In the first assay was used NEW obt

In the first assay was used NEW obtained from 0.1% w/v of sodium
chloride or sodium bicarbonate solutions in tap water against
P. fluorescens NCPPB 1964, P. marginalis 667, and P. syringae PS1 as
indicator strains; electrolyzed tap water without salts was used as a
control. Each sample of NEW, 9.9 ml, was contaminated with 0.1 ml
of bacterial suspension having OD600 ¼ 0.3 ± 0.05 (about at
8 log cfu/ml). Contaminated NEW samples were incubated at 4
C
for 2 and 5 min afterwards 0.1 ml was diluted in 9.9 ml of sterile
saline solution to dilute free chlorine potentially still having antimicrobial
activity. Surviving bacteria were enumerated after incubation
(24 h at 30
C) of PCA plates seeded with decimal dilution, in
sterile saline, of 1:100 NEW samples. Each strain was assayed three
times, independently (N ¼ 3). Based on results, 14 spoilage Pseudomonas
strains, as well as, P. aeruginosa DSM939, were used for an
additional in vitro assay by using the most probable number (MPN)
method for enumeration of viable microbial cells. Three samples of
NEW, produced from potassium chloride as electrolyte, were prepared
after 2 h of electrolysis (4000 mg/L free chlorine, pH ¼ 8.2,
ORP ¼ 846 mV). The NEW, diluted to 400, 200, and 100 mg/L of free
chlorine, was inoculated as previously reported and incubated at
4
C for 2 min. Inoculated NEW samples were decimally diluted
four times in mPCB. Occurrence of visible microbial growth was
recorded after 24 h at 25
C; un-treated bacterial suspensions were
used as a positive control. Absorbance value of test tubes without
visible growth was recorded at 600 nm and compared with uninoculated
(blank) tubes. Test tubes were considered positive
when OD600 readings were 0.050 higher than blank tubes. Calculation
of MPN was obtained comparing the results with MPN tables
(Man, 1983). In order to avoid false negative results deriving from
chlorine stressed cells, test tubes were incubated for additional 24 h
at 30
C. In this case the assay was performed a single time with
three repetition for each strain (N ¼ 3).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ในครั้งแรก ทดสอบใช้ใหม่ได้จาก 0.1% w/v ของโซเดียมโซลูชั่นคลอไรด์หรือโซเดียมไบคาร์บอเนตในน้ำประปากับP. fluorescens NCPPB 1964, P. marginalis 667 และ P. syringae PS1 เป็นตัวบ่งชี้สายพันธุ์ น้ำประปา electrolyzed โดยเกลือถูกใช้เป็นควบคุม แต่ละตัวอย่างใหม่ 9.9 ml ถูกปนเปื้อน 0.1 มล.การระงับเชื้อแบคทีเรียที่มี OD600 ¼ 0.3 ± 0.05 (เกี่ยวกับที่8 ระบบ cfu/ml) ตัวอย่างใหม่ปนเปื้อนถูก incubated ที่ 4 Cสำหรับ 2 และ 5 นาที หลังจากนั้น 0.1 มล.ถูกผสมในมล 9.9 ของกอซเกลือการ dilute คลอรีนอิสระที่อาจยังคงมีจุลินทรีย์กิจกรรมการ เชื้อแบคทีเรียที่รอดตายได้ระบุหลังจากบ่ม(24 ชมที่ 30 C) ของแผ่น PCA seeded กับทศนิยมเจือจาง ในใส่น้ำเกลือ ตัวอย่างใหม่ของ 1: 100 ต้องใช้แต่ละถูก assayed สามเวลา อิสระ (N ¼ 3) ตามผลลัพธ์ เน่าเสีย 14 Pseudomonasสายพันธุ์ เป็น DSM939, P. aeruginosa ใช้สำหรับการเพิ่มเติมในหลอดทดสอบโดยใช้หมายเลขที่สุดน่าเป็น (บริษัทเอ็มพีเอ็น)วิธีการแจงนับของเซลล์จุลินทรีย์ทำงานได้ ตัวอย่าง 3ใหม่ ผลิตจากโพแทสเซียมคลอไรด์เป็นอิเล็กโทร ได้เตรียมไว้หลังจาก h 2 ของ electrolysis (คลอรีนอิสระ 4000 mg/L, pH ¼ 8.2ORP ¼ 846 mV) ใหม่ ผสม กับ 400, 200, 100 mg/L ฟรีคลอรีน ที่ inoculated ก่อนหน้านี้ รายงาน และ incubated ที่C 4 ตัว 2 นาทีอย่าง Inoculated ใหม่ได้ยกเว้น decimally4 ครั้งใน mPCB เกิดเจริญเติบโตจุลินทรีย์ที่มองเห็นได้บันทึกหลังจาก 24 ชมที่ 25 C บริการบำบัดยังแบคทีเรียได้ใช้เป็นตัวควบคุมบวก ค่า absorbance ของหลอดทดสอบโดยมองเห็นการเจริญเติบโตเป็นบันทึกที่ 600 nm และเปรียบเทียบกับ uninoculatedหลอด (ว่าง) หลอดทดสอบที่เป็นบวกเมื่ออ่าน OD600 ได้สูงกว่าท่อเปล่า 0.050 คำนวณของบริษัทเอ็มพีเอ็นกล่าวเปรียบเทียบผลลัพธ์กับตารางบริษัทเอ็มพีเอ็น(ชาย 1983) เพื่อหลีกเลี่ยงผลลบเท็จบริษัทฯ จากคลอรีนเน้นเซลล์ หลอดทดสอบได้ incubated สำหรับเพิ่มเติม 24 ชมที่ 30 ซี ในกรณีนี้ วิเคราะห์การทำใช้เวลาเดียวกับทำซ้ำสามสำหรับแต่ละต้องใช้ (N ¼ 3)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ในการทดสอบครั้งแรกที่ถูกนำมาใช้ใหม่ที่ได้รับจาก 0.1% w / v ของโซเดียมคลอไรด์หรือสารละลายโซเดียมไบคาร์บอเนตในน้ำประปากับพี fluorescens NCPPB 1964 พี marginalis 667 และพี syringae PS1 เป็นสายพันธุ์ที่ตัวบ่งชี้; น้ำประปาอิเล็กโทรไลเกลือโดยไม่ต้องใช้เป็นที่ควบคุม ตัวอย่างแต่ละใหม่ 9.9 มล. ถูกปนเปื้อนด้วย 0.1 มล. ของการระงับแบคทีเรียมี OD600 ¼ 0.3 ± 0.05 (ประมาณที่8 ล็อก cfu / ml) ที่ปนเปื้อนตัวอย่างใหม่ถูกบ่มที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสเป็นเวลา2 และ 5 นาทีหลังจากนั้น 0.1 มิลลิลิตรเจือจางใน 9.9 มิลลิลิตรหมันน้ำเกลือเจือจางคลอรีนอิสระที่อาจเกิดขึ้นยังคงมียาต้านจุลชีพกิจกรรม เชื้อแบคทีเรียที่รอดตายหลังจากที่ถูกแจกแจงบ่ม(24 ชั่วโมงที่ 30 องศาเซลเซียส) ของแผ่น PCA เมล็ดที่มีการลดสัดส่วนทศนิยมในน้ำเกลือฆ่าเชื้อ1: 100 ตัวอย่างใหม่ แต่ละสายพันธุ์ได้รับการวิเคราะห์สามครั้งเป็นอิสระ (ยังไม่มี¼ 3) ขึ้นอยู่กับผลการเน่าเสีย Pseudomonas 14 สายพันธุ์เช่นเดียวกับพี aeruginosa DSM939 ถูกนำมาใช้ในการเพิ่มเติมในการทดสอบในหลอดทดลองโดยใช้ตัวเลขน่าจะเป็นที่สุด(MPN) วิธีการนับของเซลล์จุลินทรีย์ที่ทำงานได้ สามตัวอย่างใหม่ที่ผลิตจากโพแทสเซียมคลอไรด์เป็นอิเล็กโทรไลได้จัดทำหลังจาก2 ชั่วโมงของกระแสไฟฟ้า (4,000 มิลลิกรัม / ลิตรคลอรีนอิสระค่า pH ¼ 8.2 ORP ¼ 846 mV) ใหม่ลดลงเหลือ 400, 200, และ 100 มิลลิกรัม / ลิตรฟรีคลอรีนได้รับการฉีดวัคซีนตามที่รายงานก่อนหน้านี้และบ่มที่4 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 2 นาที ตัวอย่างเชื้อใหม่ที่ถูกปรับลด decimally สี่ครั้งใน mPCB การเกิดขึ้นของเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ที่มองเห็นได้รับการบันทึกหลังจาก 24 ชั่วโมงที่ 25 C; ยกเลิกการรับการรักษาสารแขวนลอยแบคทีเรียถูกใช้เป็นตัวควบคุมในเชิงบวก ค่าการดูดกลืนแสงของหลอดทดสอบโดยไม่มีการเจริญเติบโตที่มองเห็นได้ถูกบันทึกไว้ที่ 600 นาโนเมตรและเมื่อเทียบกับ uninoculated (ว่าง) ท่อ หลอดทดลองได้รับการพิจารณาในเชิงบวกเมื่อ OD600 อ่านได้ 0.050 สูงกว่าหลอดว่างเปล่า การคำนวณของเอ็มพีเอ็นได้รับการเปรียบเทียบผลกับตาราง MPN (ผู้ชาย, 1983) เพื่อหลีกเลี่ยงผลลบผิดพลาดที่เกิดจากคลอรีนเซลล์เน้นหลอดทดลองถูกบ่มเพิ่มเติม 24 ชั่วโมงวันที่30 องศาเซลเซียส ในกรณีนี้การทดสอบได้ดำเนินการมาเป็นเวลาเดียวกับสามซ้ำสำหรับแต่ละสายพันธุ์ (ยังไม่มี¼ 3)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ในวิธีแรกที่ใช้ใหม่ได้จาก 0.1 % W / V ของโซเดียมคลอไรด์ โซเดียมไบคาร์บอเนต หรือโซลูชั่น

P . fluorescens ในน้ำประปากับ ncppb 2507 , หน้า marginalis 667 และหน้า syringae PS1 เป็น
บ่งชี้สายพันธุ์ ; เครื่องแยกสารประกอบน้ำประปาไม่มีเกลือถูกใช้เป็น
ควบคุม แต่ละตัวอย่างของมล ใหม่ , 9.9 , ถูกปนเปื้อนด้วย 0.1 ml
ของ bacterial suspension มี od600 ¼ 0.3 ± 0.05 ( เรื่อง
8 log CFU / ml ) ตัวอย่างใหม่ที่อุณหภูมิ 4
C
2 และ 5 นาทีหลังจากนั้น 0.1 มิลลิลิตร เจือจางใน 1 มิลลิลิตร หมัน
น้ำเกลือเจือจางคลอรีนที่อาจยังคงมีฤทธิ์ต้านจุลชีพ

ที่รอดตายแบคทีเรียถูกระบุหลังจากบ่ม
( 24 H 30
C ) ของ PCA จานเมล็ดกับทศนิยมเจือจางในน้ำเกลือปลอดเชื้อ
, 100 ตัวอย่างใหม่แต่ละสายพันธุ์มีปริมาณ 3
ครั้ง อิสระ ( N ¼ 3 ) บนพื้นฐานของผล 14 การเน่าเสียของ
สายพันธุ์ รวมทั้ง P . aeruginosa dsm939 ถูกใช้สำหรับ
เพิ่มเติมในนอร์เวย์ โดยใช้หมายเลขที่น่าจะเป็น ( MPN )
วิธีสำหรับการใช้จุลินทรีย์เซลล์ สามตัวอย่างของ
ใหม่ ผลิตจากโพแทสเซียมคลอไรด์เป็นอิเล็กโทรไลต์ถูกเตรียม
หลังจาก 2 ชั่วโมงด้วยไฟฟ้า ( 4 , 000 มก. / ล. ฟรีคลอรีน , พีเอช¼ 8.2 ,
ORP ¼ 846 MV ) ใหม่ , ประมาณ 400 , 200 และ 100 มก. / ล. คลอรีน
เป็นเชื้อตามที่รายงานก่อนหน้านี้ และบ่มที่

4 C 2 นาทีจากตัวอย่างใหม่ decimally เจือจาง
4 ครั้งใน mpcb . การมองเห็นได้จากการบันทึกหลังถูก
24 ชั่วโมง ที่ 25
C ; และรักษาแบคทีเรียแขวนลอยอยู่
ใช้เป็นตัวควบคุมบวก ค่าการดูดกลืนแสงของหลอดทดลองโดยไม่
การเจริญเติบโตมองเห็นเป็นบันทึกที่ 600 nm และเทียบกับการ
( ว่าง ) หลอด หลอดทดสอบถูกถือว่าบวก
เมื่ออ่าน od600 เป็น 0.050 สูงกว่าหลอดเปล่า การคำนวณ
ของเอ็มพีได้เปรียบเทียบผลลัพธ์กับ MPN ตาราง
( ชาย , 1983 ) เพื่อหลีกเลี่ยงผลลัพธ์อันเกิดจาก
ลบปลอมคลอรีนเน้นเซลล์หลอดทดสอบถูกบ่มเพิ่ม 24 H
ที่ 30
C ในกรณีนี้ ( แสดงเวลาเดียวกับ
3 ซ้ำสำหรับแต่ละสายพันธุ์ ( N ¼
3 )