The Minimal Inhibitory Concentratio

The Minimal Inhibitory Concentration (MIC)
The MIC intervals were expressed in percentage and in mg/L of the chemical agent in contact with the bacteria tested, and are shown in Table 3.

1. Ethyl alcohol (70%, pH= 7.2)
Regarding the exposure to 70% ethanol, P. aeruginosa showed the greatest MIC at 17.5%, higher than the MIC of 8.75% which was found for B. subtilis and B. stearothermophilus, obtained by Vessoni Penna et al.[7], emphasizing the importance in the validation of the water purification system for the identification of P. aeruginosa.

Trautmann et al.[9] did not obtain acceptable long-term results by using chlorination and filtration to eliminate the strains of P. aeruginosa from every water tap in the ICU. However, the authors noticed that strains of P. aeruginosa were not regularly isolated from hospital personnel, whose hands were disinfected with alcohol (ethanol 70%) before and after contact with patients.

2. Sodium hypochlorite (NaOCl, 0.5%; pH11.9)
All the bacteria studied showed the same level of resistance, i.e. a MIC of 0.25% (2500 mg/L). According to Vessoni Penna et al. [7], E. coli presented half a MIC of 0.156% (1560 mg/L) in chlorinated compounds, making it clear that the monitoring of chlorinated waters for P. aeruginosa is necessary and mainly critical for warm potable waters, including the cleaning of the water circuits, hydrotherapy, baths, and pools. The P. aeruginosa's resistance to chlorine releasing agents (CRAs) is well reported. Wirtanen et al.[10] studied the effects of four commercial disinfectants: (100% alcohol-based) containing isopropanol, a peroxide-base containing hydrogen peroxide (0.5–2.0%) and peracetic acid in formulation, and a chlorine-base containing sodium hypochlorite (0.3–0.8%, pH>9.0). The authors found that the peroxide-based disinfectant was the most efficient on biofilm bacteria, and they confirmed that prolonged treatment with the chlorine-base disinfectant was especially efficient on Pseudomonas biofilms.

Therefore, there is an urgent need for seeking the range of CRAs and the adequate time contact that would not induce resistance in bacteria, which inhibits biofilm formation and adherence to the porous apparatus of the system. However, the disinfectants should be chosen according to the operation in process, considering the interference of organic substances in the disinfectant's activity and effectiveness.

3. Association of peracetic acid (PAA, 0.45%) plus hydrogen peroxide (H2O2 2.2%). Solution at 1% (PAA+ H2O2; pH = 2.3)
For a solution of peracetic acid (0.45%) + hydrogen peroxide (2.2%), P. aeruginosa, P. picketti, F. aureum, and A. lowffi presented the highest MIC range from 0.11% to 0.55%, an interval of which was shown to be two, four and eight times greater than that for P. diminuta (MIC = 0.056% & 0.275%), P. alcaligenes (MIC = 0.028% & 0.137%) and P. fluorescens (MIC = 0.014% & 0.068%), respectively.

Considering that the set conditions for MIC were kept constant, independent of the bacteria tested, according to Vessoni Penna et al.[7], when vegetative cells such as Acinetobacter calcoaceticus, Enterobacter cloacae, Escherichia coli, Serratia marcescens, and Staphylococcus aureus were submitted to a H2O2 solution at 4.0%, Escherichia coli showed the greatest resistance among them with a MIC of 0.25%, which is half that obtained for P. aeruginosa. When the same bacteria were tested against peracetic acid, E. coli showed a MIC of 0.23%, which is twice as much as that for P. aeruginosa in a mixture of peracetic acid + hydrogen peroxide, showing that P. aeruginosa and E. coli should both be required in the monitoring of treated waters. The solution of PAA + H2O2 at 1% is applied to the cleaning of the reverse osmosis membranes and the continuous deionization apparatus for three hours, so as to obtain purified water, and 18 hours for WFI that will be used to prepare parenteral solutions, including peritoneal dialysis solutions.

4. Sodium Hydroxide (0.4%; pH = 12.8)
P. fluorescens and P. alcaligenes were the bacteria which were the least resistant to sodium hydroxide, exhibiting a MIC of 0.15%, in relation to the resistance shown by the other bacteria (MIC >0.4%). The principal activity of this chemical compound is the pH adjustment of acidic water in the reverse osmosis (point 06) and the continuous deionization (point 07), with some expected sanitation activity.

5. Citric Acid (0.5%; pH = 2.5)
The bacterium least resistant to citric acid solution was A. lowffi (0.06%= 600 mg/L). The most resistant was P. picketti (0.5%= 5000 mg/L); the remainder showed a MIC of 0.25% = 2500 mg/L. This chemical agent is used in the reverse osmosis (point 06) in adjusting the pH of cleaning water before disinfection with a 1% solution of PAA + H2O2.

6. Hydrochloric Acid (0.3%; pH = 0.3)
The bacteria least resistant were A. lowffi (MIC 0.039% = 390 mg/L) and P. fluorescens (MIC 0.078% = 780 mg/L); the remainder had a MIC of 0.156% (1560 mg/L).

It is noteworthy to mention that P. aeruginosa was not affected by the chemical adjuvant compounds such as NaOH (0.4%), citric acid (0.5%) and HCl (0.3%) in the concentration applied to the units of the purification system. However, these chemical solutions are expected to show some disinfecting activity, which is not demanding.

7. Sodium Bisulfite (0.5%; pH= 4.0)
All the bacteria showed the same level of resistance (MIC = 0.078%) to sodium bisulfite. This chemical adjuvant is used for the purpose of dechlorinating and preserving multimedia filters; it is further used in water softeners and activated carbon bed filter.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ความเข้มข้นลิปกลอสไขต่ำสุด (MIC)ช่วง MIC ได้แสดงเปอร์เซ็นต์ และ mg/L สารเคมีตัวกับแบคทีเรียทดสอบ และแสดงในตาราง 31. เอทิลแอลกอฮอล์ (70% ค่า pH = 7.2)เกี่ยวกับสัมผัสกับเอทานอล 70%, P. aeruginosa พบไมค์สุดที่ 17.5% สูงกว่า MIC 8.75% ที่พบการเกิด subtilis stearothermophilus เกิด ได้รับโดย Vessoni Penna et al. [7], เน้นความสำคัญในการตรวจสอบระบบฟอกน้ำสำหรับรหัสของ P. aeruginosaTrautmann et al. [9] ได้รับผลลัพธ์ระยะยาวที่ยอมรับ โดยการใช้คลอรีนและกรองเพื่อกำจัดสายพันธุ์ของ P. aeruginosa จากทุกก๊อกน้ำในการฉุกเฉิน อย่างไรก็ตาม ผู้เขียนสังเกตเห็นว่า สายพันธุ์ของ P. aeruginosa ไม่แยกจากบุคลากรของโรงพยาบาล มือถูกฆ่าเชื้อ ด้วยแอลกอฮอล์ (เอทานอล 70%) ก่อน และ หลังการติดต่อกับผู้ป่วยอย่างสม่ำเสมอ2. ผงฟอกขาว (NaOCl, 0.5%, pH11.9)แบคทีเรียทั้งหมดที่ศึกษาพบว่าความต้านทาน เช่น MIC 0.25% (2500 mg/L) ระดับเดียวกัน ตาม Vessoni Penna et al. [7], E. coli แสดงไมค์ครึ่ง 0.156% (1560 mg/L) ในสารประกอบคลอรีน ทำชัดเจนที่การตรวจสอบน้ำคลอรีนสำหรับ P. aeruginosa เป็นความจำเป็น และสำคัญส่วนใหญ่ใช้สบาย ๆ รวมถึงการทำความสะอาด ของวงจรน้ำ วารีบำบัด อาบน้ำ สระว่ายน้ำ ด้วยรายงานการ P. aeruginosa ของทนต่อคลอรีนปล่อยตัวแทน (CRAs) Wirtanen et al. [10] ศึกษาผลของ disinfectants สี่ค้า: isopropanol (100% ใช้แอลกอฮอล์ที่มี การฐานเพอร์ออกไซด์ที่มีไฮโดรเจนเพอร์ออกไซด์ (0.5-2.0%) และกรด peracetic กำหนด และการคลอรีน-ฐานมีฟอก (0.3 – 0.8% ค่า pH > 9.0) ผู้เขียนพบว่า ยาฆ่าเชื้อใช้เพอร์ออกไซด์มีประสิทธิภาพสูงสุดใน biofilm แบคทีเรีย และพวกเขายืนยันว่า นานบำบัด ด้วยยาฆ่าเชื้อคลอรีนฐานมีประสิทธิภาพโดยเฉพาะอย่างยิ่งบน Pseudomonas biofilmsดังนั้น มีความจำเป็นเร่งด่วนสำหรับช่วง CRAs และติดต่อเวลาเพียงพอที่จะก่อให้เกิดความต้านทานในแบคทีเรีย ซึ่งยับยั้งการก่อตัว biofilm และติดกับเครื่อง porous ของระบบ อย่างไรก็ตาม disinfectants ควรเลือกตามการดำเนินงานในกระบวนการ พิจารณารบกวนของสารอินทรีย์ในกิจกรรมและประสิทธิภาพของยาฆ่าเชื้อ3. สมาคม peracetic กรด (PAA, 0.45%) บวกกับไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ (H2O2 2.2%) วิธีที่ 1% (PAA + H2O2; pH = 2.3)สำหรับโซลูชัน peracetic กรด (0.45%) + ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ (2.2%), P. aeruginosa, P. picketti, F. aureum และ lowffi A. แสดงช่วง MIC สูงที่สุดจาก 0.11% 0.55% ช่วงเวลาที่ถูกแสดงเป็น ครั้งที่ 2, 4 และ 8 มากกว่าที่สำหรับ P. diminuta (MIC = 0.056% & 0.275%), P. alcaligenes (MIC = 0.028% และ 0.137%) และ P. fluorescens (MIC = 0.014% และ 0.068%)ตามลำดับพิจารณาว่า เงื่อนไขที่ตั้งค่าสำหรับ MIC ได้เก็บคง อิสระของแบคทีเรียการทดสอบ ตาม Vessoni Penna et al. [7], เมื่อเซลล์ผักเรื้อรังเช่น Acinetobacter calcoaceticus, Enterobacter cloacae, Escherichia coli, Serratia marcescens และ Staphylococcus หมอเทศข้างลายส่งมาที่โซลูชัน H2O2 ที่ 4.0%, Escherichia coli แสดงให้เห็นว่าความต้านทานมากที่สุดในหมู่พวกเขามีไมค์ของ 0.25% ซึ่งเป็นครึ่งที่ได้ P. aeruginosa เมื่อทดสอบแบคทีเรียเหมือนกันกับกรด peracetic, E. coli พบไมค์ 0.23% ซึ่งเป็นสองเท่ากว่าใน P. aeruginosa ในส่วนผสมของกรด peracetic + ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ แสดงว่า P. aeruginosa และ E. coli ควรทั้งที่จำเป็นในการตรวจสอบน้ำบำบัด โซลูชั่นของ PAA + H2O2 1% ใช้ทำความสะอาดสารออสโมซิสผันกลับและเครื่อง deionization ต่อเนื่อง 3 ชั่วโมง เพื่อรับน้ำ และ 18 ชั่วโมงสำหรับ WFI ที่จะใช้เตรียม parenteral โซลูชัน รวมทั้งหน่วย peritoneal โซลูชั่น4. โซเดียมไฮดรอกไซด์ (0.4%; pH = 12.8)P. fluorescens และ P. alcaligenes มีแบคทีเรียซึ่งต้องทนกับโซเดียมไฮดรอกไซด์ ไมค์ 0.15% เกี่ยวกับความต้านทานที่แสดง โดยแบคทีเรียอื่นอย่างมีระดับ (MIC > 0.4%) กิจกรรมหลักของสารประกอบนี้คือ การปรับปรุงค่า pH ของน้ำกรดในออสโมซิสผันกลับ (จุด 06) และ deionization อย่างต่อเนื่อง (จุด 07), กับบางกิจกรรมสุขาภิบาลที่คาดไว้5. กรดซิตริก (0.5%; pH = 2.5)แบคทีเรียน้อยทนต่อกรดซิตริกโซลูชัน A. lowffi (0.06% = 600 mg/L) P. picketti ทนที่สุด (0.5% = 5000 mg/L); ส่วนเหลือพบไมค์ 0.25% = 2500 มิลลิกรัม/L. มีใช้สารเคมีตัวนี้ในออสโมซิสผันกลับ (จุด 06) ในการปรับ pH ของน้ำก่อนการฆ่าเชื้อด้วยวิธีแก้ปัญหา 1% ของ PAA + H2O2 ที่ทำความสะอาด6. กรดไฮโดรคลอริก (0.3%; pH = 0.3)แบคทีเรียน้อยทนได้ A. lowffi (MIC 0.039% = 390 mg/L) และ P. fluorescens (MIC 0.078% = 780 mg/L); ส่วนเหลือมีไมค์ 0.156% (1560 mg/L)เป็นที่น่าสังเกตพูดว่า P. aeruginosa ไม่ได้รับผลกระทบจากสารเคมีประเมินเช่น NaOH (0.4%), กรดซิตริก (0.5%) และใช้ HCl (0.3%) ในความเข้มข้นเป็นหน่วยของระบบฟอก อย่างไรก็ตาม โซลูชั่นเคมีเหล่านี้จะต้องแสดงกิจกรรม disinfecting บาง ซึ่งไม่ได้เรียกร้อง7. โซเดียม Bisulfite (0.5%; pH = 4.0)แบคทีเรียทั้งหมดแสดงให้เห็นว่าในระดับเดียวกับความต้านทาน (MIC = 0.078%) ให้โซเดียม bisulfite ประเมินสารเคมีนี้จะใช้เพื่อ dechlorinating และการกรองมัลติมีเดีย ต่อไปจะใช้ในระบบน้ำและกรองคาร์บอนเตียงนั้น

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ความเข้มข้นน้อยที่สุด (MIC)
ช่วง MIC มีการแสดงออกในอัตราร้อยละและในมิลลิกรัม / ลิตรของสารเคมีในการติดต่อกับแบคทีเรียที่ผ่านการทดสอบและได้รับการแสดงในตารางที่ 3 1 เอทิลแอลกอฮอล์ (70%, ค่า pH = 7.2) เกี่ยวกับการสัมผัสถึง 70% เอทานอล, P. aeruginosa พบ MIC ที่ยิ่งใหญ่ที่สุดที่ 17.5% สูงกว่าค่า MIC ของ 8.75% ซึ่งพบ B. subtilis และ B. stearothermophilus ได้โดย Vessoni Penna et al. [7], เน้นความสำคัญในการตรวจสอบของระบบการกรองน้ำสำหรับบัตรประจำตัวของเชื้อ P. aeruginosa Trautmann et al. [9] ไม่ได้ผลในระยะยาวได้รับการยอมรับโดยใช้คลอรีนและการกรองเพื่อกำจัด สายพันธุ์ของเชื้อ P. aeruginosa จากทุกก๊อกน้ำในห้องไอซียู อย่างไรก็ตามผู้เขียนสังเกตเห็นว่าสายพันธุ์ของเชื้อ P. aeruginosa เขาไม่ได้โดดเดี่ยวอย่างสม่ำเสมอจากบุคลากรของโรงพยาบาลที่มีมือถูกฆ่าเชื้อด้วยแอลกอฮอล์ (เอทานอล 70%) ก่อนและหลังการสัมผัสกับผู้ป่วย2 โซเดียมไฮโปคลอไรต์ (NaOCl, 0.5%; pH11.9) แบคทีเรียทั้งหมดแสดงให้เห็นว่าการศึกษาในระดับเดียวกันของความต้านทานเช่น MIC 0.25% (2,500 มก. / ลิตร) ตาม Vessoni Penna และคณะ [7], E. coli นำเสนอครึ่ง MIC ของ 0.156% (1,560 มก. / ลิตร) ในสารประกอบคลอรีนทำให้มันชัดเจนว่าการตรวจสอบของน้ำคลอรีนสำหรับ P. aeruginosa เป็นสิ่งที่จำเป็นและเป็นหลักสำคัญสำหรับการดื่มน้ำอุ่นรวมทั้งการทำความสะอาด ของวงจรน้ำวารีบำบัด, อาบน้ำ, สระว่ายน้ำและ ต้านทานเชื้อ P. aeruginosa ที่จะปล่อยคลอรีนตัวแทน (CRAs) มีรายงานอย่างดี . Wirtanen และคณะ [10] การศึกษาผลกระทบของสารฆ่าเชื้อสี่เชิงพาณิชย์ (100% alcohol-based) ที่มี isopropanol, ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์เปอร์ออกไซด์ที่มีฐาน (0.5-2.0%) และกรดเปอร์อะซิติกในการกำหนดและคลอรีนที่มีฐาน โซเดียมไฮโปคลอไรต์ (0.3-0.8% ค่า pH> 9.0) ผู้เขียนพบว่ายาฆ่าเชื้อเปอร์ออกไซด์ที่ใช้เป็นมีประสิทธิภาพมากที่สุดแบคทีเรียไบโอฟิล์มและพวกเขาได้รับการยืนยันว่าการรักษาเป็นเวลานานด้วยยาฆ่าเชื้อคลอรีนฐานมีประสิทธิภาพโดยเฉพาะอย่างยิ่งในไบโอฟิล์ม Pseudomonas ดังนั้นจึงมีความจำเป็นเร่งด่วนสำหรับการแสวงหาช่วงของ CRAs และ ติดต่อเวลาอย่างเพียงพอที่จะไม่ก่อให้เกิดการต้านทานเชื้อแบคทีเรียซึ่งช่วยยับยั้งการสร้างไบโอฟิล์มและยึดมั่นในอุปกรณ์ที่มีรูพรุนของระบบ อย่างไรก็ตามสารฆ่าเชื้อที่ควรจะได้รับการแต่งตั้งเป็นไปตามการดำเนินการในขั้นตอนการพิจารณาการแทรกแซงของสารอินทรีย์ในกิจกรรมของยาฆ่าเชื้อและประสิทธิผล3 สมาคมของกรดเปอร์อะซิติก (PAA, 0.45%) บวกไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ (H2O2 2.2%) การแก้ปัญหาวันที่ 1% (PAA + H2O2; pH = 2.3) สำหรับการแก้ปัญหาของกรดเปอร์อะซิติก (0.45%) + ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ (2.2%), P. aeruginosa, P. picketti เอฟ aureum และ A. lowffi นำเสนอ MIC สูงสุด ช่วงจาก 0.11% เป็น 0.55%, ช่วงเวลาซึ่งแสดงให้เห็นว่าเป็นสองสี่และแปดครั้งยิ่งใหญ่กว่าที่ P. diminuta (MIC = 0.056% และ 0.275%), P. Alcaligenes (MIC = 0.028% และ 0.137% ) และ P. fluorescens (MIC = 0.014% และ 0.068%) ตามลำดับเมื่อพิจารณาว่าเงื่อนไขที่กำหนดไว้สำหรับ MIC ถูกเก็บไว้อย่างต่อเนื่องเป็นอิสระจากเชื้อแบคทีเรียที่ผ่านการทดสอบตาม Vessoni Penna et al. [7] เมื่อเซลล์พืชเช่น Acinetobacter calcoaceticus น้ำใต้ดิน Enterobacter Escherichia coli, Serratia marcescens, Staphylococcus aureus และถูกส่งไปแก้ปัญหา H2O2 ที่ 4.0%, Escherichia coli โดยแสดงให้เห็นความต้านทานที่ยิ่งใหญ่ที่สุดในหมู่พวกเขามีค่า MIC เท่ากับ 0.25% ซึ่งเป็นครึ่งหนึ่งที่ได้รับสำหรับ P. aeruginosa เมื่อแบคทีเรียเดียวกันได้มีการทดสอบกับกรดเปอร์อะซิติก, E. coli พบ MIC 0.23% ซึ่งมากเป็นสองเท่าที่ P. aeruginosa ในส่วนผสมของกรดเปอร์อะซิติก + ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์แสดงให้เห็นว่าเชื้อ P. aeruginosa และอีโคไล ทั้งควรจะต้องใช้ในการตรวจสอบของน้ำได้รับการรักษา การแก้ปัญหาของ PAA + H2O2 ที่ 1% จะนำไปใช้ในการทำความสะอาดของเยื่อการ Reverse Osmosis และอุปกรณ์ Deionization อย่างต่อเนื่องเป็นเวลาสามชั่วโมงเพื่อให้ได้น้ำบริสุทธิ์และ 18 ชั่วโมงสำหรับ WFI ที่จะใช้ในการเตรียมการแก้ปัญหาทางหลอดเลือดดำรวมทั้ง การแก้ปัญหาการล้างไตทางช่องท้อง4 โซเดียมไฮดรอกไซ (0.4% ค่า pH = 12.8) P. fluorescens และพี Alcaligenes เป็นแบคทีเรียที่มีน้อยทนต่อโซเดียมไฮดรอกไซแสดง MIC 0.15% ในส่วนที่เกี่ยวกับความต้านทานแสดงโดยแบคทีเรียอื่น ๆ (MIC> 0.4%) กิจกรรมหลักของสารเคมีนี้การปรับค่า pH ของน้ำที่เป็นกรดในการ Reverse Osmosis (จุด 06) และ Deionization ต่อเนื่อง (จุด 07) มีบางกิจกรรมที่คาดว่าสุขาภิบาล5 กรดซิตริก (0.5% ค่า pH = 2.5) แบคทีเรียน้อยทนต่อสารละลายกรดซิตริกเป็น A. lowffi (0.06% = 600 มก. / ลิตร) ทนมากที่สุดคือ P. picketti (0.5% = 5000 มก. / ลิตร); ส่วนที่เหลือพบว่า MIC 0.25% = 2,500 มิลลิกรัม / ลิตร สารเคมีนี้จะใช้ในการ Reverse Osmosis (06 จุด) ในการปรับค่า pH ของน้ำทำความสะอาดก่อนที่จะฆ่าเชื้อด้วยวิธีที่ 1% ของ PAA + H2O2 6 ไฮโดรคลอริกกรด (0.3% ค่า pH = 0.3) แบคทีเรียน้อยทนได้ A. lowffi (MIC 0.039% = 390 มก. / ลิตร) และ P. fluorescens (MIC 0.078% = 780 มก. / ลิตร); ส่วนที่เหลือมี MIC ของ 0.156% (1,560 มก. / ลิตร) มันเป็นเรื่องสำคัญที่จะระบุว่าเชื้อ P. aeruginosa ไม่ได้รับผลกระทบจากสารเสริมเคมีเช่นโซดาไฟ (0.4%), กรดซิตริก (0.5%) และ HCl (0.3 %) ในความเข้มข้นที่ใช้กับหน่วยงานของระบบฟอก อย่างไรก็ตามการแก้ปัญหาสารเคมีเหล่านี้ที่คาดว่าจะแสดงบางส่วนกิจกรรมการฆ่าเชื้อซึ่งไม่ได้เรียกร้อง7 โซเดียม Bisulfite (0.5% ค่า pH = 4.0) แบคทีเรียทั้งหมดแสดงให้เห็นว่าในระดับเดียวกันของความต้านทาน (MIC = 0.078%) โซเดียม bisulfite เสริมสารเคมีชนิดนี้ถูกนำมาใช้เพื่อวัตถุประสงค์ในการ dechlorinating และรักษาตัวกรองมัลติมีเดีย; มันถูกนำมาใช้ต่อไปในน้ำยาปรับน้ำและเปิดใช้งานกรองคาร์บอนเตียง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ความเข้มข้นของสารน้อย ( MIC )
ช่วงเวลาไมค์มีความค่าในมิลลิกรัมของสารเคมีในการติดต่อกับจุลินทรีย์ทดสอบและแสดงใน ตารางที่ 3

1 เอทิลแอลกอฮอล์ ( 70% , pH = 7.2 )
เกี่ยวกับการเปิดรับเอทานอล 70% , P . aeruginosa พบไมค์ที่สุด 17.5% สูงกว่า MIC 8.75 % ซึ่งพบ B . subtilis B stearothermophilus และ ,ที่ได้จาก vessoni Penna et al . [ 7 ] , เน้นความสำคัญในการตรวจสอบประสิทธิภาพของระบบบำบัดน้ำสำหรับการระบุของ P . aeruginosa .

trautmann et al . [ 9 ] ไม่ได้รับผลลัพธ์ในระยะยาวได้โดยการใช้คลอรีนและการกรองเพื่อกำจัดเชื้อ P . aeruginosa จากทุกประปาอยู่ในไอซียู อย่างไรก็ตาม ผู้เขียนสังเกตว่า สายพันธุ์ของพีดอกไม่สม่ำเสมอแยกจากบุคลากรที่มีมือฆ่าเชื้อด้วยแอลกอฮอล์ ( เอทานอล 70% ) ก่อนและหลังการสัมผัสกับผู้ป่วย

2 โซเดียมไฮโปคลอไรต์ ( ไม่ระบุ , 0.5% ; ph11.9 )
) พบแบคทีเรียทั้งหมดในระดับเดียวกันของความต้านทาน เช่น MIC 0.25 % ( 2 , 500 mg / l ) ตาม vessoni Penna et al . [ 7 ] , E . coli เสนอครึ่ง MIC 0156 ( 1560 มิลลิกรัมต่อลิตร ) ในสารประกอบคลอรีน ทำให้มันชัดเจนว่า การตรวจสอบของคลอรีนน้ำสำหรับ P . aeruginosa เป็นสิ่งที่จำเป็นและสำคัญสำหรับน้ำอุ่นดื่มเป็นหลัก รวมทั้งความสะอาดของน้ำวงจรบำบัดด้วยน้ำ , สระว่ายน้ำ และสระ P . aeruginosa เป็นต้านทานคลอรีนปล่อยตัวแทน ( cras ) คือ รายงาน เวอร์ทาเนน et al .[ 10 ] ได้ศึกษาผลของน้ำยาฆ่าเชื้อ ( แอลกอฮอล์ 4 พาณิชย์ 100% ) ที่มีฐานประกอบด้วยไอโซโพรพานอล , เปอร์ออกไซด์ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ ( 0.5 - 2.0 % ) และ peracetic กรดในสูตรตำรับ และคลอรีน ฐานที่ประกอบด้วยโซเดียมไฮโปคลอไรต์ ( 0.3 - 0.8 เปอร์เซ็นต์พีเอช > 9.0 ) ผู้เขียนพบว่ายาฆ่าเชื้อที่ใช้เปอร์ออกไซด์เป็นมีประสิทธิภาพมากที่สุดบนฟิล์มแบคทีเรียและยืนยันว่ารักษานานด้วยคลอรีนฆ่าเชื้อโรคได้โดยเฉพาะในฐานที่มีประสิทธิภาพของไบโอฟิล์ม

จึงเป็นความจำเป็นอย่างเร่งด่วน เพื่อหาช่วงของ cras และเพียงพอเวลาติดต่อที่จะไม่ก่อให้เกิดการต้านทานแบคทีเรีย ซึ่งยับยั้งการสร้างไบโอฟิล์มและยึดมั่นในอุปกรณ์ที่มีรูพรุนของระบบ อย่างไรก็ตามฆ่าเชื้อที่ควรจะเลือกตามปฏิบัติการในกระบวนการพิจารณาการแทรกแซงของสารอินทรีย์ในกิจกรรมของยาฆ่าเชื้อ และประสิทธิผล .

3 สมาคม peracetic acid ( ป้า 0.45 % ) และไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ ( H2O2 2.2 % ) โซลูชั่นที่ 1% ( ป้า H2O2 คือ pH = 2.3 )
สำหรับโซลูชันของ peracetic acid ( 0.45% ) ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ ( 2.2% ) , P . aeruginosa , หน้า picketti , F .aureum และ . lowffi นำเสนอช่วง MIC สูงสุดจาก 0.11% ถึง 0.55 % , ช่วงเวลาที่ถูกแสดงเป็น สอง สี่ แปดครั้งมากขึ้นกว่าที่หน้า diminuta ( MIC = 0.056 % & 0.275 % ) , หน้า Alcaligenes ( MIC = 0.028 % & 0.137 % ) และ P . fluorescens ( MIC = % & 0.068 0.014 ตามลำดับ

พิจารณาว่าตั้งกฎสำหรับไมค์ถูกเก็บไว้คงที่เป็นอิสระจากแบคทีเรียทดสอบตาม vessoni Penna et al . [ 7 ] เมื่อเซลล์พืชเช่น Accipitriformes , Enterobacter เชื้อ Escherichia coli , Staphylococcus aureus , marcescens เซอร์ราเทีย และถูกส่งไปยังโซลูชั่น H2O2 ที่ 4.0% , Escherichia coli พบความต้านทานมากที่สุดในหมู่พวกเขามี MIC 0.25% ซึ่งเป็นครึ่งหนึ่งที่ได้รับสำหรับ P . aeruginosa .เมื่อแบคทีเรียเดียวกันถูกทดสอบกับ peracetic กรด , E . coli พบว่า MIC 0.23 เปอร์เซ็นต์ ซึ่งจะมากเป็นสองเท่าของที่ P . aeruginosa ในส่วนผสมของ peracetic กรด ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ แสดงว่า P . aeruginosa และ E . coli ทั้งสองควรจะใช้ในการรักษาน้ำโซลูชั่นของป้า H2O2 ที่ 1% ใช้เพื่อความสะอาดของ Reverse Osmosis เมมเบรนและอุปกรณ์การไถ่ถอนต่อเนื่อง 3 ชั่วโมง เพื่อให้ได้น้ำบริสุทธิ์ และ 18 ชั่วโมง WFI ที่จะใช้เตรียมยาฉีด โซลูชั่น รวมทั้งการชำระเลือดผ่านเยื่อบุช่องท้องโซลูชั่น

4 . โซเดียม ไฮดรอกไซด์ ( 0.4% pH = 12.8 )
P . fluorescens และ P .เป็นแบคทีเรียที่ Alcaligenes น้อยทนต่อสารละลายโซเดียม ไฮดรอกไซด์ ซึ่งไมค์ 0.15 เปอร์เซ็นต์ ในความสัมพันธ์กับความต้านทานแสดงโดยแบคทีเรียอื่น ๆ ( MIC > 0.4% ) กิจกรรมหลักของสารประกอบทางเคมีที่เป็นกรดในการปรับพีเอชของน้ำการ Reverse Osmosis ( จุด ต่อเนื่อง ( 06 ) และการไถ่ถอนจุด 07 ) กับบางคนคาดว่าสุขาภิบาลกิจกรรม

5กรดซิตริก ( 0.5% pH = 2.5 )
แบคทีเรียอย่างน้อยป้องกันสารละลายกรดซิตริกเป็น . lowffi ( 0.06 % = 600 mg / l ) ป้องกันมากที่สุดคือหน้า picketti ( 0.5% = 5000 mg / L ) ; ส่วนที่เหลือให้ไมค์ 0.25 % = 2 , 500 มก. / ลิตร สารเคมีนี้จะถูกใช้ในการ Reverse Osmosis ( จุด 06 ) ในการปรับ pH ของน้ำก่อนที่จะทำความสะอาดฆ่าเชื้อโรคด้วยสารละลาย 1% ของป้า H2O2

6 กรดเกลือ ( 03 เปอร์เซ็นต์ pH = 0.3 )
แบคทีเรียอย่างน้อยทนเป็น . lowffi ( MIC ร้อยละ 0.039 = 390 มก. / ล. ) และ P . fluorescens ( MIC 0.078 % = 780 มิลลิกรัม / ลิตร ) ; ส่วนที่เหลือมี MIC โดย % ( 1560 mg / L )

มันเป็นน่าสังเกตว่า P . aeruginosa ไม่ได้รับผลกระทบจากสารเคมีสารเสริมเช่น NaOH ( 0.4% ) , กรดซิตริก ( 0.5% ) และกรดไฮโดรคลอริก ( 0.3% ) ในความเข้มข้นที่ใช้กับหน่วยของระบบบำบัด .อย่างไรก็ตาม โซลูชั่นทางเคมีเหล่านี้ที่คาดว่าจะแสดงการจัดกิจกรรม ซึ่งจะไม่มีการเรียกร้อง

7 โซเดียมไบซัลไฟต์ ( 0.5% pH = 4.0 )
แบคทีเรียทั้งหมดที่แสดงระดับของความต้านทาน ( MIC = 0.078 ) โซเดียมไบซัลไฟต์ . สารเคมีนี้เสริมที่ใช้สำหรับวัตถุประสงค์ของ dechlorinating และรักษากรองสื่อประสมมันถูกใช้ต่อไปในน้ำ softeners กรองเตียงและเปิดใช้งานคาร์บอน