2. Materials and methods2.1. Meltin

2. Materials and methods
2.1. Melting points, optical rotation
Melting points were measured on a capillary instrument (Büchi, CH) and are uncorrected. Optical rotations were measured in a 1 dm cell on a Perkin Elmer 321 spectropolarimeter (GB).
2.2. NMR
In Prague (Inst. Microbiol.) NMR spectra were recorded with a Bruker Avance III 400MHz spectrometer (400.13MHz for 1H, 100.55MHzfor13Cat30 ◦C),aBrukerAvanceIII600MHzspectrometer (600.23MHz for 1H, 150.93MHz for 13C at 30 ◦C) and a Bruker Avance III 700MHz spectrometer (700.13MHz for 1H, 176.05MHz for 13C at 30 ◦C) in DMSO-d6 (99.9atom% D, Sigma-Aldrich). Residual signals of the solvent were used as an internal standard (H 2.500ppm, C 39.60ppm). NMR experiments: 1H NMR, 13C NMR, Jresolved, COSY, HSQC, HSQC-TOCSY, HMBC, and 1D TOCSY were performed using the manufacturer’s software. 1H NMR and 13C NMR spectra were zero-filled to fourfold data points and multiplied by a window function before Fourier transformation. A two-parameter double-exponential Lorentz–Gauss function was applied for 1H to improve resolution, and line broadening (1Hz) wasusedtoobtainabetter13Csignal-to-noiseratio.Chemicalshifts are given on a -scale with digital resolution justifying the reported values.
In Paris (Univ. Descartes) 1H- and 13C-NMR spectra (500.13MHz and 125.77MHz, respectively) were recorded on a Bruker Avance500 spectrometer in DMSO-d6 or acetone-d6 solvents. All NMR spectra were measured at 20 ◦C, and proton and carbon chemical shifts were referenced to the solvent signals: 2.50ppm for proton and 39.52ppm for carbon in DMSO-d6, and 2.05ppm for proton and 29.85ppm for carbon in (CD3)2CO. Two-dimensional correlation spectroscopy (COSY) and total correlation spectroscopy (TOCSY), rotating frame nuclear Overhauser effect spectroscopy (ROESY),heteronuclearsinglequantumcoherence(HSQC),andheteronuclear

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2. วัสดุและวิธีการ2.1 การหลอมเหลวจุด หมุนแสงจุดหลอมเหลวถูกวัดในเครื่องมือรูพรุน (บือ CH) และมี uncorrected หมุนเวียนแสงถูกวัดในเซลล์ 1 dm บน spectropolarimeter เพอร์เอลเมอ 321 (GB)2.2. NMRปราก (Inst. Microbiol) บันทึกแรมสเป็คตรา NMR กับการ Bruker Avance III 400MHz สเปกโตรมิเตอร์ (400.13 MHz ใน 1 H, 100.55MHzfor13Cat30 ◦C), aBrukerAvanceIII600MHzspectrometer (600.23 MHz ใน 1 H, 150.93 MHz สำหรับ C 13 ที่ 30 ◦C) และแบบ Bruker Avance III 700 MHz สเปกโตรมิเตอร์ (700.13 MHz ใน 1 H, 176.05 MHz สำหรับ C 13 ที่ 30 ◦C) ใน DMSO-d6 (99.9atom% D ซิก Aldrich) สัญญาณส่วนที่เหลือของตัวทำละลายถูกใช้เป็นมาตรฐานภายใน (H 2.500 ppm, C 39.60 ppm) การทดลอง NMR: 1H NMR, 13C NMR, Jresolved โคซี่ HSQC, HSQC TOCSY, HMBC และ 1D TOCSY ถูกดำเนินการโดยใช้ซอฟต์แวร์ของผู้ผลิต 1H NMR และ 13C NMR แรมสเป็คตราถูกเติมศูนย์จุดข้อมูล fourfold และคูณ ด้วยฟังก์ชันหน้าต่างก่อนการแปลงฟูรีเย ใช้ฟังก์ชันพารามิเตอร์สองคู่เนนลอเรนซ์ – เกาส์สำหรับ H 1 เพื่อปรับปรุงความละเอียด และบรรทัด broadening (1Hz) wasusedtoobtainabetter13Csignal-จะ-noiseratio.Chemicalshifts ได้ในระดับความละเอียดดิจิตอล justifying ค่ารายงานในปารีส (มหาวิทยาลัย Descartes) แรมสเป็คตรา H - และ 13C-NMR 1 (500.13 MHz และ 125.77 MHz ตามลำดับ) ได้ถูกบันทึกไว้ในสเปกโตรมิเตอร์ Bruker Avance500 ใน DMSO d6 หรืออะซีโตน-d6 หรือสารทำละลาย มีวัดทั้งหมด NMR แรมสเป็คตรา 20 ◦C และโปรตอนและคาร์บอนกะเคมีถูกอ้างอิงเพื่อสัญญาณเป็นตัวทำละลาย: 2.50ppm สำหรับโปรตอน และ ppm 39.52 สำหรับคาร์บอนใน DMSO d6 และ 2.05ppm สำหรับโปรตอน และ 29.85ppm สำหรับคาร์บอนใน (CD3) 2CO. กความสัมพันธ์แบบสองมิติ (โคซี่) และความสัมพันธ์รวมก (TOCSY), การหมุนกรอบนิวเคลียร์ Overhauser ผลก (ROESY), heteronuclearsinglequantumcoherence (HSQC) andheteronuclear

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2. วัสดุและวิธีการ
2.1 ละลายจุดหมุนแสงจุดหลอมละลายวัดเครื่องดนตรีฝอย (Büchi, CH) และไม่ได้แก้ไข
ผลัด Optical วัดในเซลล์ 1 DM ใน Perkin Elmer 321 spectropolarimeter (GB).
2.2 NMR
ในปราก (Inst. Microbiol.) NMR สเปกตรัมถูกบันทึกไว้ด้วย Bruker Avance III 400MHz สเปกโตรมิเตอร์ (400.13MHz สำหรับ 1H, 100.55MHzfor13Cat30 ◦C) aBrukerAvanceIII600MHzspectrometer (600.23MHz สำหรับ 1H, 150.93MHz สำหรับ 13C วันที่ 30 ◦C) และ Bruker Avance III 700MHz สเปกโตรมิเตอร์ (700.13MHz สำหรับ 1H, 176.05MHz สำหรับ 13C วันที่ 30 ◦C) ใน DMSO-d6 (99.9atom% D, Sigma-Aldrich) สัญญาณที่เหลือของตัวทำละลายถูกนำมาใช้เป็นมาตรฐานภายใน (H 2.500ppm, C 39.60ppm) การทดลอง NMR: 1H NMR, 13C NMR, Jresolved, โคซี่, HSQC, HSQC-TOCSY, HMBC และ 1D TOCSY ได้ดำเนินการโดยใช้ซอฟต์แวร์ของผู้ผลิต 1H NMR และ 13C NMR สเปกตรัมถูกศูนย์ที่เต็มไปด้วยจุดข้อมูลจาตุรงค์และคูณด้วยฟังก์ชั่นหน้าต่างก่อนที่จะเปลี่ยนแปลงฟูริเยร์ สองพารามิเตอร์สองครั้งที่ชี้แจงฟังก์ชั่นลอเรน-เกาส์ถูกนำมาใช้สำหรับ 1H เพื่อปรับปรุงความละเอียดและขยายสาย (1Hz) wasusedtoobtainabetter13Csignal ไป noiseratio.Chemicalshifts จะได้รับใน -scale กับดิจิตอลความละเอียดสมควรค่ารายงาน.
ในปารีส (Univ . Descartes) 1H- และสเปกตรัม 13C-NMR (500.13MHz และ 125.77MHz ตามลำดับ) ถูกบันทึกไว้ในสเปกโตรมิเตอร์ Avance500 Bruker ใน DMSO-d6 หรืออะซีโตน-d6 ตัวทำละลาย ทุกสเปกตรัม NMR วัดที่ 20 ◦Cและโปรตอนและการเปลี่ยนแปลงทางเคมีคาร์บอนถูกอ้างอิงกับตัวทำละลายสัญญาณ: 2.50ppm สำหรับโปรตอนและ 39.52ppm คาร์บอนใน DMSO-d6 และ 2.05ppm สำหรับโปรตอนและ 29.85ppm คาร์บอนใน (CD3 ) 2CO สเปคโทรสัมพันธ์สองมิติ (โคซี่) และสเปคโทรสัมพันธ์รวม (TOCSY) หมุนกรอบ Overhauser นิวเคลียร์สเปกโทรสโกผล (ROESY) heteronuclearsinglequantumcoherence (HSQC) andheteronuclear