Extraction and partial purification

Extraction and partial purification of polyphenols and
anthocyanins
Polyphenols and anthocyanins were extracted from crushed
fresh peel and pulp tissues (20 g) of K. coccinea fruit, according to
the modified method of Zhang, Quantick, and Grigor (2000) and
Zheng, Wang, Wang, and Zheng (2003). The extraction was performed
twice at 20 C in a shaking incubator (ZHWY-200B, Zhicheng
Analytical Co., Shanghai, China). Extracting time was 30 min,
and extracting solvent was 100 ml of methanol/acetone/water
(3.5:3.5:3, v/v/v) containing 1% formic acid. All extracts were combined
and filtered through two layers of cheesecloth. The collected
filtrate was centrifuged for 15 min at 7000 g. The supernatant was
collected and evaporated under vacuum at 35–40 C to remove
methanol and acetone. Lipophilic pigments were then eliminated
from the aqueous phase by two successive extractions in a separatory
funnel with a twofold volume of petroleum ether. The aqueous
phase was collected and further extracted three times by ethyl
acetate (ethyl acetate: aqueous phase = 1:1, v/v) in the separatory
funnel. Three ethyl acetate phases were collected, evaporated and
dried under vacuum at 35 C. The residue was re-dissolved in 2 ml
of ethanol and used as a partially purified polyphenol sample. The
aqueous phase was also dried under vacuum at 55 C and used as
an anthocyanin sample. All samples were stored at 20 C prior to
further assays.
Determination of total phenolic content
Total phenolic content was determined using the Folin–Ciocalteau
method described by Singleton and Rossi (1965) with some
modifications. One millilitre of 10-fold diluted extracts by methanol/
acetone/water (3.5:3.5:3, v/v/v), containing 1% formic acid,
was thoroughly mixed with 1 ml of Folin–Ciocalteau reagent and
stood for 3 min at the room temperature. Then, 3 ml of sodium carbonate
(75 g/l) were added to the mixture, which was allowed to
stand for 2 h at the room temperature. Sample aliquots were filtered
through a 0.45 lm filter prior to the determination of total
phenolics using a UV–visible Spectrophotometer (UV-1700, Shimadzu,
Kyoto, Japan), monitoring at 760 nm. Total phenolic content
was standardised against gallic acid and expressed as microgrammes
of gallic acid equivalents (GAE) per millilitre.
2.5. Determination of total anthocyanin content
Total anthocyanin content of K. coccinea peel extracts was measured
using the pH differential method described by Wrolstad and
Giusti (2001) and Elisia, Hu, Popovich, and Kitts (2007) with minor
modifications. The crude anthocyanin extracts were dissolved in
potassium chloride buffer (KCl, 0.025 M, pH 1.0) and sodium acetate
(CH3CO2Na  3H2O, 0.4 M, pH 4.5) with a pre-determined dilution
factor. The absorbances of measured samples were read at 520
and 700 nm against a blank cell containing deionized water (dd
H2O). The absorbance (A) of the diluted sample was then calculated
as follows: A = (Akvis-max  A700nm) pH 1.0  (Akvis-max  A700nm) pH
4.5. The monomeric anthocyanin pigment concentration in the original
sample was calculated according to the following formula:
Anthocyanin content ðmg=lÞ ¼
A MW DF  1000
e  1
in which cyanidin-3-glucoside molecular weight (MW = 449.2), the
dilution factor or dilution multiple (DF = 50) and the molar absorptivity
constant (e = 29,600) were used.
2.6. Effects of pH values and heat on anthocyanin properties
Anthocyanin solutions at pH 1, 4, 7, 10 and 12 were prepared
using 0.1 M HCl and 0.1 M NaOH at 25 C. All samples were spectrophotometrically
scanned from 400 to 700 nm. By comparing
variations of spectrum shapes, absorption peaks, colours and maximum
absorbances within 3 min, the effects of different pH values
on K. coccinea anthocyanins were determined.
Thermal stability of anthocyanins was analyzed according to
the modified method of Dyrby, Westergaard, and Stapelfeldt
(2001). Five millilitres of aqueous anthocyanin solution were
respectively sealed into four tubes that were well capped to avoid
evaporation. These tubes were placed in thermostatic water baths
operating at 20, 40, 60 and 80 C. One anthocyanin sample at each
temperature was removed after 1, 2 and 3 h, and then rapidly
cooled in ice-water. The thermal degradation of anthocyanin was
spectrophotometrically measured at 520 nm. The residual
amounts of anthocyanin (%) = (A1, 2, or 3h/A0h)  100, where A0h
was the absorbance of anthocyanin sample without undergoing
heating treatment, and A1, 2, or 3h was the absorbance of anthocyanin
sample after heating for 1, 2 and 3 h at different temperatures.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

สกัดและทำให้บริสุทธิ์บางส่วนของโพลีฟีน และanthocyaninsแยก anthocyanins และโพลีฟีนจากบดผลไม้สดเปลือกและเยื่อเนื้อเยื่อ (20 กรัม) ของคุณเข็ม การตามไปวิธีการแก้ไขของเตียว Quantick และ Grigor (2000) และเจิ้ง วัง วัง และเจิ้ง (2003) ทำการสกัดครั้งที่ 20 C ใน incubator งก ๆ (ZHWY-200B, Zhichengวิเคราะห์ Co. เซี่ยงไฮ้ ประเทศจีน) แยกเวลาได้ 30 นาทีและแยกตัวทำละลาย เมทานอลอะซิโตน/น้ำ 100 มล(3.5:3.5:3, v/v/v) มี 1% กรด สารสกัดจากทั้งหมดที่ถูกรวมและกรองผ่านชั้นที่สองของ cheesecloth การรวบรวมสารกรองมี centrifuged สำหรับ 15 นาทีที่ 7000 g Supernatant ถูกรวบรวม และหายไปภายใต้สุญญากาศที่ 35 – 40 C เอาเมทานอลและอะซีโตน สี lipophilic ถูกตัดออกแล้วจากเฟสอควีโดยสกัดต่อสองในที่ separatoryกรวย มีปริมาตรเป็นสองเท่าของปิโตรเลียมอีเทอร์ การอควีขั้นตอนการรวบรวม และเพิ่มเติม แยกสามครั้ง โดยเอทิลacetate (เอทิล acetate: ระยะอควี = 1:1, v/v) ในการ separatoryกรวย ระยะ acetate เอทิลสามได้รวบรวม ที่หายไป และอบแห้งภายใต้สุญญากาศที่ 35 เซลเซียส สารตกค้างถูกละลายอีกครั้งใน 2 mlของเอทานอล และใช้เป็นตัวอย่าง polyphenol บริสุทธิ์บางส่วน ที่ระยะอควียังแห้งภายใต้สุญญากาศที่ 55 C และใช้เป็นตัวอย่างมีโฟเลทสูงขึ้น ตัวอย่างทั้งหมดถูกเก็บไว้ที่ 20 C ก่อนเพิ่มเติม assaysกำหนดเนื้อหารวมฟีนอกำหนดเนื้อหารวมฟีนอใช้ Folin-Ciocalteauวิธีอธิบายกับทางเดี่ยว Rossi (1965)ปรับเปลี่ยน Millilitre หนึ่งของสารสกัด 10-fold แตกออกโดยเมทานอล /น้ำอะซิโตน (3.5:3.5:3, v/v/v), ประกอบด้วยกรด 1%ไม่ต้องผสมกับ 1 ml ของรีเอเจนต์ Folin-Ciocalteau และยืนใน 3 นาทีที่อุณหภูมิห้อง โซเดียมคาร์บอเนตแล้ว 3 ml(75 g/l) ได้เพิ่มส่วนผสม ซึ่งได้รับอนุญาตให้ขาตั้งสำหรับ h 2 ที่อุณหภูมิห้อง ตัวอย่าง aliquots ถูกกรองผ่านตัว lm 0.45 ก่อนกำหนดรวมphenolics ที่ใช้การมองเห็น – UV เครื่องทดสอบกรดด่าง (UV-1700, Shimadzuเกียวโต ญี่ปุ่น), การตรวจสอบที่ 760 nm เนื้อหารวมฟีนอถูกแบบกับ gallic กรด และแสดงเป็น microgrammesของเทียบเท่ากรด gallic (GAE) ต่อ millilitre2.5 การกำหนดเนื้อหาทั้งหมดมีโฟเลทสูงมีวัดเนื้อหามีโฟเลทสูงรวมสารสกัดจากเปลือกเข็มคุณใช้วิธีการแตกต่าง pH โดย Wrolstad และGiusti (2001) และ Elisia หู Popovich และคิตส์ (2007) กับวิชารองปรับเปลี่ยน สารสกัดจากน้ำมันดิบมีโฟเลทสูงถูกละลายในบัฟเฟอร์ของโพแทสเซียมคลอไรด์ (KCl, 0.025 M, pH 1.0) และโซเดียม acetate(CH3CO2Na 3H2O, 0.4 M, pH 4.5) ด้วยการเจือจางก่อนกำหนดปัจจัยการ Absorbances ตัวอย่างวัดได้อ่านที่ 520และ 700 nm เทียบกับเซลล์ที่ประกอบด้วยน้ำ deionized (ddH2O) แล้วคำนวณ absorbance (A) ของตัวอย่างแตกออกดังนี้: (สูงสุด Akvis A700nm) pH pH 1.0 = (สูงสุด Akvis A700nm)4.5. มีโฟเลทสูง monomeric ผงความเข้มข้นในต้นฉบับตัวอย่างคำนวณตามสูตรต่อไปนี้:มีโฟเลทสูงเนื้อหา ðmg = lÞ ¼MW DF 1000อี 1น้ำหนักโมเลกุลที่ cyanidin 3 glucoside (MW = 449.2), การสัดส่วนการเจือจางหรือเจือจางหลาย (DF = 50) และ absorptivity สบคง (e = 29,600) ก็2.6. ผลของความร้อนและ pH ค่าคุณสมบัติมีโฟเลทสูงโซลูชั่นที่มีโฟเลทสูง pH 1, 4, 7, 10 และ 12 ที่ได้เตรียมไว้ใช้ 0.1 M HCl 0.1 M NaOH ที่ 25 c ตัวอย่างทั้งหมดถูก spectrophotometricallyสแกนจาก 400 ถึง 700 นาโนเมตร โดยการเปรียบเทียบความแตกต่างของรูปร่างสเปกตรัม ยอดดูดซึม สี และสูงสุดabsorbances ภายใน 3 นาที ผลกระทบของค่า pH ที่แตกต่างกันมีกำหนดเข็ม anthocyanins ในคุณความมั่นคงความร้อนของ anthocyanins ถูกวิเคราะห์ตามวิธีการแก้ไข ของ Dyrby, Westergaard, Stapelfeldt(2001) ถูก millilitres ห้าของโซลูชันที่มีโฟเลทสูงอควีปิดผนึกลงในหลอดที่ 4 ที่ได้ดีปรบมือเพื่อหลีกเลี่ยงตามลำดับระเหย ท่อเหล่านี้ไว้ในน้ำ thermostatic บาทปฏิบัติที่ 20, 40, 60 และ 80 ซี มีโฟเลทสูงตัวอย่างที่หนึ่งที่แต่ละอุณหภูมิที่ออกหลัง 1, 2 และ 3 h และรวดเร็วระบายความร้อนด้วยน้ำแข็ง ถูกลดความร้อนของมีโฟเลทสูงspectrophotometrically วัดที่ 520 nm ส่วนที่เหลือจากการจำนวนมีโฟเลทสูง (%) = (A1, 2 หรือ 3h/A0h) 100 ที่ A0hมี absorbance ของตัวอย่างมีโฟเลทสูงโดยไม่ต้องผ่าตัดความร้อนบำบัด และ A1, 2 หรือ 3h ถูก absorbance ของมีโฟเลทสูงตัวอย่างหลังจากทำความร้อนสำหรับ 1, 2 และ 3 h ที่อุณหภูมิแตกต่างกัน

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การสกัดและการทำให้บริสุทธิ์บางส่วนของโพลีฟีและ
anthocyanins
โพลีฟีนและ anthocyanins
ถูกบดสกัดจากเปลือกสดและเนื้อเยื่อเยื่อกระดาษ(20 กรัม)
ผลไม้เคชิเนียตามวิธีการแก้ไขของจางQuantick และ Grigor (2000)
และเจิ้งวังวังและเจิ้งเหอ (2003) สกัดได้ดำเนินการเป็นครั้งที่สองที่ 20 องศาเซลเซียสในศูนย์บ่มเพาะสั่น (ZHWY-200B, Zhicheng วิเคราะห์ จำกัด , เซี่ยงไฮ้, จีน) เวลาสกัด 30 นาทีและการสกัดด้วยตัวทำละลายเป็น100 มล. ของเมทานอล / อะซิโตน / น้ำ(3.5: 3.5: 3, v / v / v) มี 1% กรด สารสกัดจากทั้งหมดมารวมกันและกรองผ่านสองชั้นของผ้า ที่เก็บรวบรวมกรองถูกปั่นเป็นเวลา 15 นาทีที่ 7,000 กรัม สารละลายที่ถูกเก็บรวบรวมและระเหยภายใต้สุญญากาศที่ 35-40 องศาเซลเซียสในการลบเมทานอลและอะซีโตน เม็ดสี lipophilic แล้วถูกตัดออกจากเฟสน้ำสกัดสองเนื่องในseparatory ช่องทางที่มีปริมาณสองเท่าของอีเธอร์ปิโตรเลียม น้ำขั้นตอนที่ถูกเก็บรวบรวมและสกัดอีกสามครั้งโดยเอทิลอะซิเตท(เอทิลอะซิเต: เฟสน้ำ = 1: 1, v / v) ใน separatory ช่องทาง สามขั้นตอนเอทิลอะซิเตถูกเก็บรวบรวมและระเหยแห้งภายใต้สูญญากาศที่ 35 องศาเซลเซียส ที่เหลือเป็นอีกครั้งที่ละลายใน 2 มิลลิลิตรของเอทานอลและนำมาใช้เป็นตัวอย่างโพลีฟีนบริสุทธิ์บางส่วน เฟสน้ำแห้งภายใต้สูญญากาศที่ 55 องศาเซลเซียสและใช้เป็นตัวอย่างanthocyanin ตัวอย่างทั้งหมดถูกเก็บไว้ที่ 20 องศาเซลเซียสก่อนที่จะมีการวิเคราะห์ต่อไป. หาปริมาณฟีนอลรวมรวมเนื้อหาฟีนอลถูกกำหนดโดยใช้ Folin-Ciocalteau วิธีการอธิบายโดยซิงเกิลและรอสซี (1965) กับการปรับเปลี่ยน หนึ่งมิลลิลิตรของสารสกัดเจือจาง 10 เท่าโดยเมทานอล / อะซิโตน / น้ำ (3.5: 3.5: 3, v / v / v) มี 1% กรดฟอร์มิได้รับการผสมกับ1 มลสาร Folin-Ciocalteau และยืนเป็นเวลา3 นาที ที่อุณหภูมิห้อง จากนั้น 3 มล. โซเดียมคาร์บอเนต(75 g / l) ได้รับการเพิ่มส่วนผสมที่ได้รับอนุญาตให้ยืนเป็นเวลา2 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง aliquots ตัวอย่างถูกกรองผ่านตัวกรองLM 0.45 ก่อนที่จะมีการกำหนดรวมฟีนอลโดยใช้Spectrophotometer UV-มองเห็นได้ (UV-1700, Shimadzu, เกียวโตญี่ปุ่น), การตรวจสอบที่ 760 นาโนเมตร เนื้อหาฟีนอลรวมเป็นมาตรฐานกับฝรั่งเศสกรดและแสดงความเป็น microgrammes เทียบเท่ากรดฝรั่งเศส (GAE) ต่อมิลลิลิตร. 2.5 การกำหนดรวม anthocyanin เนื้อหาเนื้อหาanthocyanin รวมเคชิเนียสารสกัดจากเปลือกวัดโดยใช้วิธีการที่แตกต่างกันค่าpH อธิบายโดย Wrolstad และGiusti (2001) และ Elisia หู, Popovich และคิตส์ (2007) กับผู้เยาว์การปรับเปลี่ยน สารสกัด anthocyanin น้ำมันดิบถูกกลืนหายไปในบัฟเฟอร์โพแทสเซียมคลอไรด์(KCl, 0.025 M ค่า pH 1.0) และโซเดียมอะซิเตท(CH3CO2Na? 3H2O 0.4 M ค่า pH 4.5) ที่มีการลดสัดส่วนที่กำหนดไว้ล่วงหน้าปัจจัย absorbances ตัวอย่างวัดถูกอ่านที่ 520 และ 700 นาโนเมตรกับเซลล์ว่างมีน้ำปราศจากไอออน (ววH2O) การดูดกลืนแสง (A) ของกลุ่มตัวอย่างปรับลดที่คำนวณได้แล้วดังนี้A = (? AKVIS สูงสุด A700nm) ค่า pH 1.0? (AKVIS สูงสุด? A700nm) ค่า pH 4.5 ความเข้มข้นของเม็ดสี anthocyanin monomeric เดิมตัวอย่างที่คำนวณตามสูตรการคำนวณดังนี้Anthocyanin เนื้อหา DMG = LTH ¼เมกะวัตต์? DF? 1000 จ? 1 ที่ cyanidin-3-glucoside น้ำหนักโมเลกุล (MW = 449.2) ซึ่งเป็นปัจจัยที่ทำให้เจือจางหรือเจือจางหลายๆ (DF = 50) และกรามดูดกลืนแสงที่คงที่(จ = 29,600) ถูกนำมาใช้. 2.6 ผลของค่าความเป็นกรดด่างและความร้อนต่อสมบัติ anthocyanin โซลูชั่น Anthocyanin ที่ pH 1, 4, 7, 10 และ 12 ได้จัดทำขึ้นโดยใช้0.1 M HCl 0.1 M NaOH ที่ 25 องศาเซลเซียส ตัวอย่างทั้งหมดถูก spectrophotometrically สแกน 400-700 นาโนเมตร โดยการเปรียบเทียบการเปลี่ยนแปลงของรูปทรงสเปกตรัมยอดการดูดซึมสีและสูงสุดabsorbances ภายใน 3 นาที, ผลกระทบของค่าพีเอชที่แตกต่างกันในเคชิเนียanthocyanins ได้รับการพิจารณา. ความมั่นคงทางความร้อนของ anthocyanins วิเคราะห์ตามวิธีการแก้ไขของDyrby, เวสเตอร์และ Stapelfeldt (2001) ห้ามิลลิลิตรของการแก้ปัญหา anthocyanin น้ำถูกปิดผนึกตามลำดับเป็นสี่หลอดที่ถูกปกคลุมดีเพื่อหลีกเลี่ยงการระเหย หลอดเหล่านี้ถูกวางไว้ในห้องอาบน้ำอุณหภูมิน้ำในการดำเนินงานที่ 20, 40, 60 และ 80 องศาเซลเซียส หนึ่งตัวอย่าง anthocyanin ในแต่ละอุณหภูมิจะถูกลบออกหลังจากวันที่1, 2 และ 3 ชั่วโมงและจากนั้นอย่างรวดเร็วระบายความร้อนด้วยน้ำแข็งในน้ำ การย่อยสลายทางความร้อนของ anthocyanin ถูกวัดspectrophotometrically ที่ 520 นาโนเมตร ที่เหลือจำนวน anthocyanin (%) = (A1, 2 หรือ 3h / A0H)? 100 ที่ A0H คือการดูดกลืนแสงของกลุ่มตัวอย่าง anthocyanin โดยไม่ต้องได้รับการรักษาความร้อนและA1, 2 หรือ 3h คือการดูดกลืนแสงของ anthocyanin ตัวอย่างหลังจากที่ความร้อนเป็นเวลา 1, 2 และ 3 ชั่วโมงที่อุณหภูมิที่แตกต่างกัน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การสกัดและการทำให้บริสุทธิ์บางส่วนของโพลีฟีนอลและแอนโทไซยานิน

และ แอนโทไซยานินถูกสกัดจากเปลือกสด และเนื้อเยื่อบด
( 20 g ) K . ศึกษาผล ตามแบบวิธีของ
Zhang , คว ติค และ grigor ( 2000 ) และ
เจิ้ง วัง วัง และ เจิ้ง ( 2003 ) การสกัดการ
สองครั้งที่ 20  C ในเขย่าเครื่องฟักไข่ ( zhwy-200b Zhicheng
วิเคราะห์ , บริษัทเซี่ยงไฮ้ , จีน ) แยกเวลา 30 นาที
และการสกัดตัวทําละลาย 100 มิลลิลิตรของน้ำเมทานอลอะซีโตน /
( 3.5:3.5:3 , V / V / V ) ที่ประกอบด้วย 1% กรด . สารสกัดทั้งหมดถูกรวม
และกรองผ่านสองชั้นของผ้า . รวบรวม
กรองเป็นระดับ 15 นาทีที่ 7000 กรัมสูงเป็น
รวบรวมและระเหยภายใต้สุญญากาศที่ 35 – 40  C เพื่อลบ
อลและอะซิโตนสีลิโพฟิลิกแล้วตัดออก
จากเฟส 2 ต่อเนื่องในสารละลายปริมาตรกรวยตัว
ที่มีปริมาณสองเท่าของปิโตรเลียมอีเทอร์ . ระยะน้ำ
รวบรวมและเพิ่มเติมสารสกัดเอธิลอะซิเตต (
3 ครั้งด้วยเอทิลอะซิเตท : เฟสน้ำ = 1 : 1 v / v ) ในช่องทางตัว

สามเอทิลอะซิเตท ขั้นตอนการเก็บรวบรวม , ระเหยแห้งภายใต้สูญญากาศที่อุณหภูมิ 35 และ
 Cซึ่งเป็นอีกครั้งที่ละลายใน 2 ml
และเอทานอลใช้เป็นบริสุทธิ์บางส่วนปริมาณตัวอย่าง
เฟสน้ำยังแห้งภายใต้สูญญากาศที่ 55 องศาเซลเซียส และใช้เป็น 
มีแอนโธไซยานินตัวอย่าง ตัวอย่างทั้งหมดจะถูกเก็บไว้ที่  20  C ก่อน

พยายามต่อไป วิเคราะห์ปริมาณสารฟีนอลิกทั้งหมด
เนื้อหาเนื้อหาตั้งใจใช้ folin – ciocalteau
วิธีการอธิบาย โดยโรงพยาบาล รอสซี่ ( 1965 ) กับบาง
การปรับเปลี่ยน 1 มิลลิลิตรของ 10 เท่า สารสกัดเมทานอลอะซีโตนเจือจางโดยน้ำ ( 3.5:3.5:3 /
/ V / V / V ) ที่ประกอบด้วย 1% กรด ,
มันละเอียดผสมกับ 1 มิลลิลิตร folin – ciocalteau รีเอเจนต์และ
ยืนสำหรับ 3 นาทีที่อุณหภูมิห้อง . งั้น , 3 กรัม โซเดียม คาร์บอเนต
( 75 กรัม / ลิตร ) เพิ่มการผสม ซึ่งได้รับอนุญาตให้
ยืนสำหรับ 2 ชั่วโมง ที่อุณหภูมิห้อง . ตัวอย่างเฉยๆถูกกรองผ่านตัวกรอง
0.45 LM ก่อนการหาปริมาณฟีนอลิกทั้งหมด
ใช้– UV Spectrophotometer ( Shimadzu ได้ uv-1700
, , เกียวโต , ญี่ปุ่น ) , การตรวจสอบที่ 760 นาโนเมตร รวมเนื้อหาที่เป็นมาตรฐานกับ
ฟีนอลเพิ่มขึ้นและแสดงเป็น microgrammes
ของเพิ่มขึ้นเทียบเท่า ( เก ) ต่อมิลลิลิตร .
2.5การหาปริมาณแอนโธไซยานิน Anthocyanin รวม
K . ศึกษาเนื้อหาสารสกัดเปลือกวัดโดยใช้วิธีดิฟ
ออธิบายโดย wrolstad และ
giusti ( 2001 ) และ elisia Hu , โพโพวิช และ คิตส์ ( 2007 ) ที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย

สกัดแอนโธไซยานิน สารสกัดละลายโพแทสเซียมคลอไรด์ ( KCl ใน
บัฟเฟอร์ , 0.025 m พีเอช 1.0 ) และโซเดียมอะซิเตต
( ch3co2na  3h2o 0.4 เมตรพีเอช 4.5 ) กับแนวทางการเจือจาง
ปัจจัย การ absorbances ตัวอย่างวัดได้อ่านที่ 520
และ 700 nm กับเซลล์ว่างที่มีคล้ายเนื้อเยื่อประสานน้ำ ( dd
H2O ) น ( ) ของตัวอย่างที่เจือจางแล้วคำนวณ
ดังนี้ : = ( AKVIS แม็กซ์  a700nm ) พีเอช 1.0  ( AKVIS แม็กซ์  a700nm ) pH
4.5 . การเกิดเม็ดสีแอนโธไซยานินพบในต้นฉบับ
ตัวอย่างคำนวณตามสูตรต่อไปนี้ :
แอนโธไซยานินปริมาณð = mg L Þ¼
เป็น  MW  df  1000
e
 1 ที่น้ำหนักโมเลกุล ( MW cyanidin-3-glucoside = 449.2 )
( ปัจจัยหรือเจือจางหลาย ( df = 50 ) และค่าการดูดกลืน
( E = 29600 คงที่ ) มาใช้
2.6 ผลของความร้อนต่อคุณสมบัติของค่า pH และแอนโทไซยานิน Anthocyanin
โซลูชั่นที่ pH 1 , 4 , 7 ,