The substrate solution used in the

The substrate solution used in the cross-flow filtra- tion as the feed, contained either catechol or phenol. Catechol at a concentration of 2 mol/ml was dis- solved in 0.033 M of Tris–HCl buffer at pH 7.6. The catechol solution was fed to the membrane unit at var- ious cross-flow rates in which the cross-flow rate was altered in order to obtain a desired flux rate, ranging from 8.52 × 10−4 to 46.02 × 10−4 ml/cm2 s. In each experiment, 1l solution was used without recycling the permeate or retantate streams Due to the absence of any particulate matter in the solution, steady state conditions were reached almost immediately, without any significant reduction in the permeate flux. At the end of each experiment, 300 ml solution was perme- ated per 1 l of feed. Catechol 1,2-dioxygenase activity of the immobilized enzyme was measured after the flux reached to a steady state. Measurement of the im- mobilized enzyme activity was based on the amount of degraded catechol which caused an increase in ab- sorbancy at 260 nm by an amount of 0.56 absorbance units per ml of the permeate [22]. No enzyme was detected in the retantate stream as a result of break up of the enzyme from the membrane.
Phenol solutions were prepared at various phe- nol concentrations, ranging from 200 to 950 mg/l in Tris–HCl buffer at pH 7.6. Phenol concentrations were measured by direct photometric method (4-amino an- tipyrine) [22]. The substrate solution was fed in to the cross-flow membrane filtration module at a constant transmembrane pressure of 4.2 bar to obtain flux rate of 4.60 × 10−3 ml/cm2 s. The amount of phenol in the permeate was measured after the flux reached to a steady state.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

การแก้ไขปัญหาพื้นผิวที่ใช้ในการข้ามการไหลหมุนวน filtra-ทางการค้าเป็นอาหาร ประกอบด้วย catechol หรือฟีนอล Catechol ที่ความเข้มข้น 2 โมล/ml ถูกส่ง-แก้ M 0.033 ทริ – HCl บัฟเฟอร์ที่ pH 7.6 โซลูชัน catechol ถูกเลี้ยงหน่วยเยื่อที่อัตราไหลข้าม var ious ที่อัตราการไหลข้ามมีการเปลี่ยนแปลงเพื่อให้ได้อัตราการไหลที่ต้องการ ถึง 8.52 × 10−4 46.02 × 10−4 ซม. 2 ml s ในแต่ละการทดลอง ใช้โซลูชัน 1 ลิตร โดยกระแส permeate หรือ retantate เนื่องจากการขาดใด ๆ เรื่องฝุ่นในการแก้ปัญหาการรีไซเคิล ท่อนสภาพถูกถึงทันที โดยไม่ต้องลดการไหล permeate ใด ๆ อย่างมาก ที่สุดของแต่ละการทดลอง 300 มล.เป็น perme ated ต่ออาหาร 1 ลิตร มีวัด catechol dioxygenase 1, 2 กิจกรรมของเอนไซม์ตรึงหลังจากการไหลถึงสถานะคง วัดของกิจกรรมเอนไซม์ของ im-ระดมตามจำนวน catechol เสื่อมโทรมซึ่งเกิดจากการเพิ่มขึ้นใน sorbancy ab ที่ 260 nm จำนวน 0.56 absorbance หน่วยต่อมิลลิลิตร permeate [22] เอนไซม์ไม่ถูกพบในสตรีม retantate เป็นผลมาจากการแบ่งค่าของเอนไซม์จากเมมเบรนมีเตรียมวิธีฟีนอลที่ระดับความเข้มข้นต่าง ๆ เพ nol ตั้งแต่ 200 ถึง 950 mg/l ในทริ – HCl บัฟเฟอร์ที่ pH 7.6 ฟีนอลความเข้มข้นที่วัดได้ โดยวิธีการปฐิบัติการทดสอบโดยตรง (อะมิโน 4 อัน-tipyrine) [22] การแก้ไขพื้นผิวถูกป้อนในการ cross flow กรองเมมเบรนที่ความดันคง transmembrane 4.2 บาร์รับอัตราไหล 4.60 × 10−3 ซม. 2 ml s ยอดของฟีนอลใน permeate มีวัดหลังจากไหลไปยังสถานะคง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วิธีการแก้ปัญหาสารตั้งต้นที่ใช้ในการข้ามไหล filtra- เป็นอาหารที่มีทั้ง catechol หรือฟีนอล catechol ที่ความเข้มข้น 2 mol / ml ถูกกระจายการแก้ไขใน 0.033 M ของ Tris-HCl บัฟเฟอร์ที่ pH 7.6 วิธีการแก้ปัญหา catechol เป็นอาหารให้กับหน่วยเมมเบรนที่ var- อัตราการไหลข้าม IOUs ที่อัตราการไหลข้ามการเปลี่ยนแปลงในการสั่งซื้อเพื่อให้ได้อัตราการไหลของของเหลวที่ต้องการตั้งแต่ 8.52 × 10-4 เพื่อ 46.02 × 10-4 มล. / cm2 s ในการทดสอบแต่ละวิธีการแก้ปัญหา 1L ถูกนำมาใช้โดยไม่ต้องรีไซเคิลซึมหรือลำธาร retantate เนื่องจากไม่มีอนุภาคใด ๆ ในการแก้ปัญหาสภาพความมั่นคงของรัฐก็มาถึงเกือบจะในทันทีโดยไม่ต้องลดลงอย่างมีนัยสำคัญใด ๆ ในการไหลซึม ในตอนท้ายของแต่ละการทดลอง 300 ml แก้ปัญหาที่ถูก ated perme- ต่อ 1 ลิตรอาหาร catechol กิจกรรม 1,2-dioxygenase เอนไซม์ตรึงวัดหลังจากที่ฟลักซ์ถึงกับความมั่นคงของรัฐ การวัดญระดมกิจกรรมของเอนไซม์ขึ้นอยู่กับปริมาณของ catechol เสื่อมโทรมซึ่งก่อให้เกิดการเพิ่มขึ้นของ sorbancy AB- ที่ 260 นาโนเมตรโดยจำนวนของการดูดกลืนแสง 0.56 หน่วยหนึ่ง ๆ ในแต่ละมิลลิลิตรการซึมผ่าน [22] ไม่มีเอนไซม์ที่ถูกตรวจพบในกระแส retantate เป็นผลมาจากการสลายตัวของเอนไซม์จากเมมเบรน.
โซลูชั่นฟีนอลได้จัดทำขึ้นที่ระดับความเข้มข้นต่างๆ NOL ปรากฏการณ์ตั้งแต่ 200-950 มิลลิกรัม / ลิตร Tris-HCl บัฟเฟอร์ที่ pH 7.6 ความเข้มข้นของฟีนอลถูกวัดโดยวิธีการวัดความเข้มแสงโดยตรง (4 อะมิโน tipyrine an-) [22] วิธีการแก้ปัญหาสารตั้งต้นเป็นอาหารในโมดูลกรองเมมเบรนไหลข้ามที่ความดันคงที่ 4.2 บาร์ที่จะได้รับอัตราค่าฟลักซ์ 4.60 × 10-3 มล. / cm2 s ปริมาณของฟีนอลในการซึมผ่านที่ได้รับการวัดหลังฟลักซ์ถึงกับความมั่นคงของรัฐ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

พื้นผิวโซลูชั่นที่ใช้ในอัตราการไหล filtra - tion เป็นอาหาร มีทั้งแคติคอล หรือฟีนอล แคติคอลที่เข้มข้น 2 mol / ml เป็น dis - แก้ไขใน 0.033 M ของบริษัทบัฟเฟอร์ pH 7.6 และ HCL . ส่วนแคติคอลโซลูชั่นถูกป้อนเข้าหน่วยเมมเบรนที่ var - IOUs ข้ามอัตราการไหลที่อัตราการไหลข้ามคือการเปลี่ยนแปลงเพื่อที่จะได้รับอัตราการไหลที่ต้องการตั้งแต่ 8.52 × 10 − 4 × 10 − 4 46.02 มิลลิลิตร / cm2 . ในแต่ละการทดลองสารละลาย 1 ลิตรใช้โดยไม่รีไซเคิลซึมหรือ retantate กระแสเนื่องจากไม่มีฝุ่นใด ๆ ในการแก้ปัญหาสภาวะคงที่ได้ถึงเกือบจะทันที โดยไม่มีการใด ๆ ในทำนองเดียวกับ ฟลักซ์ ในตอนท้ายของแต่ละการทดลอง 300 ml ในสารละลาย 1 ลิตร ต่อ perme - ด้วยอาหาร แคติคอล 1,2-dioxygenase กิจกรรมของเอนไซม์ คือวัดหลังไหลถึงสถานะคงตัว การวัดของ IM - ระดมกิจกรรมเอนไซม์ขึ้นอยู่กับปริมาณของทรามแคติคอลซึ่งก่อให้เกิดการเพิ่มขึ้นใน AB - sorbancy ที่ 260 nm โดยจำนวน 0.56 ค่าหน่วยต่อมิลลิลิตรของซึม [ 22 ] ไม่มีเอนไซม์ที่ตรวจพบใน retantate กระแสเป็นผลจากการเลิกกันของเอนไซม์จากเยื่อฟีนอล โซลูชั่น เตรียมที่ต่างๆเพ - นอลความเข้มข้นตั้งแต่ 200 ถึง 950 มิลลิกรัมต่อลิตรในบัฟเฟอร์ pH 7.6 บริษัท– HCL . ฟีนอลเท่ากับวัดโดยวิธีทางแสงโดยตรง ( 4-amino - tipyrine ) [ 22 ] พื้นผิวโซลูชั่นถูกป้อนในการไหลเมมเบรนกรองข้ามโมดูลที่ความดันคงที่ยาว 4.2 บาร์เพื่อให้ได้อัตราการไหลของ 4.60 × 10 − 3 มล. / cm2 s ปริมาณของฟีนอลในทำนองเดียวกับวัดหลังไหลถึงสถานะคงตัว