2.4. Preparation of coconut husk2.4

2.4. Preparation of coconut husk
2.4.1. Collection and preparation of coconut husk
Coconut husk was obtained from a local market in Hat Yai,
Songkhla, Thailand and transported to the Department of Food
Technology, Prince of Songkla University, Hat Yai, Thailand. Husk
was prepared following the method of Vazquez-Torres, Canche-
Escamilla, and Cruz-Ramos (1992). The obtained powder was
placed in a polythene bag, sealed and kept at room temperature
until use.
2.4.2. Preparation of ethanolic extract from coconut husk
Coconut husk powder was subjected to extraction according to
the method of Santoso, Yoshie-Stark, and Suzuki (2004). Dried
extract was powdered using a mortar and pestle and was kept in an
amber bottle and stored in a desiccator at room temperature
(28e30

C) until use. The obtained powder was referred to as
‘ethanolic extract from coconut husk, EECH’. The yield of EECH was
48.5 g 100 g
À1
husk powder.
2.4.3. Determination of total phenolic content
Total phenolic content was determined using a colorimetric
method using the FolineCiocalteau reagent (Singleton, Orthofer, &
Lamuela-Raventos, 1999). Total phenolic content in EECH was
calculated from a standard curve of tannic acid (0.01e0.1 mg L
À1
)
and expressed as g tannic acid equivalent kg
À1
dry matter
(Singleton et al., 1999).
2.4.4. Determination of tannic acid content
Tannic acid in EECH was determined using an HPLC equipped
with a variable wavelength detector (VWD) following the method
of Tian et al. (2009) with slight modifications. The HPLC system
consisted of an Agilent 1100 series HPLC (Alginet, Wilmington, DE,
USA), quaternary pump with the seal wash option, degasser, sol-
vent, cabinet and preparative auto-sampler with thermostat
equipped with a diode array detector. The separations were done
using a Hypersil ODS C18 4.0 Â 250 mm, 5
m
m column
(ColeeParmer, London, UK). HPLC conditions were as follows:
mobile phase: 0.4 g 100 mL
À1
formic acid: acetonitrile (85:15), flow
rate: 0.8 ml min
À1
, temperature: 25

C. Detection was carried out at
280 mm. The concentration of extracts was 25 mg ml
À1
and each
injection volume was 20
m
l. Standard tannic acid was used for peak
identification

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.4. Preparation of coconut husk2.4.1. Collection and preparation of coconut huskCoconut husk was obtained from a local market in Hat Yai,Songkhla, Thailand and transported to the Department of FoodTechnology, Prince of Songkla University, Hat Yai, Thailand. Huskwas prepared following the method of Vazquez-Torres, Canche-Escamilla, and Cruz-Ramos (1992). The obtained powder wasplaced in a polythene bag, sealed and kept at room temperatureuntil use.2.4.2. Preparation of ethanolic extract from coconut huskCoconut husk powder was subjected to extraction according tothe method of Santoso, Yoshie-Stark, and Suzuki (2004). Driedextract was powdered using a mortar and pestle and was kept in anamber bottle and stored in a desiccator at room temperature(28e30C) until use. The obtained powder was referred to as‘ethanolic extract from coconut husk, EECH’. The yield of EECH was48.5 g 100 gÀ1husk powder.2.4.3. Determination of total phenolic contentTotal phenolic content was determined using a colorimetricmethod using the FolineCiocalteau reagent (Singleton, Orthofer, &Lamuela-Raventos, 1999). Total phenolic content in EECH wascalculated from a standard curve of tannic acid (0.01e0.1 mg LÀ1)and expressed as g tannic acid equivalent kgÀ1dry matter(Singleton et al., 1999).2.4.4. Determination of tannic acid contentTannic acid in EECH was determined using an HPLC equippedwith a variable wavelength detector (VWD) following the methodของเทียน et al. (2009) มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย ระบบ HPLCประกอบด้วยชุดข้อมูล Agilent 1100 HPLC (Alginet วิลมิ DEสหรัฐอเมริกา), ปั๊ม quaternary กับตราล้างตัวเลือก degasser โซล-ระบาย ตู้ และ preparative อัตโนมัติแซมเพลอร์ มีอุณหภูมิพร้อมกับไดโอดอาร์เรย์จับ ประโยชน์ที่ได้ทำใช้ Hypersil ODS C18 4.0 Â 250 มม. 5mคอลัมน์ m(ColeeParmer ลอนดอน สหราชอาณาจักร) HPLC เงื่อนไขมีดังนี้:ระยะเคลื่อน: 0.4 g 100 มลÀ1กรด: ไหล acetonitrile (85:15),ราคา: ต่ำสุด 0.8 mlÀ1อุณหภูมิ: 25C. ตรวจถูกดำเนินการที่280 มม. ความเข้มข้นของสารสกัดเป็น ml 25 มิลลิกรัมÀ1และแต่ละปริมาณฉีดได้ 20ml. ใช้กรด tannic มาตรฐานสำหรับครหัส

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.4 เตรียมความพร้อมของขุยมะพร้าว2.4. Preparation of coconut husk
2.4.1 การเก็บและการจัดเตรียมขุยมะพร้าวแกลบมะพร้าวที่ได้รับจากตลาดในประเทศในหาดใหญ่, สงขลา, ไทยและเคลื่อนย้ายไปยังภาควิชาอาหารเทคโนโลยีมหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์หาดใหญ่, ไทย 2.4.1. Collection and preparation of coconut husk
Coconut husk was obtained from a local market in Hat Yai,
Songkhla, Thailand and transported to the Department of Food
Technology, Prince of Songkla University, Hat Yai, Thailand. Husk
was prepared following the method of Vazquez-Torres, Canche-
Escamilla, and Cruz-Ramos (1992). The obtained powder was
placed in a polythene bag, sealed and kept at room temperature
until use.
2.4.2. Preparation of ethanolic extract from coconut husk
Coconut husk powder was subjected to extraction according to
the method of Santoso, Yoshie-Stark, and Suzuki (2004). Dried
extract was powdered using a mortar and pestle and was kept in an
amber bottle and stored in a desiccator at room temperature
(28e30

C) until use. The obtained powder was referred to as
‘ethanolic extract from coconut husk, EECH’. The yield of EECH was
48.5 g 100 g
À1
husk powder.
2.4.3. Determination of total phenolic content
Total phenolic content was determined using a colorimetric
method using the FolineCiocalteau reagent (Singleton, Orthofer, &
Lamuela-Raventos, 1999). Total phenolic content in EECH was
calculated from a standard curve of tannic acid (0.01e0.1 mg L
À1
)
and expressed as g tannic acid equivalent kg
À1
dry matter
(Singleton et al., 1999).
2.4.4. Determination of tannic acid content
Tannic acid in EECH was determined using an HPLC equipped
with a variable wavelength detector (VWD) following the method
of Tian et al. (2009) with slight modifications. The HPLC system
consisted of an Agilent 1100 series HPLC (Alginet, Wilmington, DE,
USA), quaternary pump with the seal wash option, degasser, sol-
vent, cabinet and preparative auto-sampler with thermostat
equipped with a diode array detector. The separations were done
using a Hypersil ODS C18 4.0 Â 250 mm, 5
m
m column
(ColeeParmer, London, UK). HPLC conditions were as follows:
mobile phase: 0.4 g 100 mL
À1
formic acid: acetonitrile (85:15), flow
rate: 0.8 ml min
À1
, temperature: 25

C. Detection was carried out at
280 mm. The concentration of extracts was 25 mg ml
À1
and each
injection volume was 20
m
l. Standard tannic acid was used for peak
identification

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.4 . การเตรียมการของกาบมะพร้าว
เครื่องมือกำจัดเพื่อย้าย . การเก็บและเตรียมตัวกาบมะพร้าว
กาบมะพร้าวได้รับจากตลาดหาดใหญ่ ,
สงขลา และส่งตัวไปแผนกอาหาร
เทคโนโลยี มหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์ หาดใหญ่ ประเทศไทย แกลบ
เตรียมตามวิธีของเควซ ทอร์เรส canche -
3 และ ครูซ รามอส ( 1992 ) นำผง
ใส่ในถุง polythene , ปิดผนึกและเก็บไว้ที่อุณหภูมิห้องจนกว่าจะใช้
.
2.4.2 . การเตรียมการของสิ่งสกัดจากผงขุยมะพร้าว แกลบ
มะพร้าวภายใต้การสกัดตาม
วิธี ซานโตโซ โยชิเอะ สตาร์ค และ ซูซูกิ ( 2004 ) สารสกัดจากผงแห้ง
ใช้ครกและสาก และถูกเก็บไว้ในขวด
แอมเบอร์และเก็บไว้ในที่อุณหภูมิห้อง ( 28e30 เดซิกเคเตอร์

c ) จนใช้ นำผงเรียกว่า
'ethanolic สกัดจากมะพร้าว แกลบ eech ' ผลผลิตของ eech ถูก

À 48.5 กรัมต่อ 100 กรัมผงแกลบ 1
.
2.4.3 . วิเคราะห์ปริมาณสารฟีนอลิกทั้งหมด
เนื้อหาเนื้อหาก็ตัดสินใจใช้วิธี Colorimetric
ใช้ folineciocalteau Reagent ( ฌอน แอสติน orthofer & , ,
lamuela raventos , 1999 ) เนื้อหาทั้งหมดใน eech คือ
ฟีโนลิกคำนวณจากเส้นโค้งมาตรฐานของกรดแทนนิก ( 0.01e0.1 mg L
À 1
)
และแสดงเป็นกรัมกรดแทนนิกเทียบเท่ากก
Àแห้ง 1

( Singleton et al . , 1999 ) .
2.4.4 . การหาปริมาณกรดแทนนิค
กรดแทนนิกใน eech ถูกกำหนดโดยใช้ HPLC อุปกรณ์
กับตัวแปรแสงตรวจจับ ( vwd ) วิธี ดังนี้
ของเทียน et al . ( 2009 ) ที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย ระบบ HPLC
ประกอบด้วย Agilent 1100 ชุด HPLC ( alginet Wilmington , DE
, , USA ) ซึ่งปั๊มตราล้างตัวเลือก degasser , โซล -
ระบายตู้และตัวอย่างโดยอัตโนมัติด้วยเทอร์โม =
พร้อมกับไดโอดอาร์เรย์เครื่องตรวจจับ การแยกทำ
ใช้ขน ODS c18 4.0 Â 250 มม. , 5
m

m คอลัมน์ ( coleeparmer สหราชอาณาจักรลอนดอน ) โดยเงื่อนไขดังนี้
เฟสเคลื่อนที่ : 0.4 กรัมต่อ 100 มิลลิลิตร À

1กรด : Acetonitrile ( 85:15 ) อัตราการไหลของ
: 0.8 มิลลิลิตรต่อนาทีÀ
1
, อุณหภูมิ 25

C สามารถดำเนินการที่
280 มิลลิเมตร ความเข้มข้นของสารสกัด 25 มก. ต่อ 1


Àและแต่ละการฉีดปริมาณ 20
m
L มาตรฐานกรดแทนนิกใช้

ตัวสูงสุด