2.2. Blood sampling and analytical

2.2. Blood sampling and analytical methods
At the end of the experiment, all fish per tank were anaesthetized using
2-phenoxyethanol (0.0008 ml:g per l) and immobilized within 2 min. All fish groups
were handled in the same way. Blood samples were taken individually from both
the heart and ventral aorta by heparinized syringes. Blood from the heart was
immediately used for haematocrit determination, as well as for electrolytes (Na,
Cl and K), pCO2 and pH measurements (288-Blood Gas System, Ciba-Corning).
Blood from the ventral aorta was used for plasma glucose, cholesterol, triglycerides,
total lipids (enzymatic colorimetric methods, Elitech or BioMe´rieux) and osmolality
(cryoscopic osmometer, Gonatec Osmomat 030) determinations. Plasma cortisollevels were measured by radioimmunoassay (RIA) using a commercially available
kit (Coat-A-Count Cortisol, DPC) which has been previously validated for fish
(Ainsworth et al., 1985). In the present study, the sensitivity of the assay was 0.2
mg:dl and intra- and interassay coefficient of variation was 3.2 and 6.5%,
respectively.
Liver total lipids (Folch et al., 1957), hepatosomatic index and liver glycogen
(Montgomery, 1957) were also determined. Conventional techniques were used for
specific growth rate (SGR), food conversion ratio (FCR) and condition factor
determinations (Papoutsoglou and Tziha, 1996). In addition, all fish of each group
were minced together, without viscera, lyophilized and used for proximate carcass
analysis (six replicates for each group) according to Kjeldahl and Soxhlet methods.
Comparisons of means were performed by one-way analysis of variance
(ANOVA) and Duncan’s multiple range test (Sokal and Rohlf, 1995). Differences
were considered significant at PB0.05. Where appropriate, data were log transformed
in order to obtain homogeneity of variance. Untransformed means9
S.E.M. are given. The data obtained for the replicate groups of each color were
pooled, after testing the significance of differences between them in all parameters
examined. For the parameters not individually estimated (SGR, FCR, carcass
composition) the duplicated mean is presented.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.2
การเก็บตัวอย่างเลือดและวิธีการวิเคราะห์ในตอนท้ายของการทดลองปลาทั้งหมดต่อถังอสัญญีใช้
2 Phenoxyethanol (0.0008 มล: กรัมต่อลิตร) และตรึงภายใน 2 นาที
กลุ่มปลาทั้งหมดถูกจัดการในลักษณะเดียวกัน ตัวอย่างเลือดที่ถูกนำมาเป็นรายบุคคลจากทั้งหัวใจและหลอดเลือดแดงใหญ่หน้าท้องโดยเข็มฉีดยา heparinized
เลือดจากหัวใจได้รับการใช้งานได้ทันทีสำหรับการกำหนดฮี, เช่นเดียวกับอิเล็กโทรไล (นา ?, Cl? และ K?) pCO2 และการวัดค่า pH (288 เลือดระบบก๊าซ Ciba-Corning). เลือดจากหลอดเลือดแดงใหญ่หน้าท้องถูกนำมาใช้ สำหรับน้ำตาลในเลือดคอเลสเตอรอลไตรกลีเซอไรด์ไขมันรวม(วิธีการสีเอนไซม์ Elitech หรือ BioMe'rieux) และ osmolality (cryoscopic Osmometer, Gonatec Osmomat 030) หาความ cortisollevels พลาสม่าถูกวัดโดย radioimmunoassay (RIA) โดยใช้ในเชิงพาณิชย์ชุด (เสื้อ-A-จำนวน Cortisol, DPC) ซึ่งได้รับการตรวจสอบก่อนหน้านี้สำหรับปลา (Ainsworth et al., 1985) ในการศึกษาปัจจุบัน, ความไวของการทดสอบคือ 0.2 มิลลิกรัม: ค่าสัมประสิทธิ์ดลและ intra- และกันมีการเปลี่ยนแปลงเป็น 3.2 และ 6.5%. ตามลำดับ(. Folch, et ​​al, 1957) ไขมันในตับรวมดัชนีตับและไกลโคเจนที่ตับ(กอเมอรี 1957) นอกจากนี้ยังได้รับการพิจารณา เทคนิคธรรมดาถูกนำมาใช้สำหรับอัตราการเจริญเติบโตจำเพาะ (SGR) อัตราการเปลี่ยนอาหาร (FCR) และปัจจัยสภาพหาความ(Papoutsoglou และ Tziha, 1996) นอกจากนี้ปลาของแต่ละกลุ่มทั้งหมดถูกสับด้วยกันโดยไม่ต้องอวัยวะภายในแห้งและใช้สำหรับซากใกล้เคียงวิเคราะห์(หกซ้ำสำหรับแต่ละกลุ่ม) ตาม Kjeldahl และวิธีการวิธีการสกัดแบบ. การเปรียบเทียบวิธีการดำเนินการโดยการวิเคราะห์ทางเดียวความแปรปรวน(ANOVA ) และดันแคนทดสอบช่วงหลาย (Sokal และ Rohlf, 1995) ความแตกต่างได้รับการพิจารณาอย่างมีนัยสำคัญที่ PB0.05 ที่เหมาะสมข้อมูลเข้าสู่ระบบเปลี่ยนเพื่อให้ได้ความสม่ำเสมอของความแปรปรวน means9 Untransformed S.EM จะได้รับ ข้อมูลที่ได้ในการทำซ้ำของกลุ่มแต่ละสีถูกรวบรวมหลังจากการทดสอบอย่างมีนัยสำคัญของความแตกต่างระหว่างพวกเขาในทุกพารามิเตอร์การตรวจสอบ สำหรับพารามิเตอร์ที่ไม่คาดรายบุคคล (SGR อัตราแลกเนื้อซากองค์ประกอบ) หมายถึงการทำซ้ำที่จะนำเสนอ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.2 . ตัวอย่างเลือด และวิธีการวิเคราะห์
เมื่อสิ้นสุดการทดลองทั้งหมดปลาต่อถังให้ยาสลบโดยใช้
2-phenoxyethanol ( ยว ml : กรัมต่อลิตร ) และตรึง ภายใน 2 นาที ทุกกลุ่มปลา
ถูกจัดการในลักษณะเดียวกัน ตัวอย่างเลือดถูกแยกจากทั้ง หัวใจ และหลอดเลือดแดงใหญ่
) โดยกลุ่มเข็มฉีดยา เลือดหัวใจ
ใช้งานได้ทันทีสำหรับฮีมาโตคริทกำหนด รวมทั้งเกลือแร่ ( na 
 และ K , Cl  ) pco2 และ pH วัด ( 288 ระบบเลือด Ciba คอร์น ) .
เลือดจากเส้นเลือดเส้นประสาทใช้พลาสมากลูโคสคอเลสเตอรอล , ไตรกลีเซอไรด์สูง ไขมันทั้งหมด ( วิธี Colorimetric
elitech หรือระบบนิเวศ , เอนไซม์ ใหม่ rieux ) และค่าออสโมลาลิตี้
( ไครโอสโกปิกออสโมมิเตอร์ gonatec osmomat , 030 ) หา .พลาสมา cortisollevels วัดจาก radioimmunoassay ( RIA ) โดยใช้ชุดในเชิงพาณิชย์
( coat-a-count cortisol , DPC ) ซึ่งได้รับการไว้ก่อนหน้านี้จำนวนปลา
( ไอน์สเวิร์ธ et al . , 1985 ) ในการศึกษาความไวของการทดสอบคือ 0.2 มิลลิกรัมต่อเดซิลิตรและ
: ภายในและค่าสัมประสิทธิ์การแปรผันเท่ากับ 3.2 interassay 6.5 %

รวมตามลำดับ ตับไขมัน ( ฟอล์ช et al . , 1957 )ดัชนี hepatosomatic
ไกลโคเจนและตับ ( Montgomery , 1957 ) ยังได้กำหนดไว้ เทคนิคที่ใช้เป็นปกติ
อัตราการเจริญเติบโตจำเพาะ ( SGR ) , อัตราส่วนการแปลงอาหาร ( FCR ) และหาปัจจัย
( papoutsoglou เงื่อนไข และ tziha , 1996 ) นอกจากนี้ ปลาทั้งหมดของแต่ละกลุ่ม
ถูกสับกัน ไม่มีพุงแห้งและใช้รอบซาก