The materials used for conventional propagation of banana and plantain include corms, large and small suckers, and sword suckers (Cronauer & Krikorian,1984). However, conventional planting materials are not the ideal propagule, because of the low number of suckers (Vuylsteke, 1989) and the fact that it could be a potential source of dissemination of weevils, fungal pathogens, nematodes, and viruses (Sagi et al., 1998).The rapid production of healthy planting material of
desired clones, within a short time period, is facilitated by large-scale micropropagation. Different in vitro micropropagation protocols have been used in several Musa spp. of divergent genomic constitution and ploidy(Cronauer & Krikorian, 1984; Vuylsteke, 1989; Scott et al., 1999; Arinaitwe et al., 2000; Roels et al., 2005).However, in vitro propagation through shoot-tip culture has shown low level of success in some varieties, mainly due to oxidation caused by henolic compounds that form a barrier around the tissue, preventing nutrient uptake and hindering growth (Strosse et al., 2004).Micropropagation of plantain using meristem tip culturehas shown low level of success, mainly due to oxidation and low proliferation caused by a high degree of apical dominance. The presence of a B genome can also affect multiplication (Ariwnaitwe et al., 2000; Roels et al.,2005).
The materials used for conventional propagation of banana and plantain include corms, large and small suckers, and sword suckers (Cronauer & Krikorian,1984). However, conventional planting materials are not the ideal propagule, because of the low number of suckers (Vuylsteke, 1989) and the fact that it could be a potential source of dissemination of weevils, fungal pathogens, nematodes, and viruses (Sagi et al., 1998).The rapid production of healthy planting material ofdesired clones, within a short time period, is facilitated by large-scale micropropagation. Different in vitro micropropagation protocols have been used in several Musa spp. of divergent genomic constitution and ploidy(Cronauer & Krikorian, 1984; Vuylsteke, 1989; Scott et al., 1999; Arinaitwe et al., 2000; Roels et al., 2005).However, in vitro propagation through shoot-tip culture has shown low level of success in some varieties, mainly due to oxidation caused by henolic compounds that form a barrier around the tissue, preventing nutrient uptake and hindering growth (Strosse et al., 2004).Micropropagation of plantain using meristem tip culturehas shown low level of success, mainly due to oxidation and low proliferation caused by a high degree of apical dominance. The presence of a B genome can also affect multiplication (Ariwnaitwe et al., 2000; Roels et al.,2005).
การแปล กรุณารอสักครู่..
The materials used for conventional propagation of banana and plantain include corms, large and small suckers, and sword suckers (Cronauer & Krikorian,1984). However, conventional planting materials are not the ideal propagule, because of the low number of suckers (Vuylsteke, 1989) and the fact that it could be a potential source of dissemination of weevils, fungal pathogens, nematodes, and viruses (Sagi et al., 1998).The rapid production of healthy planting material of
desired clones, within a short time period, is facilitated by large-scale micropropagation. Different in vitro micropropagation protocols have been used in several Musa spp. of divergent genomic constitution and ploidy(Cronauer & Krikorian, 1984; Vuylsteke, 1989; Scott et al., 1999; Arinaitwe et al., 2000; Roels et al., 2005).However, in vitro propagation through shoot-tip culture has shown low level of success in some varieties, mainly due to oxidation caused by henolic compounds that form a barrier around the tissue, preventing nutrient uptake and hindering growth (Strosse et al., 2004).Micropropagation of plantain using meristem tip culturehas shown low level of success, mainly due to oxidation and low proliferation caused by a high degree of apical dominance. The presence of a B genome can also affect multiplication (Ariwnaitwe et al., 2000; Roels et al.,2005).
การแปล กรุณารอสักครู่..
วัสดุที่ใช้ในการขยายพันธุ์ตามปกติของกล้วยและกล้ายรวมถึงเหง้าและหน่อเล็ก , ใหญ่ , หน่อดาบ ( cronauer & krikorian , 1984 ) แต่ปกติ วัสดุปลูก ไม่ใช่ส่วนขยายพันธุ์เหมาะ เพราะจำนวนน้อยหน่อ ( vuylsteke , 1989 ) และความจริงที่ว่ามันอาจเป็นแหล่งที่มีศักยภาพของการเผยแพร่ของด้วงเจาะ รา เชื้อโรค พยาธิตัวกลม พยาธิ ,และไวรัส ( เซกิ et al . , 1998 ) . การผลิตอย่างรวดเร็วของการมีสุขภาพดี วัสดุปลูกของ
ที่ต้องการโคลน ภายในระยะเวลาสั้น ๆ มีความสะดวก โดยการขยายพันธุ์ ขนาดใหญ่ โปรโตคอลการขยายพันธุ์ในหลอดทดลองที่แตกต่างกันมีการใช้ใน spp . มูซาหลายอเนกจีโนมของรัฐธรรมนูญและการ ( cronauer & krikorian , 1984 ; vuylsteke , 1989 ; สก็อต et al . , 1999 ; arinaitwe et al . , 2000 ;roels et al . , 2005 ) . อย่างไรก็ตาม , การเพาะขยายพันธุ์ผ่านวัฒนธรรมปลายยิงได้แสดงให้เห็นความสำเร็จในระดับต่ำ บางพันธุ์ ส่วนใหญ่เนื่องจากการออกซิเดชันที่เกิดจาก henolic สารประกอบที่สร้างเป็นเกราะรอบตัวเยื่อ ป้องกันการดูดใช้ธาตุอาหาร และขัดขวางการเจริญเติบโต ( strosse et al . , 2004 ) การขยายพันธุ์ของพืชชนิดหนึ่งใช้เนื้อเยื่อเจริญปลาย culturehas แสดงความสำเร็จระดับต่ำส่วนใหญ่เนื่องจากการเกิดออกซิเดชันและต่ำเกิดจากระดับสูงของ Apical dominance . การปรากฏตัวของ B จีโนมยังสามารถส่งผลกระทบต่อการคูณ ( ariwnaitwe et al . , 2000 ; roels et al . , 2005 )
การแปล กรุณารอสักครู่..