The volume of biogas produced in th

The volume of biogas produced in the batch experiment was
measured using a wetted-glass syringe method [15]. The volume
of biogas produced in the reactor experiment was measured using
gas counter (Fig. 2). Hydrogen and methane production were
determined by gas chromatography (GC, Shimadzu 2014, Japan)
equipped with a thermal conductivity detector (TCD) and a 2-m
stainless column packed with Unibeads C (60/80 mesh). The GCTCD
conditions followed those of Saraphirom and Reungsang
[16]. The hydrogen and methane volume in the biogas was
calculated using a mass balance equation [17]. The VFAs were
measured by high performance liquid chromatography (HPLC)
according to the method of Saraphirom and Reungsang [16]. The
COD, VS, and VSS were measured according to the APHA method FeSO4$7H2O 25, CuSO4$5H2O 5, CoCl2$5H2O 0.125, and NaHCO3
6720 [15]. Then, the hydrogen production was conducted in a 5.5 L
continuous stirred tank reactor (CSTR) with a working volume of
5 L. The CSTRwas operated at the optimum HRTof 4 h following the
method of Pattra et al. [14]. After reaching a steady state, the acidic
effluent discharged after the hydrogen fermentation was used as
the substrate for methane production. The chemical characteristics
of the effluent are presented in Table 1. The main VFAs in the
effluent is HBu. The COD value of the effluent was 22.50 g-COD/L,
and the pHwas 5.72. The VS of the effluentwas 23.43 g/L. The acidic
effluent was kept at 4 C before being used in the experiment.
2.2. Preparation of the inoculum
Granules from the UASB reactor of a cassava starch
manufacturing company in the northeastern part of Thailand were
directly used as the seed inoculums for methane production
without enrichment. The initial VS and pH of the inoculums were
26.54 g/L and 7.8, respectively.
2.3. Optimization of the key parameters affecting methane
production in the batch experiment
RSM with CCD was used to optimize the key factors affecting
simultaneous methane production and biodegradability. The
investigated parameters included the ratio of substrate to biomass
(S/X ratio) (X1) (g-VSsub/g-VSinoculum), Ni concentration (mg/L) (X2),
and Co concentration (mg/L) (X3). The response variables were MY
and biodegradability (Table 2). The MY was calculated by dividing
the methane production (mL-CH4/L) by the substrate concentration
(g-VSsub/L). Biodegradability was calculated as follows:
Biodegradability (%) ¼ [Methane yield at STP (mL-CH4/g-COD)/
Theoretical methane yield (350 mL-CH4/g-COD)] 100 (1)
Design-Expert (Demo version 7.0, Stat-Ease, Inc., Minneapolis,
MN, USA) was employed for experimental design, modeling, and
graphical display of experimental results.
Production of methane was conducted in 120-mL serum bottles
each having 70-mLof working volume. The medium used to produce
methane contained acidic effluent, and Ni and Co, as well as
the inoculum. Table 2 shows the S/X ratio and concentration of Ni
and Co used in the fermentation. The initial pH of the medium was
adjusted to 7.0 using 2 mol/L of HCl or 2 mol/L of NaOH. The serum
bottles were capped with rubber stoppers and aluminum caps.
They were subsequently flushed with nitrogen gas to ensure
anaerobic conditions. All bottles were incubated at room temperature
(30 ± 2 C) on a shaker operating at 150 rpm. All experiments
were done in triplicates.
2.4. UASB reactor setup and operation
The 30-L UASB reactor was used to producemethane. An acrylic
material was used to make the reactor. It had dimensions of 14 cm
(diameter) by 165 cm (height). This was large enough to allow a
25-L working volume and 5-L head space. Fig. 2 gives a schematic
of the UASB reactor. The UASB reactor contained UASB granules as
inoculums and acidic effluent as substrate. The acidic effluent from
hydrogen production process was used as the substrate and supplemented
with the optimum Ni and Co concentration obtained
from batch fermentation step (Section 2.3). The reactor was started
up using the optimum S/X ratio obtained from batch
fermentation step (Section 2.3) for 24 h. The reactor was operated
at a temperature of 30 ± 2 C in the continuous mode at the
highest HRT of 6 days (equivalent to the organic loading rate (OLR)
of 3.41 ± 0.35 kg-COD/m3 d) until it reached a steady state. The
steady state of each HRT was reached when the variation in the
MPR and substrate utilization was ±10%. After reaching a steady
state, the HRT was decreased to 5, 4, 3, and 2 days, equivalent to
the OLR of 4.20 ± 0.14, 5.25 ± 0.05 and 7.05 ± 0.13 kg-COD/m3 d,
respectively. Optimal HRT coincided with maximal methane
generation.
2.5. Analytical methods
The volume of biogas produced in the batch experiment was
measured using a wetted-glass syringe method [15]. The volume
of biogas produced in the reactor experiment was measured using
gas counter (Fig. 2). Hydrogen and methane production were
determined by gas chromatography (GC, Shimadzu 2014, Japan)
equipped with a thermal conductivity detector (TCD) and a 2-

The volume of biogas produced in the batch experiment was
measured using a wetted-glass syringe method [15]. The volume
of biogas produced in the reactor experiment was measured using
gas counter (Fig. 2). Hydrogen and methane production were
determined by gas chromatography (GC, Shimadzu 2014, Japan)
equipped with a thermal conductivity detector (TCD) and a 2-m
stainless column packed with Unibeads C (60/80 mesh). The GCTCD
conditions followed those of Saraphirom and Reungsang
[16]. The hydrogen and methane volume in the biogas was
calculated using a mass balance equation [17]. The VFAs were
measured by high performance liquid chromatography (HPLC)
according to the method of Saraphirom and Reungsang [16]. The
COD, VS, and VSS were measured according to the APHA method FeSO4$7H2O 25, CuSO4$5H2O 5, CoCl2$5H2O 0.125, and NaHCO3
6720 [15]. Then, the hydrogen production was conducted in a 5.5 L
continuous stirred tank reactor (CSTR) with a working volume of
5 L. The CSTRwas operated at the optimum HRTof 4 h following the
method of Pattra et al. [14]. After reaching a steady state, the acidic
effluent discharged after the hydrogen fermentation was used as
the substrate for methane production. The chemical characteristics
of the effluent are presented in Table 1. The main VFAs in the
effluent is HBu. The COD value of the effluent was 22.50 g-COD/L,
and the pHwas 5.72. The VS of the effluentwas 23.43 g/L. The acidic
effluent was kept at 4 C before being used in the experiment.
2.2. Preparation of the inoculum
Granules from the UASB reactor of a cassava starch
manufacturing company in the northeastern part of Thailand were
directly used as the seed inoculums for methane production
without enrichment. The initial VS and pH of the inoculums were
26.54 g/L and 7.8, respectively.
2.3. Optimization of the key parameters affecting methane
production in the batch experiment
RSM with CCD was used to optimize the key factors affecting
simultaneous methane production and biodegradability. The
investigated parameters included the ratio of substrate to biomass
(S/X ratio) (X1) (g-VSsub/g-VSinoculum), Ni concentration (mg/L) (X2),
and Co concentration (mg/L) (X3). The response variables were MY
and biodegradability (Table 2). The MY was calculated by dividing
the methane production (mL-CH4/L) by the substrate concentration
(g-VSsub/L). Biodegradability was calculated as follows:
Biodegradability (%) ¼ [Methane yield at STP (mL-CH4/g-COD)/
Theoretical methane yield (350 mL-CH4/g-COD)]  100 (1)
Design-Expert (Demo version 7.0, Stat-Ease, Inc., Minneapolis,
MN, USA) was employed for experimental design, modeling, and
graphical display of experimental results.
Production of methane was conducted in 120-mL serum bottles
each having 70-mLof working volume. The medium used to produce
methane contained acidic effluent, and Ni and Co, as well as
the inoculum. Table 2 shows the S/X ratio and concentration of Ni
and Co used in the fermentation. The initial pH of the medium was
adjusted to 7.0 using 2 mol/L of HCl or 2 mol/L of NaOH. The serum
bottles were capped with rubber stoppers and aluminum caps.
They were subsequently flushed with nitrogen gas to ensure
anaerobic conditions. All bottles were incubated at room temperature
(30 ± 2 C) on a shaker operating at 150 rpm. All experiments
were done in triplicates.
2.4. UASB reactor setup and operation
The 30-L UASB reactor was used to producemethane. An acrylic
material was used to make the reactor. It had dimensions of 14 cm
(diameter) by 165 cm (height). This was large enough to allow a
25-L working volume and 5-L head space. Fig. 2 gives a schematic
of the UASB reactor. The UASB reactor contained UASB granules as
inoculums and acidic effluent as substrate. The acidic effluent from
hydrogen production process was used as the substrate and supplemented
with the optimum Ni and Co concentration obtained
from batch fermentation step (Section 2.3). The reactor was started
up using the optimum S/X ratio obtained from batch
fermentation step (Section 2.3) for 24 h. The reactor was operated
at a temperature of 30 ± 2 C in the continuous mode at the
highest HRT of 6 days (equivalent to the organic loading rate (OLR)
of 3.41 ± 0.35 kg-COD/m3 d) until it reached a steady state. The
steady state of each HRT was reached when the variation in the
MPR and substrate utilization was ±10%. After reaching a steady
state, the HRT was decreased to 5, 4, 3, and 2 days, equivalent to
the OLR of 4.20 ± 0.14, 5.25 ± 0.05 and 7.05 ± 0.13 kg-COD/m3 d,
respectively. Optimal HRT coincided with maximal methane
generation.
2.5. Analytical methods
The volume of biogas produced in the batch experiment was
measured using a wetted-glass syringe method [15]. The volume
of biogas produced in the reactor experiment was measured using
gas counter (Fig. 2). Hydrogen and methane production were
determined by gas chromatography (GC, Shimadzu 2014, Japan)
equipped with a thermal conductivity detector (TCD) and a 2-

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

เป็นปริมาตรของก๊าซชีวภาพที่ผลิตได้ในการทดลองชุดวัดโดยใช้วิธีเปียกแก้วเข็ม [15] ระดับเสียงก๊าซชีวภาพที่ผลิตได้ในเครื่องปฏิกรณ์ ทดลองที่มีวัดโดยใช้ก๊าซเคาน์เตอร์ (2 รูป) มีการผลิตไฮโดรเจนและมีเทนกำหนด โดยก๊าซ chromatography (GC, Shimadzu 2014 ญี่ปุ่น)เครื่องตรวจจับการนำความร้อน (TCD) และ 2-mคอลัมน์สแตนเลสบรรจุ ด้วย Unibeads C (60/80 ตาข่าย) GCTCD การตามเงื่อนไขของ Saraphirom และ Reungsang[16] . ปริมาณไฮโดรเจนและมีเทนในก๊าซชีวภาพได้คำนวณโดยใช้สมการสมดุลมวล [17] ได้ VFAsวัดประสิทธิภาพของเหลว chromatography (HPLC)ตามวิธีของ Saraphirom และ Reungsang [16] การCOD, VS และ VSS ถูกวัดตามวิธีอาภา FeSO4$ 7H2O 25, CuSO4$ 5H2O 5, CoCl2$ 5H2O 0.125 และ NaHCO36720 [15] แล้ว ดำเนินการผลิตไฮโดรเจนใน 5.5 Lเครื่องปฏิกรณ์ถังกวนต่อเนื่อง (CSTR) ด้วยการทำงาน5 ลิตร CSTRwas การดำเนินการที่เหมาะสมต่อไปนี้ h HRTof 4 การวิธีการของ Pattra et al. [14] หลังจากถึงรัฐ steady ความเป็นกรดหลังจากหมักไฮโดรเจนถูกใช้เป็นที่ปล่อยทิ้งพื้นผิวสำหรับการผลิตก๊าซมีเทน ลักษณะทางเคมีของน้ำจะแสดงในตารางที่ 1 VFAs หลักในการทิ้งเป็น HBu ค่า COD ของน้ำถูก 22.50-COD บัญชีและ pHwas 5.72 เทียบกับของ effluentwas 23.43 แท้ การเป็นกรดน้ำถูกเก็บไว้ที่ 4 C ก่อนที่จะใช้ในการทดลอง2.2. การเตรียม inoculum ในเม็ดจากเครื่องปฏิกรณ์ UASB แป้งมันสำปะหลังบริษัทผู้ผลิตในภาคตะวันออกเฉียงเหนือของประเทศไทยได้ใช้เป็น inoculums เมล็ดพันธุ์โดยตรงสำหรับการผลิตก๊าซมีเทนโดยไม่ต้องเพิ่มคุณค่า VS และค่า pH ของ inoculums การเริ่มต้น26.54 บัญชีและ 7.8 ตามลำดับ2.3. การเพิ่มประสิทธิภาพของพารามิเตอร์หลักที่ส่งผลกระทบต่อก๊าซมีเทนการผลิตในการทดลองชุดใช้ RSM กับ CCD เพื่อเพิ่มปัจจัยสำคัญที่ส่งผลกระทบต่อการผลิตแก๊สมีเทนพร้อมกันและ biodegradability การตรวจสอบพารามิเตอร์รวมอัตราส่วนของพื้นผิวการชีวมวล(S / X อัตรา) (1) (g-VSsub/g-VSinoculum), Ni ความเข้มข้น (mg/L) (X 2)และจำกัดความเข้มข้น (mg/L) (3) ตัวแปรตอบสนอง MYและ biodegradability (ตาราง 2) MY ที่คำนวณ โดยการหารการผลิตแก๊สมีเทน (mL-CH4/L) โดยความเข้มข้นของพื้นผิว(-VSsub บัญชี) Biodegradability คำนวณเป็นดังนี้:Biodegradability (%) ¼ [มีเทนที่ STP (mL- / g CH4 COD) ผลผลิต /ผลผลิตก๊าซมีเทนทางทฤษฎี (350 mL-CH4/g-COD)] 100 (1)ออกแบบผู้เชี่ยวชาญ (สาธิตรุ่น 7.0 สถิติง่าย Inc. นนิMN สหรัฐอเมริกา) ถูกใช้เพื่อออกแบบการทดลอง โมเดล และจอแสดงผลกราฟิกผลทดลองดำเนินการผลิตมีเทน 120 มล.ซีรั่มขวดละมี 70-mLof ทำเสียง สื่อที่ใช้ในการผลิตมีเทนอยู่เป็นกรดทิ้ง และ Ni และ Co เป็นinoculum ตารางที่ 2 แสดงการ S / X อัตราส่วนและความเข้มข้นของ Niและบริษัทที่ใช้ในการหมัก มีค่า pH เริ่มต้นของสื่อปรับใช้ 2 โมล/ลิตร HCl หรือ 2 mol/L NaOH 7.0 ซีรั่มขวดถูกปกคลุม ด้วยจุกยางและฝาอลูมิเนียมพวกเขาได้มาล้าง ด้วยก๊าซไนโตรเจนให้สภาวะไม่ใช้ออกซิเจน ได้รับการกกขวดทั้งหมดที่อุณหภูมิห้อง(30 ± 2 C) บนปั่นงานที่ 150 rpm การทดลองทั้งหมดได้ทำใน triplicates2.4 ตั้งค่าเครื่องปฏิกรณ์ UASB และการดำเนินงานมีใช้เครื่องปฏิกรณ์ UASB 30 L producemethane อะคริลิวัสดุที่ใช้ทำเครื่องปฏิกรณ์ มีขนาด 14 ซม.(เส้นผ่าศูนย์กลาง) โดย 165 ซม. (ความสูง) นี้มีขนาดใหญ่พอที่ให้การทำเสียง 25 ลิตรและ 5 ลิตรหัวพื้นที่ รูป 2 แสดง schematicปฏิกรณ์ UASB เครื่องปฏิกรณ์ UASB อยู่เม็ด UASB เป็นinoculums และน้ำกรดเป็นพื้นผิว น้ำกรดจากใช้เป็นพื้นผิว และเสริมกระบวนการผลิตไฮโดรเจนมีความเข้มข้นของ Co และ Ni ที่เหมาะสมได้จากชุดขั้นตอนการหมัก (หัวข้อ 2.3) เริ่มต้นระบบโดยใช้ S ที่เหมาะสม/ X อัตราส่วนที่ได้จากชุดงานขั้นตอนการหมัก (ส่วน 2.3) ใน 24 h เครื่องปฏิกรณ์ถูกดำเนินที่อุณหภูมิ 30 ± 2 C ในโหมดต่อเนื่องในการHRT สูง (เทียบเท่ากับอัตราการโหลดอินทรีย์ (OLR) 6 วันของ 3.41 ± 0.35 กก.-COD/m3 d) จนกว่าจะถึงสถานะคง การท่อนของแต่ละตัวประกันจนถึงเมื่อการเปลี่ยนแปลงในการใช้ MPR และพื้นผิวเป็น± 10% หลังจากถึงคงสถานะ HRT ถูกลดลงเป็น 5, 4, 3 และ 2 วัน เทียบเท่าOLR ของ 4.20 ± 0.14, 5.25 ± 0.05 และ 7.05 ± 0.13 กก.-COD/m3 dตามลาดับ HRT ที่เหมาะสมร่วมกับแก๊สมีเทนที่สูงสุดรุ่นนี้2.5 การวิเคราะห์วิธีเป็นปริมาตรของก๊าซชีวภาพที่ผลิตได้ในการทดลองชุดวัดโดยใช้วิธีเปียกแก้วเข็ม [15] ระดับเสียงก๊าซชีวภาพที่ผลิตได้ในเครื่องปฏิกรณ์ ทดลองที่มีวัดโดยใช้ก๊าซเคาน์เตอร์ (2 รูป) มีการผลิตไฮโดรเจนและมีเทนกำหนด โดยก๊าซ chromatography (GC, Shimadzu 2014 ญี่ปุ่น)เครื่องตรวจจับการนำความร้อน (TCD) และ 2-

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

ปริมาณของก๊าซชีวภาพที่ผลิตในการทดลองชุดที่ถูก
วัดโดยใช้วิธีการเปียกแก้วเข็มฉีดยา [15] ปริมาณ
ก๊าซชีวภาพที่ผลิตในการทดลองเครื่องปฏิกรณ์ถูกวัดโดยใช้
เคาน์เตอร์ก๊าซ (รูปที่. 2) ไฮโดรเจนและมีเทนผลิตถูก
กำหนดโดยแก๊ส chromatography (GC, Shimadzu 2014 ญี่ปุ่น)
พร้อมกับเครื่องตรวจจับการนำความร้อน (TCD) และ 2-M
คอลัมน์สแตนเลสที่เต็มไปด้วย UniBeads C (60/80 ตาข่าย) GCTCD
เงื่อนไขตามผู้ Saraphirom และ Reungsang
[16] ไฮโดรเจนและมีเทนปริมาณในการผลิตก๊าซชีวภาพได้รับการ
คำนวณโดยใช้สมการสมดุล [17] VFAs ถูก
วัดจากประสิทธิภาพสูงของเหลว chromatography (HPLC)
ตามวิธีการของ Saraphirom และ Reungsang ม [16]
COD, VS และ VSS วัดตาม APHA วิธี FeSO4 7H2O $ 25, $ CuSO 4 5H2O 5 COCl2 $ 0.125 5H2O และ NaHCO3
6720 [15] จากนั้นการผลิตไฮโดรเจนได้ดำเนินการใน 5.5 L
อย่างต่อเนื่องถังกวนเครื่องปฏิกรณ์ (CSTR) มีปริมาณการทำงานของ
5 ลิตร CSTRwas ดำเนินการในที่เหมาะสม HRTof 4 ชั่วโมงต่อไปนี้
วิธีการของภัทรา, et al [14] หลังจากถึงสภาวะเป็นกรด
ของน้ำทิ้งที่ปล่อยออกมาหลังจากการหมักไฮโดรเจนที่ใช้เป็น
สารตั้งต้นในการผลิตก๊าซมีเทน ลักษณะทางเคมี
ของน้ำทิ้งจะถูกนำเสนอในตารางที่ 1 VFAs หลักใน
ท่อน้ำทิ้งเป็น HBu ค่าซีโอดีของน้ำทิ้งเป็น 22.50 G-COD / L
และ pHwas 5.72 ยังมี VS ของ effluentwas 23.43 กรัม / ลิตร เป็นกรด
ของน้ำทิ้งถูกเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสก่อนที่จะถูกใช้ในการทดลอง.
2.2 เตรียมความพร้อมของหัวเชื้อ
เม็ดจากเครื่องปฏิกรณ์ UASB ของแป้งมันสำปะหลัง
บริษัท ผู้ผลิตในภาคตะวันออกเฉียงเหนือของประเทศไทยได้
นำมาใช้โดยตรงเป็นหัวเชื้อแบคทีเรียเมล็ดพันธุ์สำหรับการผลิตก๊าซมีเทน
ได้โดยไม่ต้องเพิ่มปริมาณ เริ่มต้น VS และค่า pH ของหัวเชื้อแบคทีเรียได้
26.54 กรัม / ลิตรและ 7.8 ตามลำดับ.
2.3 การเพิ่มประสิทธิภาพของพารามิเตอร์ที่สำคัญที่มีผลต่อมีเทน
ผลิตในการทดลองชุด
RSM กับ CCD ถูกนำมาใช้เพื่อเพิ่มประสิทธิภาพในปัจจัยสำคัญที่มีผลกระทบต่อ
การผลิตก๊าซมีเทนพร้อมกันและการย่อยสลายทางชีวภาพ
พารามิเตอร์การตรวจสอบรวมถึงอัตราส่วนของสารตั้งต้นเพื่อชีวมวล
(S / X Ratio) (X1) (G-VSsub / G-VSinoculum) ความเข้มข้น Ni (mg / L) (x2)
และความเข้มข้น co (mg / L) (X3 ) ตัวแปรการตอบสนองเป็นของฉัน
และย่อยสลายทางชีวภาพ (ตารางที่ 2) ฉันได้รับการคำนวณโดยการหาร
การผลิตก๊าซมีเทน (CH4 ML-/ ลิตร) โดยความเข้มข้นของสาร
(G-VSsub / ลิตร) ย่อยสลายทางชีวภาพที่คำนวณได้ดังนี้
ย่อยสลายทางชีวภาพ (%) ¼ [ผลผลิตก๊าซมีเทนที่ STP (ML-CH4 / G-COD) /
ผลผลิตก๊าซมีเทนทฤษฎี (350 ML-CH4 / G-ซีโอดี)] 100 (1)
การออกแบบ-Expert (Demo รุ่น 7.0 Stat-ง่ายดาย, Inc, Minneapolis,
MN, USA) ได้รับการว่าจ้างในการออกแบบการทดลองการสร้างแบบจำลองและการ
แสดงผลกราฟิกของผลการทดลอง.
การผลิตก๊าซมีเทนได้ดำเนินการใน 120 ML-ซีรั่ม ขวด
แต่ละคนมีปริมาณการทำงาน 70 mLof สื่อที่ใช้ในการผลิต
ก๊าซมีเทนที่มีความเป็นกรดของน้ำทิ้งและนิกเกิลและโคเช่นเดียวกับ
หัวเชื้อ ตารางที่ 2 แสดงให้เห็นถึงอัตรา S / X และความเข้มข้นของ Ni
และผู้ร่วมใช้ในการหมัก ค่า pH เริ่มต้นของกลางที่ถูก
ปรับ 7.0 ใช้ 2 โมล / ลิตร HCl หรือ 2 โมล / ลิตร NaOH ซีรั่ม
ขวดถูกปกคลุมด้วยจุกยางและฝาอลูมิเนียม.
พวกเขาถูกล้างในภายหลังด้วยก๊าซไนโตรเจนเพื่อให้แน่ใจว่า
สภาวะไร้ออกซิเจน ขวดทั้งหมดถูกบ่มที่อุณหภูมิห้อง
(30 ± 2 องศาเซลเซียส) ในเครื่องปั่นปฏิบัติการที่ 150 รอบต่อนาที การทดสอบทั้งหมด
ได้ทำใน triplicates.
2.4 การติดตั้งเครื่องปฏิกรณ์ UASB และการดำเนินงาน
30-L UASB ปฏิกรณ์ถูกใช้ในการ producemethane คริลิค
วัสดุที่ถูกนำมาใช้เพื่อให้เครื่องปฏิกรณ์ มันมีขนาด 14 ซม.
(เส้นผ่าศูนย์กลาง) 165 ซม. (สูง) นี้มีขนาดใหญ่พอที่จะช่วยให้
25-L ปริมาณการทำงานและ 5-L พื้นที่หัว มะเดื่อ. 2 ช่วยให้วงจร
ของเครื่องปฏิกรณ์ UASB UASB ปฏิกรณ์ที่มีอยู่ UASB เม็ดเป็น
หัวเชื้อแบคทีเรียและน้ำทิ้งเป็นกรดเป็นสารตั้งต้น น้ำทิ้งที่เป็นกรดจาก
กระบวนการผลิตไฮโดรเจนถูกใช้เป็นสารตั้งต้นและตบท้าย
ด้วยที่เหมาะสมนิกเกิลและโคเข้มข้นที่ได้
จากขั้นตอนการหมักแบบ (มาตรา 2.3) เครื่องปฏิกรณ์ก็เริ่ม
ขึ้นโดยใช้ที่เหมาะสมอัตรา S / X ที่ได้รับจากชุด
ขั้นตอนการหมัก (มาตรา 2.3) เป็นเวลา 24 ชั่วโมง เครื่องปฏิกรณ์ที่ได้รับการดำเนินการ
ที่อุณหภูมิ 30 ± 2 องศาเซลเซียสในโหมดต่อเนื่องใน
ระยะเวลาเก็บกักสูงสุดของ 6 วัน (เทียบเท่ากับอัตราภาระบรรทุกสารอินทรีย์ (โอแอลอา)
3.41 ± 0.35 กิโลกรัม COD / m3 D) จนถึงมั่นคง สถานะ.
มั่นคงของรัฐของแต่ละตัวประกันก็มาถึงเมื่อการเปลี่ยนแปลงในที่
MPR และสารตั้งต้นที่ใช้ประโยชน์เป็น± 10% หลังจากที่ไปถึงมั่นคง
ของรัฐตัวประกันที่ถูกลดลง 5, 4, 3 และ 2 วัน, เทียบเท่ากับ
โอแอลอา 4.20 ± 0.14, 5.25 ± 0.05 และ 7.05 ± 0.13 กิโลกรัม COD / m3 D,
ตามลำดับ ระยะเวลาเก็บกักที่เหมาะสมใกล้เคียงกับก๊าซมีเทนสูงสุด
รุ่น.
2.5 วิธีการวิเคราะห์
ปริมาณของก๊าซชีวภาพที่ผลิตในการทดลองชุดที่ถูก
วัดโดยใช้วิธีการเปียกแก้วเข็มฉีดยา [15] ปริมาณ
ก๊าซชีวภาพที่ผลิตในการทดลองเครื่องปฏิกรณ์ถูกวัดโดยใช้
เคาน์เตอร์ก๊าซ (รูปที่. 2) ไฮโดรเจนและมีเทนผลิตถูก
กำหนดโดยแก๊ส chromatography (GC, Shimadzu 2014 ญี่ปุ่น)
พร้อมกับเครื่องตรวจจับการนำความร้อน (TCD) และ 2

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

ปริมาณก๊าซชีวภาพที่ผลิตในชุดการทดลองวัดโดยใช้วิธีเปียกเข็มแก้ว [ 15 ] ระดับเสียงก๊าซชีวภาพที่ผลิตในการทดลองเครื่องปฏิกรณ์ถูกวัดโดยใช้เคาน์เตอร์ก๊าซ ( รูปที่ 2 ) การผลิตไฮโดรเจนและมีเทนกำหนดโดยแก๊สโครมาโทกราฟี ( GC , Shimadzu 2014 , ประเทศญี่ปุ่น )ติดตั้งเครื่องตรวจจับการนำความร้อน ( TCD ) และ 2-mคอลัมน์บรรจุด้วยสแตนเลส unibeads C ( 60 / 80 mesh ) การ gctcdสภาพตาม saraphirom reungsang เหล่านั้นและ[ 16 ] ไฮโดรเจนและปริมาณก๊าซมีเทนในก๊าซชีวภาพคือคำนวณโดยใช้สมการสมดุลมวล [ 17 ] การ vfas คือวัดโดยวิธีโครมาโทกราฟีของเหลวสมรรถนะสูง ( HPLC )ตามวิธีการของ saraphirom และ reungsang [ 16 ] ที่ซีโอดี , VS , VSS ทำการวัด และตามวิธีการ apha feso4 $ 7h2o 25 , CuSO4 $ อิเล็ก 5 , cocl2 $ 0.125 และอิเล็ก , โซเดี่ยม6720 [ 15 ] จากนั้น , การผลิตไฮโดรเจนได้ดำเนินการใน 5.5 ลิตรเครื่องปฏิกรณ์ถังกวนแบบต่อเนื่อง ( ซีเอสทีอาร์ ) กับงานปริมาณ5 ลิตร cstrwas ดำเนินการที่เหมาะสม hrtof 4 ชั่วโมง ดังต่อไปนี้วิธีภัทร et al . [ 14 ] หลังจากถึงสถานะคงตัว , เปรี้ยวน้ำทิ้งออกจากโรงพยาบาลหลังจากการหมักใช้ไฮโดรเจนพื้นผิวสำหรับการเกิดก๊าซมีเทน คุณลักษณะทางเคมีของน้ำจะแสดงในตารางที่ 1 การ vfas หลักในน้ำเป็น hbu . ค่าซีโอดีของน้ำ คือ ตัวละ 450 บาท g-cod / Lและ phwas 5.72 . VS ของ effluentwas 23.43 กรัม / ลิตร เปรี้ยวน้ำที่ถูกเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียส ก่อนที่จะถูกใช้ในการทดลอง2.2 . การเตรียมเชื้อเม็ดจากระบบเครื่องปฏิกรณ์ของแป้งมันสำปะหลังบริษัทผู้ผลิตในภาคตะวันออกเฉียงเหนือของประเทศไทยใช้โดยตรงเป็นเม็ด 18 ชั่วโมงสำหรับการผลิตก๊าซมีเทนโดยไม่ต้องเสริมสมรรถนะ VS เริ่มต้นและ pH ของ 18 ชั่วโมงคือ26.54 กรัม / ลิตรและ 7.8 ตามลำดับ2.3 การเพิ่มประสิทธิภาพของคีย์พารามิเตอร์ที่มีผลต่อมีเทนการผลิตในชุดทดลองRSM กับ CCD ที่ถูกใช้เพื่อเพิ่มประสิทธิภาพของปัจจัยที่ส่งผลต่อการผลิตก๊าซมีเทนพร้อมกันและย่อยสลายทางชีวภาพ . ที่ตรวจสอบพารามิเตอร์ ได้แก่ อัตราส่วนของวัสดุชีวมวล( S / X ( , 1 ) ( 1 ) g-vssub / g-vsinoculum ) ผมสมาธิ ( mg / L ) ( x2 )และร่วมสมาธิ ( mg / L ) ( x3 ) การตอบสนองตัวแปรของฉันและย่อยสลายทางชีวภาพ ( ตารางที่ 2 ) วันของฉันถูกคำนวณโดยการหารการผลิตก๊าซมีเทน ( ml-ch4 / l ความเข้มข้นสารอาหาร ) โดย( g-vssub / L ) ย่อยสลายทางชีวภาพคำนวณได้ดังนี้ย่อยสลายทางชีวภาพ ( % ) ¼ [ อัตราการผลิตก๊าซมีเทนที่ STP ( ml-ch4 / g-cod )ทฤษฎีผลผลิตก๊าซมีเทน ( 350 ml-ch4 / g-cod ) 100 ( 1 )ผู้เชี่ยวชาญด้านการออกแบบ ( เวอร์ชั่น 7.0 stat ง่าย , อิงค์ , Minneapolis ,มินนิโซตา , USA ) เป็นเครื่องมือในการออกแบบการทดลอง และนางแบบกราฟแสดงผลการทดลองการผลิตก๊าซมีเทนที่ถูกดำเนินการใน 120 ml เซรั่มขวดละ 70 mlof การทำงานปริมาตร สื่อที่ใช้เพื่อผลิตก๊าซมีเทนมีน้ำเปรี้ยว และ นิ และร่วม เช่นเดียวกับเชื้อ . ตารางที่ 2 แสดง S / X และอัตราส่วนความเข้มข้นของ นิเครื่องที่ใช้ในการหมัก พีเอชเริ่มต้นของอาหารปรับค่าโดยใช้ 2 mol / L ของ HCl หรือ 2 mol / l ของ NaOH เซรั่มขวดถูกปกคลุมด้วยยาง และฝาอลูมิเนียมพวกเขาสามารถล้างด้วยก๊าซไนโตรเจน เพื่อให้แน่ใจว่าเงื่อนไขแบบไม่ใช้ออกซิเจน ทุกขวดถูกบ่มที่อุณหภูมิห้อง( 30 ± 2 C ) บนระบบปฏิบัติการ shaker 150 รอบต่อนาที ทุกการทดลองทำ 3 ซ้ำ .2.4 . การติดตั้งและการดำเนินงานเครื่องปฏิกรณ์แบบ UASBการ 30-l UASB เป็นเครื่องปฏิกรณ์ใช้ producemethane . อครีลิควัสดุที่ใช้ทำเครื่องปฏิกรณ์ได้ มันมีขนาด 14 ซม.( เส้นผ่าศูนย์กลาง ) โดย 165 ซม. ( ความสูง ) นี้มีขนาดใหญ่พอที่จะอนุญาตให้มี25-l ทำงานปริมาณและแยกหัวหน้าพื้นที่ รูปที่ 2 ให้ซอฟต์แวร์ของระบบเครื่องปฏิกรณ์ ระบบถังปฏิกรณ์ UASB เป็นเม็ดประกอบด้วย18 ชั่วโมงและกรดน้ำเป็นวัตถุดิบ เปรี้ยวในน้ำทิ้งจากกระบวนการผลิตก๊าซไฮโดรเจน มาใช้เป็นวัสดุเสริมและกับผมที่เหมาะสมและปริมาณที่ได้รับโคจากขั้นตอนการหมักชุด ( มาตรา 3 ) เครื่องปฏิกรณ์ถูกเริ่มต้นใช้ที่เหมาะสม / s x อัตราส่วนที่ได้จากชุดขั้นตอนการหมัก ( มาตรา 2.3 ) เป็นเวลา 24 ชั่วโมง ดำเนินการเครื่องปฏิกรณ์ที่อุณหภูมิ 30 ± 2 C ในโหมดต่อเนื่องที่ระยะเวลาเก็บกักสูงสุด 6 วัน ( เทียบเท่ากับอัตราภาระอินทรีย์ ( อัตรา )ของ 3.41 ± 0.35 กก. ซีโอดี / M3 D ) จนกว่าจะถึงสถานะคงตัว ที่สภาวะของแต่ละระยะเวลาเก็บกักน้ำได้ถึงเมื่อการเปลี่ยนแปลงในพื้นผิวและการใช้± MPR คือ 10% หลังจากถึงมั่นคงรัฐ , HRT ลดลง 5 , 4 , 3 และ 2 วัน เทียบเท่ากับมีอัตราของ 4.20 ± 0.14 5.25 ± 0.05 และ 7.05 ± 0.13 กก. ซีโอดี / m3 Dตามลำดับ ระยะเวลาที่เหมาะสมสอดคล้องกับก๊าซมีเทนสูงสุดรุ่น2.5 วิธีการเชิงวิเคราะห์ปริมาณก๊าซชีวภาพที่ผลิตในชุดการทดลองวัดโดยใช้วิธีเปียกเข็มแก้ว [ 15 ] ระดับเสียงก๊าซชีวภาพที่ผลิตในการทดลองเครื่องปฏิกรณ์ถูกวัดโดยใช้เคาน์เตอร์ก๊าซ ( รูปที่ 2 ) การผลิตไฮโดรเจนและมีเทนกำหนดโดยแก๊สโครมาโทกราฟี ( GC , Shimadzu 2014 , ประเทศญี่ปุ่น )ติดตั้งเครื่องตรวจจับการนำความร้อน ( TCD ) และ 2

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.