2.2.4. Microbiological analysisMicr

2.2.4. Microbiological analysis

Microbial counts were determined by diluting 25 g of sample in 225 mL of phosphate sterile buffered peptone water (BPW) (Acumedia, Lansing, MI, USA) to achieve the 1:10 dilution. Following dilution, samples were blended using a Stomacher (Seward Laboratory Systems, Bohemia, NY, USA), for 1 min. Further serial dilutions were prepared in BPW for all of the microbial determinations. Total plate counts (TPC) were determined by plating the diluted samples on APC Petrifilm plates (3 M, St. Paul, MN, USA) followed by incubation at 35 °C for 48 h. Escherichia coli and thermotolerant coliforms were counted by plating samples on E. coli/coliform petrifilm plates (3 M, St. Paul, MN, USA) following incubation at 45 °C for 24 h. Molds and yeasts counts were determined after plating samples on Dichloran Rose Bengal Chloramphenicol agar (DRBC) (Acumedia, Lansing, MI, USA) and incubating at 25 °C for 5 days. All these determinations were carried in duplicate for each dilution. Salmonella testing was performed by a pre-enrichment with BPW at 37 °C for 24 h, followed by a selective enrichment step with Tetrathionate Broth (TTB) (Acumedia, Lansing, MI, USA) at 41 °C for 24 h. Enriched samples were then applied to a pathogen-specific test strips (RapidCheck, SDIX Newark, DE, USA), according to the manufacturer’s directions.

2.3. Extrusion experiments

2.3.1. Blend preparation

Corn flour (Bunge Milling, St. Louis, MO, USA) was replaced by pineapple pomace (dry basis) at levels of 21% and 10.5%. These levels were chosen with the aim to deliver 10% (claim of “good source of fibre”) (FDA, 2013) and 5% of the recommended daily value for dietary fibre (25 g/day) in a serving size (28.35 g). The treatments were adjusted to moisture levels of 14, 15 and 16% (w/w) in a mixer (Hobart, Troy, OH, USA) for 5 min. After mixing, the samples were placed in polypropylene plastic bags (Uline Poly Bags, S-1255) and stored at 4 °C overnight to ensure homogeneous moisture distribution.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.2.4 การทางจุลชีววิทยาวิเคราะห์ตรวจนับจุลินทรีย์ถูกกำหนด โดย diluting 25 กรัมของตัวอย่างใน 225 mL น้ำ peptone กอซถูกบัฟเฟอร์ฟอสเฟต (สมาคมฯ) (Acumedia, Lansing, MI สหรัฐอเมริกา) 1:10 ให้เจือจาง หลังเจือจาง ตัวอย่างได้ผสมใช้กับแผงประดับหน้าอก (ระบบปฏิบัติการเวิร์ด โบฮีเมีย NY, USA), ใน 1 นาที เพิ่มเติม ประจำ dilutions ถูกเตรียมในสมาคมฯ determinations จุลินทรีย์ทั้งหมด นับรวมแผ่น (สิ่งทอ) ถูกกำหนด โดยชุบตัวอย่างแตกออกบนแผ่น APC Petrifilm (3 M, St. Paul, MN สหรัฐอเมริกา) ตาม ด้วยการบ่มที่ 35 ° C สำหรับ 48 h. Escherichia coli และกำจัด thermotolerant นับได้ โดยการชุบตัวอย่างบนแผ่น petrifilm E. coli/โค ลิฟอร์ม (3 M, St. Paul, MN สหรัฐอเมริกา) ต่อคณะทันตแพทยศาสตร์ที่ 45 ° C 24 h. แม่พิมพ์และ yeasts นับถูกกำหนดหลังจากชุบตัวอย่างบน Dichloran โรสเบงกอล Chloramphenicol agar (DRBC) (Acumedia , Lansing, MI สหรัฐอเมริกา) และ incubating 5 วันที่ 25 ° C Determinations ทั้งหมดเหล่านี้ถูกทำสำเนาสำหรับแต่ละการเจือจาง ระดับการทดสอบทำ โดยเติมเต็มก่อนกับสมาคมฯ ที่ 37 ° C ใน 24 h ตามขั้นตอนขอใช้กับ Tetrathionate ซุป (ดัส) (Acumedia, Lansing, MI สหรัฐอเมริกา) ที่ 41 ° C ใน 24 h. Enriched ตัวอย่างได้จากนั้นใช้แถบการทดสอบเฉพาะการศึกษา (RapidCheck, SDIX นวร์ก DE สหรัฐอเมริกา), ได้ตามคำแนะนำของผู้ผลิต2.3 ทดลองไหลออกมา2.3.1 การเตรียมผสมแป้งข้าวโพด (Bunge กัด St. Louis, MO สหรัฐอเมริกา) ถูกแทนที่ ด้วยสับปะรด pomace (พื้นฐานแห้ง) ที่ระดับ 21% และ 10.5% ระดับเหล่านี้ถูกเลือกเพื่อจัดส่ง 10% (ข้อเรียกร้องของ "แหล่งที่ดีของเส้นใย") (FDA, 2013) และ 5% ของค่ารายวันแนะนำสำหรับเส้นใยอาหาร (25 กรัม/วัน) ขนาดเสิร์ฟ (28.35 กรัม) การรักษามีการปรับปรุงระดับความชื้นที่ 14, 15 และ 16% (w/w) ในการผสม (โฮบาร์ต Troy, OH สหรัฐอเมริกา) ใน 5 นาที หลังจากผสม ตัวอย่างถูกวางไว้ในถุงพลาสติก polypropylene (Uline โพลี ถุง S-1255) แล้วเก็บที่ 4 ° C ค้างคืนเพื่อให้กระจายความชื้นเหมือน

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.2.4 การวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยานับจุลินทรีย์ถูกกำหนดโดยเจือจาง 25 กรัมของกลุ่มตัวอย่างใน 225 มิลลิลิตรน้ำเปปโตนฟอสเฟตบัฟเฟอร์หมัน (BPW) (Acumedia แลนซิง, MI, USA) เพื่อให้บรรลุการลดสัดส่วน 01:10 ต่อไปนี้การเจือจางตัวอย่างที่ถูกผสมโดยใช้ Stomacher (เอิร์ดห้องปฏิบัติการระบบโบฮีเมีย, นิวยอร์ก, สหรัฐอเมริกา) เป็นเวลา 1 นาที เจือจางอนุกรมนอกจากนี้ได้จัดทำขึ้น BPW สำหรับทุกหาความจุลินทรีย์ นับจานรวม (TPC) ถูกกำหนดโดยการชุบสารตัวอย่างที่เจือจางในแผ่น APC Petrifilm (3 M, เซนต์ปอล, MN, USA) ตามด้วยการบ่มที่ 35 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมง เชื้อ Escherichia coli และโคลิฟอร์มทนร้อนที่นับโดยการชุบในตัวอย่างเชื้อ E. coli / จาน Petrifilm โคลิฟอร์ม (3 M, เซนต์ปอล, MN, USA) ดังต่อไปนี้การบ่มที่ 45 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง แม่พิมพ์และจำนวนยีสต์ได้รับการพิจารณาหลังจากชุบตัวอย่างใน Dichloran โรสเบงกอล Chloramphenicol วุ้น (DRBC) (Acumedia แลนซิง, MI, USA) และบ่มที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 วัน หาความทั้งหมดเหล่านี้ได้ดำเนินการในการลดสัดส่วนที่ซ้ำกันสำหรับแต่ละ การทดสอบเชื้อ Salmonella ได้รับการดำเนินการโดยการเพิ่มคุณค่าก่อนที่มี BPW ที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมงตามด้วยขั้นตอนการตกแต่งเลือก Tetrathionate กับน้ำซุป (TTB) (Acumedia แลนซิง, MI, USA) ที่ 41 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง ตัวอย่างอุดมถูกนำไปใช้แล้วไปยังแถบทดสอบเชื้อก่อโรคที่เฉพาะเจาะจง (RapidCheck, SDIX นวร์ก, DE, USA) ตามทิศทางของผู้ผลิต. 2.3 การอัดขึ้นรูปการทดลอง2.3.1 ผสมผสานการเตรียมแป้งข้าวโพด (Bunge มิลลิ่ง, เซนต์หลุยส์สหรัฐอเมริกา) ก็ถูกแทนที่ด้วยกากสับปะรด (พื้นฐานแห้ง) ในระดับ 21% และ 10.5% ระดับเหล่านี้ได้รับการแต่งตั้งโดยมีจุดประสงค์ที่จะส่งมอบ 10% (การเรียกร้องของ "แหล่งที่ดีของเส้นใย") (องค์การอาหารและยา, 2013) และ 5% ของมูลค่ารายวันที่แนะนำสำหรับใยอาหาร (25 กรัม / วัน) ในขนาดที่ให้บริการ (28.35 กรัม ) การรักษาที่ได้รับการปรับให้ระดับความชุ่มชื้นของ 14, 15 และ 16% (w / w) ในมิกเซอร์ (โฮบาร์ตทรอย, OH, USA) เป็นเวลา 5 นาที หลังจากผสมตัวอย่างถูกวางไว้ในถุงพลาสติกโพรพิลีน (ULINE โพลีกระเป๋า, S-1255) และเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียสในชั่วข้ามคืนเพื่อให้แน่ใจว่าการกระจายความชุ่มชื้นเป็นเนื้อเดียวกัน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.2.4 . จุลชีววิทยาวิเคราะห์

จุลินทรีย์นับคำนวณโดยการเจือจางตัวอย่าง 25 กรัม 225 มิลลิลิตร ฟอสเฟตในน้ำหมัน ตามลำดับ ( BPW ) ( USA acumedia แลนซิง , มิชิแกน , ) เพื่อให้บรรลุ 10 ใน . ต่อไปนี้การเจือจางตัวอย่าง ผสมโดยใช้แผงประดับหน้าอก ( ห้องปฏิบัติการระบบซูเอิร์ด , โบฮีเมีย , นิวยอร์ก , สหรัฐอเมริกา ) , 1 นาทีวิธีการเตรียมอนุกรมเพิ่มเติมใน BPW ทั้งหมดของการวิเคราะห์ปริมาณจุลินทรีย์ นับจานรวม ( TPC ) ถูกกำหนดโดยการเจือจางตัวอย่างใน APC petrifilm จาน ( 3 M , St . Paul , MN , USA ) ตามด้วยการบ่มที่ 35 ° C เป็นเวลา 48 ชั่วโมง และมีอุณหภูมิสูงปริมาณโคลิฟอร์มแบคทีเรีย Escherichia coli นับโดยชุบอย่างใน E . coli / โคลิฟอร์ม petrifilm จาน ( 3 M , St . Paul , MN ,สหรัฐอเมริกา ) ต่อไปนี้บ่มที่ 45 ° C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง ราและยีสต์ นับเป็นตัวอย่างในไดคลอแรนหลังจากชุบโรสเบงกอลคลอแรมเฟนิคอล ( drbc ) ( USA acumedia แลนซิง , มิชิแกน , ) และคาดการณ์ที่ 25 ° C เป็นเวลา 5 วัน หาเหล่านี้ทั้งหมดถูกดำเนินการในแต่ละซ้ำสำหรับเจือจาง การทดสอบเชื้อ Salmonella โดยใช้ก่อนเสริม 37 ° C กับ BPW ที่ตลอด 24 ชั่วโมงตามด้วยขั้นตอนการเลือกน้ำซุปเตตราไทโอเนต ( ttb ) ( USA acumedia แลนซิง , มิชิแกน , ) ที่ 41 ° C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง อุดมจำนวนแล้วใช้กับเชื้อโรคเฉพาะแผ่นทดสอบ ( rapidcheck sdix Newark , DE , USA ) ตามทิศทางของผู้ผลิต

2.3 รูปนี้

2.3.1 . ผสมผสานการเตรียม

แป้งข้าวโพด ( Bunge โม่ , เซนต์ หลุยส์ โมสหรัฐอเมริกา ) ถูกแทนที่ด้วยกากสับปะรดแห้ง ( พื้นฐาน ) ที่ระดับ 21% และ 10.5 % ระดับเหล่านี้ถูกเลือกด้วยจุดมุ่งหมายเพื่อให้ 10 % ( อ้างจาก " แหล่งที่ดีของเส้นใย " ) ( FDA , 2013 ) และ 5% ของค่าแนะนำรายวันสำหรับเส้นใยอาหาร ( 25 กรัม / วัน ) ในการให้บริการขนาด ( 28.35 กรัม ) วิธีปรับระดับความชื้น 14 , 15 และ 16 % ( w / w ) ในเครื่องผสม ( Hobart , ทรอย , โอ้ , USA ) เป็นเวลา 5 นาทีหลังจากผสมตัวอย่างอยู่ในถุงโพลีพลาสติก ( uline ถุงโพลี , s-1255 ) และเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 4 องศา C ค้างคืนเพื่อให้แน่ใจว่าการกระจายความชื้น เป็นเนื้อเดียวกัน