In the plant, the GABA biosynthesis

In the plant, the GABA biosynthesis pathway is accomplished
by GABA shunt and polyamine degradation (Barry, Shelp,
Bown, & Michael, 1999). GABA is a metabolic end product and
is primarily produced by the decarboxylation of L-glutamic acid
(L-Glu), catalyzed by glutamate decarboxylase (GAD, EC 4.1.1.15)
(Bouche & Fromm, 2004).The accumulation of GABA is related
to the activity of GAD and substrate concentration of L-Glu
(Bown & Shelp, 1997). Environmental stresses promote the accumulation
of GABA in plant tissue (Kinnersley & Turano, 2000),
such as cold or heat stress (Youn et al., 2011), salt stress (Su,
Yu, Zhang, & Liu, 2007) and drought stress (Kramer, Breitenstein,
Kleinwachter, & Selmar, 2010), mechanical stimulation and
oxygen deprivation (Chung, Jang, Cho, & Lim, 2009; Guo et al.,
2011) and a lowering of the cellular pH (Bouche, Lacombe, &
Fromm, 2003).
Many studies have been conducted on increasing GABA production
(Imam et al., 2012), e.g. by xylanase and cellulose
enzymes treatments (Das, Gupta, & Kapoor, 2008), bacteria fermentation
(Liao et al., 2013; Lu, Chen, & Gu, 2008), or modifying
soaking and germination environments of seeds
(Komatsuzaki, Tsukahara, & Toyoshima, 2007; Ohtsubo, Suzuki,
Yasui, & Kasumi, 2005). The soaking and germination duration,
temperature and pH in soaking water have been reported
to enhance GABA production in soybean, faba bean and
rice (Charoenthaikij et al., 2010; Guo et al., 2011; Li, Bai, & Jin,
2010). Saikusa, Horino, and Mori (1994) reported an optimal temperature
of 40 °C for GABA accumulation, while 30 °C was given
by Ohtsubo et al. (2005). Thitinunsomboon, Keeratipibul, and
Boonsiriwit (2013) recommended combining repeated soaking
in tap water at 35 °C for 3 h with incubation at 37 °C for 21 h.
The optimal pH for GABA accumulation ranged from 3.0 to 5.8
(Bown & Shelp, 1997; Charoenthaikij, Jangchud, & Jangchud,
2009; Saikusa et al., 1994). A lower cytosolic pH stimulates activity
of GAD (Snedden, Chung, Pauls, & Bown, 1992).
Cultivated rice (O. sativa) has two subspecies: O. sativa indica
and O. sativa japonica (Huang et al., 2012). Indica rice has long
kernels with a length/width ratio of four to five. Basmati and
jasmine rice are examples. Japonica rice is the moist, sticky,
bright white rice that is used in sushi and Mediterranean and
Asian dishes that require stickiness. The length/width ratio
is two to three. Roohinejad et al. (2009, 2011) showed differences
in the accumulation of GABA among 35 Malaysian rice
cultivars. However, information on GABA accumulation in the
two main rice subspecies, indica and japonica, is lacking. Glutamic
acid rapidly increased GABA accumulation (Liu, Zhai,
& Wan, 2005). Gibberellin A3 (GA3) increased seed respiration
rate and promoted starch degradation along with increased
amylase activities, seed germination rate (Li et al., 2013).
However, knowledge on the effects of exogenous GA3, glutamic
acid and its interaction with genotypes on GABA yield
in GBR is limited.
Though many studies have been done on improving GABA
production in GBR, information on the optimal conditions for
GABA production in indica and japonica rice is still missing.
The objectives of this study were to a) optimize soaking and
germination temperature and time for both rice genotypes for
GABA production; b) identify optimal pH, L-Glu concentration
and GA3 concentration in soaking water for GABA production
by indica and japonica rice.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ในโรงงาน ทำทางเดินการสังเคราะห์น้ำนมข้าวกล้องงอกโดยน้ำนมข้าวกล้องงอกสร้างทางเชื่อมโพรงและโพลีเอมีน (Barry, ShelpBown และ Michael, 1999) น้ำนมข้าวกล้องงอกเป็นผลิตภัณฑ์สุดท้ายเผาผลาญ และส่วนใหญ่ผลิต โดย decarboxylation ของ L-กลูตาเมตกระบวน (L-Glu), โดย decarboxylase glutamate (กาด EC 4.1.1.15)(Bouche & Fromm, 2004)ที่เกี่ยวข้องกับการสะสมของสารกาบากิจกรรมของกาดและพื้นผิวความเข้มข้นของ L Glu(Bown & Shelp, 1997) ความเครียดสิ่งแวดล้อมส่งเสริมการสะสมของสารกาบาในเนื้อเยื่อพืช (Kinnersley & Turano, 2000),เช่นความร้อนหรือเย็นความเครียด (โสยูน et al., 2011), เกลือ (Su ความเครียดหยู จาง และ หลิว 2007) และความเครียดภัยแล้ง (Kramer, BreitensteinKleinwachter, & Selmar, 2010), กลกระตุ้น และภาวะขาดออกซิเจน (Chung แจง ช่อ และ Lim, 2009 กัว et al.,2011) และการลดลงของ pH เซล (Bouche, Lacombe, &Fromm, 2003)ได้ดำเนินการศึกษามากมายในการเพิ่มน้ำนมข้าวกล้องงอกผลิต(Imam et al., 2012), โดยไซลาเนสและเซลลูโลสเช่นเอนไซม์บำบัด (Das กุปตา & กปู 2008), แบคทีเรียหมัก(เลี้ยว et al., 2013 ลู เฉิน และ กู 2008), หรือการปรับเปลี่ยนสภาพแวดล้อมการแช่และการงอกของเมล็ด(Komatsuzaki, Tsukahara และ โยะ 2007 Ohtsubo, Suzukiตั้งแต่ และคะซุมิ 2005) ระยะเวลาแช่และการงอกอุณหภูมิและค่า pH ในแช่น้ำมีรายงานเพื่อเพิ่มประสิทธิภาพการผลิตน้ำนมข้าวกล้องงอกในถั่วเหลือง ถั่ว faba และข้าว (Charoenthaikij et al., 2010 กัว et al., 2011 หลี่ ไบ & จิ2010) . Saikusa, Horino และโมริ (1994) รายงานอุณหภูมิเหมาะสม40 องศาเซลเซียสสำหรับรวบรวมน้ำนมข้าวกล้องงอก ในขณะที่ 30 ° C ได้รับโดย Ohtsubo et al. (2005) Thitinunsomboon, Keeratipibul และBoonsiriwit (2013) แนะนำรวมแช่ซ้ำในน้ำประปาที่ 35 ° C สำหรับ 3 h กับบ่มที่ 37 ° C สำหรับ 21 hPH ที่เหมาะสมที่สุดสำหรับสะสมน้ำนมข้าวกล้องงอกที่อยู่ในช่วงจาก 3.0 ถึง 5.8(Bown & Shelp, 1997 Charoenthaikij, Jangchud, & Jangchud2009 Saikusa et al., 1994) Cytosolic pH ต่ำกระตุ้นกิจกรรมกาด (Snedden ชุ พอลส์ และ Bown, 1992)ปลูกข้าว (โอซา) มีชนิดย่อยสอง: โอซา indicaและโอซา japonica (หวง et al., 2012) ข้าว Indica ได้ยาวนานเมล็ด มีอัตราความยาว/ความกว้างของสี่ถึงห้า บาสมาติก และข้าวหอมมะลิเป็นตัวอย่าง ข้าว japonica เป็นชุ่มชื่น เหนียวข้าวขาวสดใสที่ใช้ในซูชิและเมดิเตอร์เรเนียน และอาหารเอเชียที่ stickiness อัตราส่วนความกว้าง/ความยาวเป็นสองถึงสาม Roohinejad et al. (2009, 2011) พบความแตกต่างในการสะสมของสารกาบาในมาเลเซีย 35 ข้าวพันธุ์ อย่างไรก็ตาม ข้อมูลสะสมสารกาบาในการชนิดย่อยข้าวหลักสอง indica และ japonica ขาด Glutamicกรดน้ำนมข้าวกล้องงอกสะสม (หลิว Zhai ที่เพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็วและหวาน 2005) Gibberellin A3 (GA3) เพิ่มขึ้นหายใจเมล็ดเพิ่มอัตราและย่อยสลายแป้งส่งเสริมด้วยกิจกรรม amylase อัตราการงอกของเมล็ด (Li et al., 2013)อย่างไรก็ตาม ความรู้เกี่ยวกับผลของ GA3 บ่อย glutamicกรดและการโต้ตอบกับการศึกษาจีโนไทป์ในน้ำนมข้าวกล้องงอกผลตอบแทนใน GBR ถูกจำกัดแม้ว่าการศึกษาจำนวนมากได้ในการปรับปรุงน้ำนมข้าวกล้องงอกGBR ข้อมูลเกี่ยวกับเงื่อนไขที่เหมาะสมสำหรับการผลิตผลิตน้ำนมข้าวกล้องงอกข้าว indica และ japonica หายยังวัตถุประสงค์ของการศึกษานี้ได้) ปรับแช่ และการงอกอุณหภูมิและเวลาสำหรับการศึกษาจีโนไทป์ทั้งข้าวสำหรับน้ำนมข้าวกล้องงอกผลิต ขระบุค่า pH เหมาะสม ความเข้มข้น L Gluและความเข้มข้นของ GA3 ในแช่น้ำสำหรับผลิตน้ำนมข้าวกล้องงอกโดยข้าว indica และ japonica

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ในโรงงานทางเดินสังเคราะห์ GABA สามารถทำได้
โดยแบ่ง GABA และความเสื่อมโทรมของพอลิเอ (แบร์รี่ Shelp,
โบล์นและไมเคิล, 1999) กาบาเป็นสินค้าที่สิ้นสุดการเผาผลาญและ
ผลิตหลักโดย decarboxylation ของกรด L-กลูตามิก
(L-Glu) เร่งปฏิกิริยาด้วย decarboxylase กลูตาเมต (GAD, EC 4.1.1.15)
(Bouche & ฟรอมม์ 2004) การสะสมของ GABA ได้โดยเริ่มต้นเป็นที่เกี่ยวข้อง
กิจกรรมของความเข้มข้นกาดและสารตั้งต้นของ L-Glu
(โบล์ & Shelp, 1997) ความเครียดสิ่งแวดล้อมส่งเสริมการสะสม
ของ GABA ในเนื้อเยื่อพืช (Kinnersley & Turano, 2000),
เช่นความเครียดความเย็นหรือความร้อน (Youn et al., 2011), ความเครียดเกลือ (ซู
ยูจางและหลิว 2007) และความเครียดภัยแล้ง (เครเมอ Breitenstein,
Kleinwachter และ Selmar, 2010), การกระตุ้นทางกลและ
กีดกันออกซิเจน (Chung, จาง, Cho และลิม. 2009; Guo และคณะ,
2011) และการลดลงของค่า pH ของเซลล์ (Bouche คอมบ์และ
ฟรอมม์ 2003).
การศึกษาจำนวนมากได้รับการดำเนินการเกี่ยวกับการเพิ่มการผลิต GABA
(อิหม่าม et al., 2012) เช่นโดยไซลาเนสและเซลลูโลส
การรักษาเอนไซม์ (ดา Gupta และ Kapoor 2008) แบคทีเรียหมัก
(Liao et al., 2013 ; Lu, เฉิน & Gu, 2008) หรือการปรับเปลี่ยน
แบบและสภาพแวดล้อมการงอกของเมล็ด
(Komatsuzaki, Tsukahara และ Toyoshima 2007; Ohtsubo ซูซูกิ
Yasui และคาซึมิ, 2005) แช่และระยะเวลาการงอก,
อุณหภูมิและพีเอชในน้ำแช่ได้รับรายงาน
การเพิ่มประสิทธิภาพการผลิต GABA ในถั่วเหลืองถั่วถั่วและ
ข้าว (Charoenthaikij et al, 2010;.. Guo และคณะ, 2011; ลี่ตากใบและจิน,
2010) . Saikusa, Horino และ Mori (1994) รายงานอุณหภูมิที่เหมาะสม
ของ 40 ° C สำหรับการสะสม GABA ในขณะที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสได้รับ
โดย Ohtsubo และคณะ (2005) ฐิตินันท์, กีรติพิบูลและ
Boonsiriwit (2013) แนะนำรวมซ้ำแช่
ในน้ำประปาที่ 35 องศาเซลเซียสนาน 3 ชั่วโมงกับการบ่มที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 21 ชม.
ค่า pH ที่เหมาะสมที่สุดสำหรับการสะสม GABA อยู่ในช่วง 3.0-5.8
(โบล์ & Shelp 1997 ; Charoenthaikij, แจ้งชัดและแจ้งชัด,
2009;. Saikusa, et al, 1994) ค่า pH ต่ำกว่า cytosolic กระตุ้นกิจกรรม
. กาด (Snedden จุง, ปอลส์และโบล์น, 1992)
การเพาะปลูกข้าว (ทุม sativa) มีสองชนิดย่อย: ทุม indica sativa
(. Huang et al, 2012) และ sativa japonica ทุม ข้าว Indica มีความยาว
เมล็ดที่มีความยาว / อัตราส่วนความกว้างของ 4-5 Basmati และ
ข้าวหอมมะลิเป็นตัวอย่าง ข้าว japonica เป็นชื้นเหนียว
ข้าวขาวสดใสที่จะใช้ในการซูชิและเมดิเตอร์เรเนียนและ
อาหารเอเชียที่จำเป็นต้องมีความหนืด ระยะเวลา / อัตราส่วนความกว้าง
เป็น 2-3 Roohinejad และคณะ (2009, 2011) แสดงให้เห็นถึงความแตกต่าง
ในการสะสมของ GABA หมู่ 35 มาเลเซียข้าว
พันธุ์ อย่างไรก็ตามข้อมูลเกี่ยวกับการสะสม GABA ใน
สองชนิดย่อยข้าวหลัก indica และ japonica, ขาด กลูตามิก
กรดสะสม GABA เพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็ว (หลิว Zhai,
& Wan, 2005) gibberellin A3 (GA3) เพิ่มการหายใจของเมล็ด
อัตราและส่งเสริมการย่อยสลายแป้งพร้อมกับเพิ่ม
กิจกรรมอะไมเลส, อัตราการงอกของเมล็ด (Li et al., 2013).
แต่ความรู้เกี่ยวกับผลกระทบของ GA3 ภายนอกกลูตามิก
กรดและการมีปฏิสัมพันธ์กับยีนใน GABA ผลผลิต
ใน GBR มี จำกัด .
แม้ว่าการศึกษาจำนวนมากได้รับการดำเนินการในการปรับปรุง GABA
ผลิตใน GBR ข้อมูลเกี่ยวกับสภาวะที่เหมาะสมสำหรับ
การผลิต GABA ใน indica และข้าว japonica ยังขาดหายไป.
วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อ) เพิ่มประสิทธิภาพการแช่น้ำและ
อุณหภูมิงอก และเวลาที่ทั้งสองสายพันธุ์ข้าวสำหรับ
การผลิต GABA; ข) ระบุค่า pH ที่เหมาะสมเข้มข้น L-Glu
และความเข้มข้นของ GA3 ในการแช่น้ำสำหรับการผลิต GABA
โดย indica และข้าว japonica

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ในพืช , สารกาบา GABA วิถีการสังเคราะห์สำเร็จ
โดยสับเปลี่ยนและการย่อยสลายโพลีเอมีน ( แบรี่ shelp
โบน , & , ไมเคิล , 1999 ) สารกาบาเป็นผลิตภัณฑ์ที่สิ้นสุดการสลาย
เป็นหลักและผลิตโดยเงือกของ l-glutamic กรด
( l-glu ) , การเร่งปฏิกิริยาด้วยกลูตาเมตดีคาร์บอกซิเลส ( GAD EC 4.1.1.15 )
( บูช&ฟรอม , 2004 ) การสะสมของสารกาบาเกี่ยวข้อง
กับกิจกรรมกาดและความเข้มข้นสารอาหารของ l-glu
( โบน& shelp , 1997 ) เน้นสิ่งแวดล้อมที่ส่งเสริมการสะสม
ของ GABA ในเนื้อเยื่อพืช ( kinnersley & turano , 2000 ) ,
เช่นความเย็นหรือความร้อน ( ยอน et al . , 2011 ) , ความเครียดเกลือ ( ซู
Yu , Zhang , &หลิว , 2007 ) และภาวะแล้ง ( เครเมอร์ ไบร์ตั้นสไตน์ kleinwachter & selmar
, , , 2010 ) กระตุ้นกลและ
ขาดออกซิเจน ( ชุง ชาง โช &ลิม , 2009 ; ก๊วย et al . ,
2011 ) และการลดของ pH ของเซลล์ ( บูชลาคอมเบ้ , ,
&ฟรอม , 2003 ) .
หลายการศึกษาที่ได้รับการดำเนินการในการเพิ่ม
การผลิต GABA ( อิหม่าม et al . , 2012 ) โดยเอนไซม์เช่น เอนไซม์บําบัด และเซลลูโลส
( Das Gupta , & กาปูร์ , 2008 ) , แบคทีเรียหมัก
( เหลียว et al . , 2013 ; ลู่เฉิน &กู , 2008 ) หรือการปรับเปลี่ยน
การแช่เมล็ดงอกสภาพแวดล้อม
( โคมัตสึซากิ ทสึคาฮาระ&ไทม์อีเวนท์ , 2007 ; ตซึบุ , SUZUKI ,
สึอิ &คาซึมิ , 2005 ) การแช่และระยะเวลาการงอกของเมล็ด อุณหภูมิ และ pH ในน้ำแช่

ได้รับการรายงานเพื่อเพิ่มการผลิต GABA ในถั่วเหลือง ถั่ว และ ข้าว faba
( charoenthaikij et al . , 2010 ; ก๊วย et al . , 2011 ; หลี่ ไป๋ &จิน
2010 ) saikusa horino , ,และ โมริ ( 2537 ) รายงานที่เหมาะสมอุณหภูมิ 40 องศา C
สำหรับการสะสม สารกาบา ในขณะที่ 30 ° C ได้รับ
โดย ตซึบุ et al . ( 2005 ) thitinunsomboon อัศวพิศิษฐ , ,
boonsiriwit ( 2013 ) แนะนำรวมแช่ซ้ำ
ในน้ำประปาที่ 35 ° C เป็นเวลา 3 ชั่วโมงบ่มที่ 37 ° C เป็นเวลา 21 ชั่วโมง pH ที่เหมาะสมสำหรับการสะสมสาร
ตั้งแต่ 3.0 ถึง 5.8
( โบน& shelp , 1997 ; charoenthaikij นนท์ , ,&นนท์
, 2009 ; saikusa et al . , 1994 ) ่อ cytosolic กิจกรรมกระตุ้น
กาด ( สเนดเดิ้น ชุง พอล , &โบน , 1992 ) .
ข้าวปลูก ( O . sativa ) มี 2 ชนิดย่อย : O . sativa indica
O . sativa และญี่ปุ่น ( Huang et al . , 2012 ) ข้าว Indica มีเมล็ดยาว
ที่มีความยาว / ความกว้างเท่ากับสี่ถึงห้า บาสมาติกและ
ข้าวหอมมะลิเป็นตัวอย่าง ข้าวเหนียว
เป็นชุ่มชื้นข้าวขาวใสที่ใช้ในซูชิและอาหารเอเชียและเมดิเตอร์เรเนียน
ที่ต้องการความเหนียว . อัตราส่วนความยาว / ความกว้าง
เป็นสองถึงสาม roohinejad et al . ( 2009 , 2011 ) พบความแตกต่าง
ในการสะสมของ GABA ในข้าว 35 มาเลเซีย
2 พันธุ์ อย่างไรก็ตาม ข้อมูลการสะสมของ GABA ในข้าวสายพันธุ์อินดิคา
สองหลัก , และ ญี่ปุ่น จะขาด มิก
การสะสมกรด GABA เพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็ว ( หลิวจ้าย
& , วาน , 2005 ) จิบเบอเรลลิน A3 ( GA3 ) เมล็ด ( อัตราการหายใจและการย่อยสลายแป้ง

การเพิ่มขึ้นพร้อมกับกิจกรรมเอนไซม์อะไมเลส , อัตราการงอกของเมล็ด ( Li et al . , 2013 ) .
แต่ความรู้เกี่ยวกับผลของ GA3 ภายนอก , และปฏิกิริยาของกรดกลูตามิค
เปรียบเทียบผลผลิตในงอก GABA ต่อ

มีจำกัดแม้ว่าการศึกษาจำนวนมากได้รับการทำในการปรับปรุงการผลิต GABA
ใน GBR , ข้อมูลเกี่ยวกับ สภาวะที่เหมาะสมในการผลิตผลิต GABA และ

ข้าวก็ยังหายไป วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้คือ เพื่อเพิ่มประสิทธิภาพการงอกของการแช่
) อุณหภูมิและเวลาทั้งข้าวพันธุ์สำหรับการผลิต GABA
; B ) ระบุค่า pH ที่เหมาะสม l-glu
, ความเข้มข้นแช่น้ำ และ GA3 ความเข้มข้นในการผลิต โดยผลิต GABA และ
ข้าวญี่ปุ่น .