a filter paper and absorbances were measured at 540 nm. The nitrosoheme contentwas expressed as ppm hematin.

2.9. Residual nitrite determination
The residual nitrite in cooked sausages was determined with AOAC methods, 973. 31 (1995).

2.10. Lipid oxidation
The cooked sausages were placed on a polystyrene tray and wrapped with oxygen permeable polyvinyl chloride (PVC) film, and stored in a 4 C refrigerator (Nieto, Xiong, Payne, & Castillo, 2015). At two storage times (1st and 7th days), lipid oxidation of cooked sausages was assessed in triplicate by TBA method of Tarladgis,Watts, Younathanm, and Dugan (1960) with minor modifications. A 10 g sample was blended with 50 ml distilled water for 2 min and then transferred to a distillation tube. The cup used for blending waswashed with an additional 47.5 ml of distilledwater, whichwas added to the same distillation flask with 2.5 ml 4 N HCl and a few drops of an antifoam agent (KMK-73, Shin-Etsu Silicone Co., Ltd.,Korea). The mixture was distilled and 50 ml distillate was collected. 5ml of 0.02M2-thiobarbituric acid in 90% acetic acid (TBA reagent)
was added to test tube containing 5 ml of the distillate and mixed well. The tubes were capped and heated in a boiling water bath for 30 min to develop the chromogen and cooled to room temperature. The absorbance was measured at 538 nm, against a blank prepared with 5 ml distilled water and 5 ml TBA-reagent, using a UV/VIS spectrophotometer (Optizen 2120 UV plus, Mecasys Co., Ltd., Korea). The TBA values were calculated as mg MDA/kg sample.

2.11. Statistical analysis
The experiment including from manufacturing of sample to analysis was triplicated, and analysis of variance was performed on
all the variables measured using the General Linear Model (GLM) procedure of the SAS statistical package (SAS Institute, Inc., Cary,NC). Duncan's multiple range test (P < 0.05) was used to determine differences between treatment means.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วัตถุดิบและวัตถุเจือปนซื้อหมูสด hams (ชั้นลึก Musculus biceps, semitendinosus ม. และม. semimembranosus) และหมูอ้วนกลับจากตัวประมวลผลเฉพาะที่ไปรษณีย์พ้น h. 48 สีแห้งดอกคำฝอย (C. ดอก L.) กลีบดอกไม้ที่ซื้อจากตลาดอาหารหลังการเก็บเกี่ยวภายในสามเดือน นอกจากนี้ยังมีซื้อข้าวสาลีใย (Vitacel ®ข้าวสาลีใย-200 บาร์เซโลนา สเปน), ซึ่งประกอบด้วยประมาณ 74% เซลลูโลสและ hemicellulose 26% (S anchez Alonso, Haji Maleki, & Borderias, 2007),2.2 การสกัดผงดอกคำฝอยสีแดงและสีของเส้นใยข้าวสาลีสกัดผงดอกคำฝอยสีแดงและสีของเส้นใยข้าวสาลีได้ดำเนินการ ด้วยวิธีแก้ไขที่อธิบายโดยจินเกสท์ et al. (2001) Petalwas ดอกคำฝอยประณีตดินกับ blender อาหารเพื่อแยกสีดอกคำฝอยได้อย่างง่ายดาย กลีบดอกไม้คำฝอยดินใส่ในถุงผ้าชี และล้าง ด้วยน้ำ ด้านบน ยี่สิบสี่ชั่วโมงเอาผงดอกคำฝอยสีเหลือง ซึ่งเป็นที่ละลายใน เพื่อดึงเม็ดสีแดงคำฝอย ซึ่ง solubilized ในสภาพด่าง กลีบดอกไม้ดอกคำฝอยหินถูกเพิ่มวอลุ่ม 10 (v/w) ของ 0.1 N โพแทสเซียมคาร์บอเนต (K2CO3) และกวนยี่สิบสี่ชั่วโมง เพื่อกำจัดกลีบดอกไม้ สารสกัดจากโซลูชันผ่านชั้น 2e3 ผ้าชี และ pH ของสารสกัดจากการแก้ปัญหา (สีเหลือง) ถูกปรับปรุง ด้วย 0.1Macetic โซลูชั่นกรด pH 5.5e5.7 สีแดงของ xpression จน แล้ว ไฟเบอร์สีข้าวสาลีได้เตรียมดังนี้ ไฟเบอร์ข้าวสาลี (ดับเบิลยูเอฟ) ถูกสี ด้วยการแก้ปัญหาเม็ดสีแดงคำฝอย (1:10 อัตราส่วน) กวนสำหรับ 12 h. หลังสี ใยข้าวสาลีสี มีสีแดงดอกคำฝอย (WFC) ในการแก้ปัญหาถูกคั่น ด้วย centrifugation ที่ g 6000 สำหรับ 15 นาทีที่ 4 C, supernatant ถูกละทิ้ง และรวบรวมไว้ตก ตกได้ที่แห้งใน 50 C เป่าอากาศร้อน (Enex-Co-600, Enexs เกาหลี) ยี่สิบสี่ชั่วโมงตกแห้งได้ผงใช้ blender อาหาร และผงที่ผ่าน 270 ทดสอบ sieves ตาข่าย WFC รวบรวมถูกใช้ในการผลิตไส้กรอกสุก2.3 การผลิตไส้กรอกสุก6 อาหารไส้กรอกที่แตกต่างกันใน WFC และโซเดียมไนไตรท์ (0 และ 120 ppm) (0, 1 และ 2%) ได้เตรียมออกแบบแฟกตาม 2 3 รักษาทั้งหมด ด้วยเนื้อหมู 900 กรัม ไขมันหลังหมู 300 กรัม น้ำแข็ง 300 กรัม โซเดียมคลอไรด์ (NaCl) 22.5 g และโซเดียม tri-polyphosphate (STPP) 4.5 g สูตรได้ ไส้กรอกสุกเตรียมไว้ตามขั้นตอนของ Kim et al. (2014)2.4. microscopy อิเล็กตรอนสแกนUltrastructure ofWF และ WFC ได้สังเกตใช้ microscopy อิเล็กตรอนสแกน (SEM) ตัวอย่างมีทองเคลือบใช้ sputter เป็นไอออน (E-1010 ฮิตาชิ โตเกียว ญี่ปุ่น), และตัวอย่างเคลือบถูกสแกนใช้ microscopy อิเล็กตรอน (SEM, S 3000N ฮิตาชิ) ภายใต้กระบวนการมาตรฐาน 2.5. สัดส่วนของไมโยโกลบินที่เกี่ยวข้องกับเม็ดสีสัดส่วนของไมโยโกลบินที่เกี่ยว ข้องสี oxymyoglobin (MbFe2þO2), deoxymyoglobin (MbFe2þ), metmyoglobin(MbFe3þ) ในเนื้อ แป้งถูกกำหนดกับวิธีของ Krzywicki (1982) โดย Carlez, Veciana Nogues และ Cheftel(1995)2.6 ผลตอบแทนสอนทำอาหารผลผลิตอาหารไส้กรอกสุกถูกกำหนด โดยการคำนวณความแตกต่างของน้ำหนักหลัง และ ก่อนการทำอาหาร (คิมร้อยเอ็ด al., 2014)2.7 วัดสีสีสุกอย่างถูกกำหนด ด้วยเครื่องแบบ (ความ Minolta เครื่องวัด CR-210 โอซาก้า ญี่ปุ่น ส่อง C ปรับเทียบกับแผ่นสีขาว CIE L * ¼þ97.83 เป็น * ¼ 0.43, b * ¼þ1.98), พร้อมรู 50 mm การตั้งค่าสำหรับหลอดไฟมีแหล่งหลอดไฟ C และดิออบเซิร์ฟเวอร์มาตรฐาน 2 วัดที่ได้มาจากระหว่างส่วนของตัวอย่าง CIE L * (ความสว่าง), เป็น * (แดง), และค่า b * (yellowness) ถูกบันทึกไว้ มุมเว้และความถูกคำนวณดังนี้ เว้มุม¼ tan 1(a*/b*) และความ¼ [(a*) 2 þ (b *) 2] 1/2 (Deda, Bloukasและ Fista, 2007)2.8 Nitrosoheme สีเนื้อหาเนื้อหา nitrosoheme ถูกวัด โดยวิธีของ Hornsey (1956) อธิบายโดยอาห์น et al. (2003) สีในตัวอย่างสุกถูกแยก ด้วยระบบตัวทำละลายน้ำกลั่น aceton สารสกัดได้กรอง ด้วยกระดาษกรอง และ absorbances ถูกวัดที่ 540 nm Contentwas nitrosoheme ที่แสดงเป็น ppm hematin2.9 ไนไตรต์เหลือกำหนดไนไตรต์เหลือในไส้กรอกสุกได้กำหนดวิธี AOAC, 973 31 (1995)2.10 ออกซิเดชันของไขมันไส้กรอกสุกวางบนถาดโฟม และห่อ ด้วยฟิล์ม permeable โพลิไวนิลคลอไรด์ (PVC) ออกซิเจน และเก็บไว้ในตู้เย็น 4 C (Nieto หยง Payne และ Castillo, 2015) ที่เก็บสองครั้ง (วันที่ 1 และ 7), กระบวนการเกิดออกซิเดชันของไส้กรอกสุกได้จัดประเมินใน triplicate โดยวิธี TBA Tarladgis วัตต์ Younathanm และ Dugan (1960) มีปรับเปลี่ยนเล็กน้อย ตัวอย่าง 10 กรัมผสมกับน้ำกลั่น 50 มล.สำหรับ 2 นาทีแล้ว โอนย้ายไปยังท่อกลั่น ถ้วยที่ใช้สำหรับผสมกับ ml 47.5 เพิ่มเติมของ distilledwater waswashed, whichwas เพิ่มหนาวกลั่นเดียวกับ 2.5 ml 4 N HCl และกี่หยดของตัวแทน antifoam (KMK-73, Shin Etsu ซิลิโคน จำกัด เกาหลี) ส่วนผสมที่กลั่น และกลั่น 50 ml รวบรวม 5ml ของกรด 0.02M2 thiobarbituric 90% กรดอะซิติก (TBA รีเอเจนต์)เพิ่มการทดสอบหลอดประกอบด้วย 5 ml ของการกลั่น และผสมกัน หลอดได้ปรบมือ และอุ่นในการอาบน้ำน้ำเดือด 30 นาทีการพัฒนา chromogen และระบายความร้อนด้วยอุณหภูมิห้อง มีที่วัด absorbance ที่ 538 nm กับช่องว่างพร้อมน้ำ 5 ml กลั่นและ TBA-รีเอเจนต์ ใช้เครื่องทดสอบกรดด่างมี UV/VIS (2120 Optizen ยูวีพลัส Mecasys Co., Ltd. เกาหลี) 5 ml มีคำนวณค่า TBA เป็นอย่าง MDA กิโลกรัมมิลลิกรัม2.11. สถิติวิเคราะห์การทดลองรวมทั้งจากการผลิตของตัวอย่างการวิเคราะห์ถูก triplicated และทำการวิเคราะห์ผลต่างของตามตัวแปรวัดโดยใช้ขั้นตอนทั่วไปเชิงรูปแบบ (GLM) ของแพคเกจทางสถิติ SAS (SAS สถาบัน Inc. แครีแกรนต์ NC) หลายช่วงทดสอบของดันแคน (P < 0.05) ถูกใช้เพื่อกำหนดความแตกต่างระหว่างวิธีการรักษา

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วัตถุดิบและสารเติมแต่งแฮมหมูสด (กล้ามเนื้อลูกหนู femoris เมตร Semitendinosus และเอ็ม semimembranosus) และเนื้อหมูกลับไขมันที่ซื้อมาจากหน่วยประมวลผลในท้องถิ่นที่ชันสูตรศพ 48 ชั่วโมง
ดอกคำฝอยแห้ง Shade (ค tinctorius L. ) กลีบซื้อมาจากตลาดอาหารท้องถิ่นหลังการเก็บเกี่ยวภายในสามเดือน เส้นใยข้าวสาลี (Wheat Vitacel®ไฟเบอร์-200, บาร์เซโลนา, สเปน) ซึ่งมีประมาณ 74% เซลลูโลสและเฮมิเซลลูโลส 26% (S? anchez-อลอนโซ่, ฮาจิ-Maleki และ Borderias, 2007) นอกจากนี้ยังมีกำลังซื้อ. 2.2 การสกัดสีแดงดอกคำฝอยและสีของเส้นใยข้าวสาลีสกัดของเม็ดสีแดงดอกคำฝอยและสีของเส้นใยข้าวสาลีได้ดำเนินการด้วยวิธีการปรับเปลี่ยนการอธิบายโดยยุนและอัล (2001) petalwas ดอกคำฝอยประณีตพื้นดินที่มีเครื่องปั่นอาหารเพื่อให้ง่ายต่อการดึงเม็ดสีดอกคำฝอย พื้นกลีบดอกคำฝอยถูกวางไว้ในถุงผ้าชีสและล้างด้วยน้ำที่ด้านบนสำหรับยี่สิบสี่ชั่วโมงเพื่อเอาเม็ดสีเหลืองดอกคำฝอยซึ่งเป็นที่ละลายน้ำได้ สารสกัดจากดอกคำฝอยต้องการเม็ดสีสีแดงซึ่งจะละลายอยู่ในสภาพด่างกลีบดอกคำฝอยล้างถูกบันทึกอยู่ในสิบเล่ม (V / w) 0.1 ไม่มีโพแทสเซียมคาร์บอเนตวิธีการแก้ปัญหา (K2CO3) และกวนเป็นเวลายี่สิบสี่ชั่วโมง เพื่อขจัดกลีบ, การแก้ปัญหาสารสกัดจากผ่านชั้น 2e3 ผ้าชีสและค่า pH ของการแก้ปัญหาสารสกัด (สีเหลือง) ได้รับการปรับปรุงด้วยสารละลายกรด 0.1Macetic จนถึงค่า pH 5.5e5.7 สีแดง XPRESSION แล้วใยข้าวสาลีสีถูกจัดทำขึ้นดังต่อไปนี้ เส้นใยข้าวสาลี (WF) ได้สีที่มีดอกคำฝอยแก้ปัญหาเม็ดสีแดง (อัตราส่วน 1:10) และกวนเป็นเวลา 12 ชั่วโมง หลังจากสีเส้นใยข้าวสาลีสีที่มีเม็ดสีแดงดอกคำฝอย (WFC) ในการแก้ปัญหาที่ถูกแยกออกจากกันกับการหมุนเหวี่ยงที่ 6,000 กรัมเป็นเวลา 15 นาทีที่ 4 องศาเซลเซียสและสารละลายที่ถูกทิ้งและสารตกค้างที่ถูกเก็บรวบรวม ตกค้างที่ได้แห้งใน 50 องศาเซลเซียสเครื่องเป่าลมร้อน (Enex-Co-600, Enexs เกาหลี) สำหรับยี่สิบสี่ชั่วโมง. ตกค้างแห้งผงโดยใช้เครื่องปั่นอาหารและผงก็ผ่านไปผ่าน 270 ตาข่าย sieves ทดสอบ WFC ที่เก็บรวบรวมได้ถูกใช้ในการผลิตไส้กรอกสุก2.3 การผลิตไส้กรอกสุกหกไส้กรอกสุกที่แตกต่างกันในโซเดียมไนไตรท์ (0 และ 120 ppm) และ WFC (0, 1 และ 2%) ตามที่ 2? 3 ปัจจัยการออกแบบได้จัดทำ การรักษาทั้งหมดเป็นสูตรที่มีเนื้อหมู 900 กรัมเนื้อหมูกลับไขมัน 300 กรัมน้ำแข็ง 300 กรัมโซเดียมคลอไรด์ (NaCl) 22.5 กรัมและโซเดียมไตรโพลีฟอสเฟต-(STPP) 4.5 กรัม ไส้กรอกสุกได้จัดทำขั้นตอนของคิมและอัล (2014). 2.4 สแกนกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนultrastructure ofWF WFC และเป็นที่สังเกตโดยใช้กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องกราด (SEM) กลุ่มตัวอย่างเป็นทองเคลือบใช้พ่นไอออน (E-1010, ฮิตาชิ, กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) และตัวอย่างเคลือบที่ถูกสแกนโดยใช้กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน (SEM S-3000N, ฮิตาชิ) ภายใต้ขั้นตอนมาตรฐาน. 2.5 สัดส่วนของ myoglobin เม็ดสีที่เกี่ยวข้องกับสัดส่วนของ myoglobin เม็ดสีที่เกี่ยวข้องกับ oxymyoglobin (MbFe2þO2) deoxymyoglobin (MbFe2þ) และ metmyoglobin (MbFe3þ) ในแป้งเนื้อสัตว์ที่ถูกกำหนดด้วยวิธีการ Krzywicki (1982) อธิบายโดย Carlez, Veciana-Nogues และ Cheftel ( 1995). 2.6 ทำอาหารให้ผลผลิตผลผลิตของไส้กรอกปรุงอาหารที่ปรุงสุกถูกกำหนดโดยการคำนวณความแตกต่างในน้ำหนักหลังและก่อนการปรุงอาหาร (Kim et al., 2014). 2.7 วัดสีสีของตัวอย่างที่ปรุงสุกถูกกำหนดด้วย colorimeter (Minolta Chroma เมตร CR-210, โอซาก้าประเทศญี่ปุ่นสว่าง C เทียบกับแผ่นสีขาว CIE L * ¼þ97.83, a * ​​¼ 0.43, b * ¼þ1? 98) พร้อมกับรูรับแสง 50 มม การตั้งค่าความสว่างที่เป็นแหล่งที่มา C สว่างและสังเกตการณ์มาตรฐาน 2 ?. วัดถูกนำมาจากข้ามส่วนของตัวอย่าง * การ CIE L (สว่าง), a * ​​(สีแดง) และ b * (สีเหลือง) ค่าที่ถูกบันทึกไว้ มุมสีและความเข้มของสีถูกคำนวณดังนี้ มุมสีน้ำตาล¼ 1 (ก * / b *) และความเข้มของสี¼ [(ก *) 2 þ (b *) 2] 1/2 (Deda, Bloukas, และ Fista 2007). 2.8 เม็ดสี Nitrosoheme เนื้อหาเนื้อหาnitrosoheme ถูกวัดโดยวิธีการ Hornsey (1956) อธิบายโดย Ahn et al, (2003) สีในกลุ่มตัวอย่างที่ปรุงสุกถูกสกัดด้วยน้ำกลั่น aceton ระบบตัวทำละลาย สารสกัดถูกกรองด้วยกระดาษกรองและ absorbances วัดที่ 540 นาโนเมตร contentwas nitrosoheme แสดงเป็น ppm hematin. 2.9 ความมุ่งมั่นของไนไตรท์ที่เหลือไนไตรท์ตกค้างในไส้กรอกสุกถูกกำหนดด้วยวิธี AOAC, 973. 31 (1995). 2.10 ออกซิเดชันของไขมันไส้กรอกสุกถูกวางไว้บนถาดสไตรีนและห่อด้วยออกซิเจนโพลีไวนิลคลอไรด์ดูดซึม (PVC) ภาพยนตร์และเก็บไว้ใน 4 ตู้เย็น C (เนีย Xiong เพนและติลโล, 2015) ในครั้งที่สองการจัดเก็บข้อมูล (ครั้งที่ 1 และวันที่ 7) ออกซิเดชันของไขมันของไส้กรอกสุกได้รับการประเมินในเพิ่มขึ้นสามเท่าด้วยวิธี TBA ของ Tarladgis วัตต์, Younathanm และบดู (1960) ที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย ตัวอย่าง 10 กรัมได้รับการผสมกับ 50 มล. น้ำกลั่นเป็นเวลา 2 นาทีและจากนั้นก็ย้ายไปยังท่อกลั่น ถ้วยที่ใช้สำหรับการผสม waswashed กับอีก 47.5 มิลลิลิตร distilledwater, whichwas เพิ่มเข้าไปในขวดกลั่นเช่นเดียวกันกับ 2.5 มล. 4 ไม่มี HCl และไม่กี่หยดของตัวแทน Antifoam (KMK-73, Shin-Etsu ซิลิโคน จำกัด เกาหลี) ส่วนผสมที่ถูกกลั่นและ 50 มล. กลั่นที่ถูกเก็บรวบรวม 5ml ของกรด 0.02M2-thiobarbituric ใน 90% กรดอะซิติก (น้ำยา TBA) ถูกบันทึกอยู่ในหลอดทดสอบที่มีขนาด 5 ml ของกลั่นและเข้ากันดี หลอดได้รับการต่อยอดและให้ความร้อนในอ่างน้ำเดือดนาน 30 นาทีในการพัฒนา chromogen และระบายความร้อนที่อุณหภูมิห้อง การดูดกลืนแสงที่ได้รับการวัดที่ 538 นาโนเมตรกับว่างเปล่าเตรียม 5 มล. น้ำกลั่น 5 มิลลิลิตร-TBA สารโดยใช้ UV / VIS spectrophotometer (Optizen 2120 ยูวีบวก Mecasys จำกัด เกาหลี) TBA ค่านี้จะถูกคำนวณเป็นภาคตะวันออกเฉียงเหนือมก. / กกตัวอย่าง. 2.11 การวิเคราะห์ทางสถิติการทดลองรวมทั้งจากการผลิตของกลุ่มตัวอย่างการวิเคราะห์ถูก triplicated และการวิเคราะห์ความแปรปรวนได้ดำเนินการในทุกตัวแปรวัดโดยใช้ทั่วไปเป็นLinear Model (GLM) ขั้นตอนของแพคเกจทางสถิติ SAS (SAS Institute, Inc. นิวเคลียส NC) . ดันแคนทดสอบช่วงหลาย ๆ (P <0.05) ถูกใช้ในการตรวจสอบความแตกต่างระหว่างวิธีการรักษา

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วัตถุดิบและสารเติมแต่ง
แฮมหมูสด ( musculus แพทยศาสตร์ ม. เซนดิโนซัส และเอ็มเซมิเมมเบรโนซัส ) และหมูกลับมาอ้วนซื้อมาจากการประมวลผลในท้องถิ่นที่ชันสูตรศพ 48 ชั่วโมง ดอกคำฝอยแห้งสี ( C . P . ) กลีบถูกซื้อจากตลาดอาหารท้องถิ่นหลังจากเก็บเกี่ยวได้ภายในสามเดือน ข้าวสาลีไฟเบอร์ ( ไวต้าเซล®ข้าวสาลี fiber-200 , บาร์เซโลนา , สเปน ) ,ซึ่งประกอบด้วยประมาณ 74% เซลลูโลสและเฮมิเซลลูโลส ( 26%
anchez อลอนโซ่ , Haji maleki & borderias , 2550 ) ก็ซื้อ

2.2 . การสกัดรงควัตถุสีแดงและสีข้าวดอกคำฝอยดอกคำฝอยเส้นใย
การสกัดรงควัตถุสีแดงและสีข้าวสาลีจำนวนเส้นใยด้วยการปรับเปลี่ยนวิธีอธิบายโดยยูน et al . ( 2001 )ดอกคําฝอย petalwas บดด้วยเครื่องปั่นอาหารเพื่อที่จะได้อย่างง่ายดายสารสกัดจากดอกคำฝอยผงสีมุก พื้นกลีบดอกดอกคำฝอย อยู่ในถุงผ้าชีส และล้างด้วยน้ำที่ด้านบนสำหรับยี่สิบสี่ชั่วโมงเพื่อเอาดอกคำฝอยสีเหลือง ซึ่งจะละลาย . สารสกัดจากดอกคำฝอย สารสีแดง ซึ่งเป็นสารละลายด่างในเงื่อนไขล้างดอกคำฝอยกลีบเพิ่มปริมาณ 10 ( v / w ) 0.1 N สารละลายโพแทสเซียมคาร์บอเนต ( K2CO3 ) และคนเป็นเวลา 24 ชั่วโมง จัดกลีบ , สกัดผ่าน 2e3 ชั้นของผ้าชีส และ pH ของสารละลายสกัด ( สีเหลือง ) คือปรับด้วยสารละลายกรด 0.1macetic จนกว่าพีเอช 5.5e5.7 สีแดงของ xpression . จากนั้นสีข้าวสาลีไฟเบอร์เตรียมดังนี้ ข้าวสาลี ไฟเบอร์ ( WF ) คือสีด้วยดอกคำฝอยสีแดงสีโซลูชั่น ( 10 อัตรา ) และคนเป็นเวลา 12 ชั่วโมง หลังจากระบายสี ข้าวสาลีไฟเบอร์สีด้วยดอกคำฝอยสีแดง ( WFC ) ในสารละลายที่แยกกับปั่น 6000 กรัมสำหรับ 15 นาทีที่ 4  C และน่านถูกทิ้งและสารพิษตกค้าง ได้รวบรวมและได้มีการทำแห้งใน 50  C อากาศร้อน - แห้ง ( enex-co-600 enexs , เกาหลี , ) เป็นเวลา 24 ชั่วโมง แห้ง ดิน
ใช้เครื่องปั่นอาหารผง และผงผ่าน 270 sieves ตาข่ายทดสอบ . โดย WFC เก็บใช้ผลิตไส้กรอกสุก

2.3 การผลิตไส้กรอกไส้กรอกสุกสุก
6 แตกต่างกันโซเดียมไนไตรท์ ( 0 และ 120 ppm ) และสมาพันธ์ดอกไม้โลก ( 0 ,1 และ 2 % ) ตาม 2  3 แฟกทอเรียลออกแบบเตรียมไว้แล้ว การรักษาทั้งหมดเป็นสูตรเนื้อหมู 900 กรัม หมูกลับมาอ้วน 300 กรัม น้ำแข็ง 300 กรัม เกลือโซเดียมคลอไรด์ ( NaCl ) 22.5 กรัม และโซเดียมไตรโพลีฟอสเฟต ( STPP ) 4.5 กรัมต้มไส้กรอกที่เตรียมด้วยวิธีการของ Kim et al . ( 2014 ) .

2.4 . กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนสแกน
ส่วนใน ofwf WFC ) และการใช้กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องกราด ( SEM ) จำนวนทองที่เคลือบโดยใช้ไอออนพ่นออก ( e-1010 , ฮิตาชิ , โตเกียว , ญี่ปุ่น ) และตัวอย่างที่เคลือบถูกสแกนโดยใช้กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนชนิดส่องกราด ( SEM s-3000n , ฮิตาชิ ) ภายใต้กระบวนการมาตรฐาน

2.5 สัดส่วนของไลโพโปรตีนที่เกี่ยวข้องสี
สัดส่วนของไลโพโปรตีนที่เกี่ยวข้องสี อ ซิไมโอโกลบิน ( mbfe2 þ O2 )ตะแกรงหน้าหม้อรถยนต์ ( mbfe2 þ ) และเมทไมโอโกลบิน
( mbfe3 þ ) ในแป้งเนื้อถูกกำหนดด้วยวิธี krzywicki ( 1982 ) อธิบายโดย carlez veciana , nogues และ cheftel
( 1995 ) .

2.6 การปรุงอาหารอาหารผลผลิตผลผลิต
ไส้กรอกสุกถูกกำหนดโดยการคำนวณความแตกต่างของน้ำหนัก หลังและก่อนการปรุงอาหาร ( คิม
et al . , 2010 ) .

2.7 .
การวัดสีสีตัวอย่างปรุงถูกกำหนดด้วยระบบดิจิตอล ( Minolta Chroma meter cr-210 โอซาก้า ประเทศญี่ปุ่น เปล่ง C เทียบกับจานสีขาว¼þ 97.83 CIE L * a * b * ¼  0.43 , ¼þ 1.98 ) พร้อมกับรู 50 มิลลิเมตร การตั้งค่าสำหรับการส่องสว่างเป็น C ปริมาณแสงสว่างที่มาและผู้สังเกตการณ์มาตรฐาน 2  . วัดได้จากขนาดของกลุ่มตัวอย่าง CIE L * ( ความสว่าง )* ( สีแดง ) และ b * ( สีเหลือง ) มีการบันทึก สีสันมุมและ Chroma ได้ดังนี้ มุม เว้¼แทน  1 ( * / b * ) และโครมา¼ [ ( * ) 2 þ ( b * ) 2 ] 1 / 2 ( ดี๋ด๊า bloukas
, , & fista , 2007 ) .

2.8 . nitrosoheme สีเนื้อหา
nitrosoheme เนื้อหาถูกวัดโดยวิธีของ Hornsey ( 1956 ) บรรยายโดย อาน และ อัล ( 2003 ) สีใน
ตัวอย่างอาหารถูกสกัดโดยตัวทำละลาย aceton กลั่นน้ำระบบ สารสกัดถูกกรองด้วยกระดาษกรอง และ absorbances จำนวน 540 นาโนเมตร การ nitrosoheme contentwas แสดงเป็น ppm ฮีมาติน

2.9 . เหลือปริมาณไนไตรท์ตกค้างในไต
ไส้กรอกสุกไม่กำหนดด้วยวิธีการ 973 . 31 ( 1995 ) .

2.10 . ปฏิกิริยาออกซิเดชันของลิพิด
ไส้กรอกสุกถูกวางไว้บนถาดโฟมและหุ้มด้วยโพลิไวนิลคลอไรด์ ( PVC ) ออกซิเจนซึมผ่านฟิล์ม และเก็บในตู้เย็น ( 4  C nieto , xiong , เพนน์ & Castillo , 2015 ) สองกระเป๋า ครั้ง 1 และ 7 วัน ) การออกซิเดชันของไขมันของไส้กรอกสุกและทั้งสามใบ โดยวิธี tarladgis TBA , วัต younathanm และดูแกน ( 1960 ) ที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย10 กรัม จำนวน 50 ml ผสมกับน้ำกลั่น 2 นาทีและจากนั้นย้ายไปยังเครื่องหลอด ถ้วยที่ใช้สำหรับผสม waswashed ด้วยการเพิ่มเติม 47.5 มิลลิลิตรของน้ำกลั่นซึ่งเพิ่มขวดกลั่นเดียวกันกับ 2.5 ml 4 N HCl และไม่กี่หยดของ antifoam แทน ( kmk-73 ชินเ ซุซิลิโคน Co . , Ltd . เกาหลีส่วนผสมจะถูกกลั่น และ 50 ml กลั่นถูกเก็บ 0.02m2-thiobarbituric 5ml ของกรดใน 90% กรดน้ำส้ม ( TBA Reagent )
ถูกเพิ่มเข้ามาเพื่อทดสอบหลอดบรรจุ 5 ml ของกลั่นและผสมดี หลอดถูกปกคลุมและอุ่นในอ่างน้ำเดือด 30 นาที เพื่อพัฒนาโครโมเจน และเย็นที่อุณหภูมิห้อง นเป็นวัดที่ 538 นาโนเมตรกับว่างเตรียม 5 มล. น้ำกลั่นและ 5 รีเอเจนต์ TBA ml ใช้ UV / VIS Spectrophotometer ( optizen 1 UV Plus mecasys Co . , Ltd . เกาหลี และค่า TBA ( คำนวณเป็นมิลลิกรัม / กิโลกรัมตัวอย่าง

2.11 . การวิเคราะห์ทางสถิติ
การทดลองรวมทั้งจากการผลิตของตัวอย่างเพื่อการวิเคราะห์ triplicated และการวิเคราะห์ความแปรปรวนการ
ตัวแปรทั้งหมดวัดโดยใช้แบบจำลองเชิงเส้นทั่วไป ( glm ) ขั้นตอนของแซส ( SAS Institute Inc . แพคเกจสถิติ แครี่ , NC ) การทดสอบหลายช่วง ดันแคน ( P < 0.05 ) ศึกษาความแตกต่างระหว่างวิธีการรักษา