- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
2. Materials and methods2.1. Materi
2. Materials and methods
2.1. Materials
Potato starch (Xue Guan Starch Company, Ning Xia, China) was provided after drying in the oven at 50 °C for three days. Six amino acids were used, including Lys and Arg (positively charged), Asp and Glu (negatively charged), and Phe and Met (neutral) (Biosharp, Korea).
2.2. Swelling power and solubility measurement
The swelling power and solubility of starch was measured using the procedure described by (Collado, 1997). Potato starch (0.5 g) with amino acids (1%, 5% and 10% on a starch weight basis, % w/w) was suspended in a beaker with 25 mL of distilled water, and then heated in a water bath at 70 °C for 30 min with manual stirring. The control was starch sample without amino acids. After cooling to room temperature and transferring to a 50 ml centrifuge tube, the starch suspension was centrifuged at 1950g for 30 min at 20 °C. The resulting supernatant was placed in a petri dish and dried at 105 °C to constant weight (Ws). The precipitate was weighed (Wp) and also dried at 105 °C for 24 h to obtain a constant weight (Wd). The swelling power and solubility was calculated by the following equation:
Swelling Power=Wp/Wd
Turn MathJax on
Solubility=Ws/0.5×100
Turn MathJax on
2.3. Transparency
Aqueous suspensions of potato starch (1%, w/w) with different levels of amino acids were placed in the beaker and heated in boiling water bath (95 °C) heating for 30 min with manual stirring. Then, fully gelatinized starch suspension was cooled to room temperature. The transmittance (%T) of samples was determined against water blank with UV/VIS spectroscopy (Lambda 35, Perkin Elmer Corp., USA) at 650 nm (Craig, Maningat, Seib, & Hoseney, 1989).
2.4. Syneresis after freeze–thaw
Potato starch pastes (3%, w/w) with different levels of amino acids were prepared by heating at 95 °C for 20 min in a water bath with manual stirring. Then the pastes were weighed (30 g) accurately into centrifuge tubes and stored in a freezer (−25 °C) for 24 h. The frozen pastes were thawed at room temperature for 6 h and centrifuged at 1950g for 10 min. The percentage of water separated was measured and expressed as the syneresis (%) ( Schmitz et al., 2006).
2.5. Preparation of potato starch gels
Amino acids (1%, 5% and 10% on a starch weight basis, % w/w) were weighed and placed into beaker. Distilled water (50 ml) was added and then mixed with 3 g potato starch. The potato starch suspension (6%, w/w) with different levels of amino acids were obtained. The gels were prepared by heating starch suspension at 95 °C for 20 min in a water bath with manual stirring and then poured into the weighing bottle (40 mm in diameter and 25 mm in depth). The samples were sealed with plastic wrap to prevent moisture loss and stored at 4 °C overnight.
2.6. Colour measurement
Colour measurements of gels were performed in a Hunter Lab Ultra Scan XE colorimeter (Hunter Lab Co., Ltd, Reston, VA, USA) at ambient temperature. The equipment was standardized with a standard-white reflection plate (Hansen, Jackson, Wehling, Wilson, & Graybosch, 2010). The colour parameters (L∗, a∗ and b∗ values) were recorded. L∗ is the parameter that measures lightness (0 = black, 100 = white), a∗ is red or green colour (negative = green, positive = red), and b∗ is blue or yellow colour (negative = blue, positive = yellow). The Hunter L∗, a∗ and b∗ values were determined in triplicate.
2.7. Gel strength measurement
Gel strength was measured by a TA.XTPlus Texture Analyzer (Texture Technologies Corp, Scarsdale, NY, USA) and analyses were made using return to start model with a cylindrical probe (P/0.5, 12.7 mm in diameter), which was programmed to move downwards for a compression ration of 40% of the original height at a speed of 2 mm/s and a pre-test speed of 1 mm/s, a post-test speed of 5 mm/s as well as a trigger force of 5 g. All measurements were carried out in triplicate. The maximum force (N) required to compress the sample was recorded as gel strength.
2.8. Dynamic rheological testing
Dynamic rheological testing was performed on an AR2000ex Rheometer (TA Instruments, New Castle, DE, USA) equipped with 40 mm diameter parallel plate system. The gap size was set at 1 mm. The strain and angular frequency (2% and 5 rad/s), which were obtained from stress and frequency sweep in the linear range, were set for all determination. Starch suspensions of 20% (w/w) concentration added with amino acids were loaded onto the pettier of rheometer and the outer edge of the starch suspension was covered with a thin layer of silicone oil to minimize evaporation loss. The starch samples were heated from 20 °C to 100 °C at the rate of 1 °C/min. Storage modulus (G′) was obtained.
2.9. Statistical analysis
Results of colour and TPA were reported as mean values ± standard deviation (SD). For data analysis, the analysis of variance (ANOVA) was performed using a SPSS package (SPSS 17.0 for Windows, SPSS Inc, Chicago, IL, US). Differences among the mean values of various treatments were made using Duncan’s multiple range test (P < 0.05).
2.1. Materials
Potato starch (Xue Guan Starch Company, Ning Xia, China) was provided after drying in the oven at 50 °C for three days. Six amino acids were used, including Lys and Arg (positively charged), Asp and Glu (negatively charged), and Phe and Met (neutral) (Biosharp, Korea).
2.2. Swelling power and solubility measurement
The swelling power and solubility of starch was measured using the procedure described by (Collado, 1997). Potato starch (0.5 g) with amino acids (1%, 5% and 10% on a starch weight basis, % w/w) was suspended in a beaker with 25 mL of distilled water, and then heated in a water bath at 70 °C for 30 min with manual stirring. The control was starch sample without amino acids. After cooling to room temperature and transferring to a 50 ml centrifuge tube, the starch suspension was centrifuged at 1950g for 30 min at 20 °C. The resulting supernatant was placed in a petri dish and dried at 105 °C to constant weight (Ws). The precipitate was weighed (Wp) and also dried at 105 °C for 24 h to obtain a constant weight (Wd). The swelling power and solubility was calculated by the following equation:
Swelling Power=Wp/Wd
Turn MathJax on
Solubility=Ws/0.5×100
Turn MathJax on
2.3. Transparency
Aqueous suspensions of potato starch (1%, w/w) with different levels of amino acids were placed in the beaker and heated in boiling water bath (95 °C) heating for 30 min with manual stirring. Then, fully gelatinized starch suspension was cooled to room temperature. The transmittance (%T) of samples was determined against water blank with UV/VIS spectroscopy (Lambda 35, Perkin Elmer Corp., USA) at 650 nm (Craig, Maningat, Seib, & Hoseney, 1989).
2.4. Syneresis after freeze–thaw
Potato starch pastes (3%, w/w) with different levels of amino acids were prepared by heating at 95 °C for 20 min in a water bath with manual stirring. Then the pastes were weighed (30 g) accurately into centrifuge tubes and stored in a freezer (−25 °C) for 24 h. The frozen pastes were thawed at room temperature for 6 h and centrifuged at 1950g for 10 min. The percentage of water separated was measured and expressed as the syneresis (%) ( Schmitz et al., 2006).
2.5. Preparation of potato starch gels
Amino acids (1%, 5% and 10% on a starch weight basis, % w/w) were weighed and placed into beaker. Distilled water (50 ml) was added and then mixed with 3 g potato starch. The potato starch suspension (6%, w/w) with different levels of amino acids were obtained. The gels were prepared by heating starch suspension at 95 °C for 20 min in a water bath with manual stirring and then poured into the weighing bottle (40 mm in diameter and 25 mm in depth). The samples were sealed with plastic wrap to prevent moisture loss and stored at 4 °C overnight.
2.6. Colour measurement
Colour measurements of gels were performed in a Hunter Lab Ultra Scan XE colorimeter (Hunter Lab Co., Ltd, Reston, VA, USA) at ambient temperature. The equipment was standardized with a standard-white reflection plate (Hansen, Jackson, Wehling, Wilson, & Graybosch, 2010). The colour parameters (L∗, a∗ and b∗ values) were recorded. L∗ is the parameter that measures lightness (0 = black, 100 = white), a∗ is red or green colour (negative = green, positive = red), and b∗ is blue or yellow colour (negative = blue, positive = yellow). The Hunter L∗, a∗ and b∗ values were determined in triplicate.
2.7. Gel strength measurement
Gel strength was measured by a TA.XTPlus Texture Analyzer (Texture Technologies Corp, Scarsdale, NY, USA) and analyses were made using return to start model with a cylindrical probe (P/0.5, 12.7 mm in diameter), which was programmed to move downwards for a compression ration of 40% of the original height at a speed of 2 mm/s and a pre-test speed of 1 mm/s, a post-test speed of 5 mm/s as well as a trigger force of 5 g. All measurements were carried out in triplicate. The maximum force (N) required to compress the sample was recorded as gel strength.
2.8. Dynamic rheological testing
Dynamic rheological testing was performed on an AR2000ex Rheometer (TA Instruments, New Castle, DE, USA) equipped with 40 mm diameter parallel plate system. The gap size was set at 1 mm. The strain and angular frequency (2% and 5 rad/s), which were obtained from stress and frequency sweep in the linear range, were set for all determination. Starch suspensions of 20% (w/w) concentration added with amino acids were loaded onto the pettier of rheometer and the outer edge of the starch suspension was covered with a thin layer of silicone oil to minimize evaporation loss. The starch samples were heated from 20 °C to 100 °C at the rate of 1 °C/min. Storage modulus (G′) was obtained.
2.9. Statistical analysis
Results of colour and TPA were reported as mean values ± standard deviation (SD). For data analysis, the analysis of variance (ANOVA) was performed using a SPSS package (SPSS 17.0 for Windows, SPSS Inc, Chicago, IL, US). Differences among the mean values of various treatments were made using Duncan’s multiple range test (P < 0.05).
0/5000
2. วัสดุและวิธีการ2.1. วัสดุแป้งมันฝรั่ง (บริษัทไลท์ซิวกวนแป้ง เซี ยะหนิง จีน) ได้รับหลังจากอบในเตาอบที่ 50 องศาเซลเซียส 3 วัน กรดอะมิโนหกใช้ Lys และอาร์กิวเมนต์ของค่า (คิดค่าบวก), Asp และ Glu (ส่งเรียกเก็บ), และเพและเม็ท (กลาง) (Biosharp เกาหลี)2.2 การวัดพลังงานและละลายบวมพลังงานบวมและการละลายของแป้งถูกวัด ด้วย (Collado, 1997) ใช้ แป้งมันฝรั่ง (0.5 กรัม) กับกรดอะมิโน (1%, 5% และ 10% ตามแป้งน้ำหนัก, % w/w) ถูกหยุดชั่วคราวในบีกเกอร์ด้วย 25 mL ของน้ำกลั่น และอุ่นในอ่างน้ำที่ 70 ° C สำหรับ 30 นาทีกับกวนด้วยตนเอง ตัวควบคุมตัวอย่างแป้งไม่ มีกรดอะมิโนได้ หลังจากทำความเย็นกับอุณหภูมิห้อง และโอนย้ายไปเป็น 50 ml เครื่องหมุนเหวี่ยงท่อ ระงับแป้งถูก centrifuged ที่ 1950 กรัมสำหรับ 30 นาทีที่ 20 องศาเซลเซียส Supernatant ได้ถูกวางลงในจานเพาะเชื้อ และอบแห้งที่ 105 ° C น้ำหนักคง (Ws) Precipitate มีน้ำหนัก (Wp) และอบแห้งที่ 105 ° C ใน 24 ชมรับน้ำหนักคง (Wd) ยัง พลังงานและละลายบวมถูกคำนวณ โดยสมการต่อไปนี้:บวมพลังงาน = Wp/Wdเปิด MathJaxละลาย = Ws / 0.5 × 100เปิด MathJax2.3. ความโปร่งใสฟโรอควีของแป้งมันฝรั่ง (1%, w/w) กับกรดอะมิโนระดับต่าง ๆ ถูกวางลงในบีกเกอร์ และเร่าร้อนในการต้มน้ำน้ำ (95 ° C) ความร้อนใน 30 นาที มีคู่มือกวน แล้ว ระงับ gelatinized เต็มแป้งถูกความร้อนด้วยอุณหภูมิห้อง กำหนด transmittance (%T) อย่างกับน้ำเปล่า ด้วย UV/VIS ก (แลมบ์ดา 35 เพอร์เอลเมอ Corp. สหรัฐอเมริกา) ที่ 650 nm (เคร็ก Maningat, Seib, & Hoseney, 1989)2.4. syneresis หลังจากหยุด – thawมันฝรั่งแป้งวาง (3%, w/w) กับกรดอะมิโนระดับต่าง ๆ ถูกจัดเตรียม โดยความร้อนที่ 95 ° C สำหรับ 20 นาทีในการอาบน้ำด้วยกวนด้วยตนเอง แล้ววางได้ชั่งน้ำหนัก (30 g) อย่างถูกต้องลงในเครื่องหมุนเหวี่ยงท่อ และเก็บไว้ในตู้เย็น (−25 ° C) ใน 24 ชม วางน้ำแข็งถูก thawed ที่อุณหภูมิห้องใน 6 h และ centrifuged ที่ 1950g สำหรับ 10 นาที วัด และแสดงเป็น syneresis (%) เปอร์เซ็นต์ของน้ำที่แยกจากกัน (Schmitz et al., 2006)2.5 การเตรียมเจแป้งมันฝรั่งกรดอะมิโน (1%, 5% และ 10% ตามแป้งน้ำหนัก, % w/w) มีน้ำหนัก และวางลงในบีกเกอร์ น้ำกลั่น (50 ml) เพิ่ม และจากนั้น ผสมกับแป้งมันฝรั่ง 3 g ระงับแป้งมันฝรั่ง (6%, w/w) กับระดับของกรดอะมิโนที่ได้รับ เจได้โดยความร้อนแป้งระงับที่ 95 ° C สำหรับ 20 นาทีในการอาบน้ำด้วยกวนด้วยตนเอง และ poured แล้ว ลงในขวดน้ำหนัก (40 mm เส้นผ่านศูนย์กลาง และ 25 มม.ลึก) ตัวอย่างถูกปิดผนึก ด้วยพลาสติกตัดเพื่อป้องกันการสูญเสียความชื้น และเก็บที่ 4 ° C ค้างคืน2.6 วัดสีมีดำเนินการวัดสีของเจในเป็นเครื่องฮันเตอร์แล็บ Ultra สแกน XE (ล่าปฏิบัติ Co., Ltd, Reston, VA สหรัฐอเมริกา) ที่อุณหภูมิ อุปกรณ์ที่เป็นมาตรฐาน มีจานสะท้อนมาตรฐานสีขาว (แฮนเซ่น Jackson, Wehling, Wilson, & Graybosch, 2010) ได้รับการบันทึกพารามิเตอร์สี (ค่า L∗, a∗ และ b∗) L∗ เป็นพารามิเตอร์ที่วัดสว่าง (0 =ดำ 100 =สีขาว), a∗ เป็นสีแดง หรือสีเขียว (ลบ =สีเขียว บวก =สีแดง), และ b∗ สีฟ้า หรือสีเหลือง (ลบ =สีน้ำเงิน บวก =เหลือง) ฮันเตอร์ L∗, a∗ และ b∗ ค่าถูกกำหนดใน triplicate2.7 วัดความแรงเจลความแข็งแรงของเจลถูกวัด โดย TA มีXTPlus วิเคราะห์เนื้อ (เนื้อเทคโนโลยี คอร์ป Scarsdale, NY สหรัฐอเมริกา) และการวิเคราะห์ทำใช้กลับไปเริ่มต้นแบบจำลอง ด้วยการทรงกระบอกโพรบ (P/0.5, 12.7 mm เส้นผ่านศูนย์กลาง), ซึ่งโปรแกรมการย้ายลงในอาหารรวม 40% ของความสูงเดิมที่ความเร็ว 2 mm/s และความเร็วในการทดสอบล่วงหน้า 1 ที่ mm/s ความเร็วทดสอบหลัง 5 มม./s เป็นทริกเกอร์บังคับของ 5 g ประเมินทั้งหมดถูกดำเนินใน triplicate แรงสูงสุด (N) ต้องการบีบตัวอย่างมีการบันทึกเป็นความแข็งแรงของเจล2.8 แบบทดสอบ rheologicalแบบทดสอบ rheological ที่ดำเนินการในการ AR2000ex ลารี่รีโอม (เครื่องมือ TA ปราสาทใหม่ DE สหรัฐอเมริกา) มีระบบแผ่นขนานเส้นผ่าศูนย์กลาง 40 มม. ขนาดช่องว่างถูกตั้งค่าที่ 1 มม. ต้องใช้และความถี่ของแองกูลาร์ (2% และ 5 rad/s), ซึ่งได้รับมาจากความเครียดและความถี่กวาดในช่วงเชิงเส้น ถูกตั้งค่าสำหรับการกำหนดทั้งหมด พักแป้งของ 20% (w/w) ความเข้มข้นเพิ่ม ด้วยกรดอะมิโนถูกโหลดลงใน pettier ของลารี่รีโอม และขอบนอกของระงับแป้งถูกปกคลุม ด้วยชั้นบาง ๆ ของน้ำมันซิลิโคนเพื่อลดการสูญเสียระเหย แป้งถูกความร้อนตัวอย่างจาก 20 ° C ถึง 100 ° C ในอัตรา 1 องศาเซลเซียส/นาทีเก็บโมดูลัส (G′) ได้รับ2.9. สถิติวิเคราะห์มีรายงานผลของสีและส.ส.ท.เป็นค่าเฉลี่ยส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐาน± (SD) สำหรับการวิเคราะห์ข้อมูล ค่าความแปรปรวนของการวิเคราะห์ (วิเคราะห์ความแปรปรวน) ที่ดำเนินการโดยใช้แพคเกจโปรแกรม (โปรแกรม 17.0 สำหรับ Windows โปรแกรม Inc ชิคาโก IL สหรัฐอเมริกา) ใช้ของดันแคนหลายช่วงทดสอบความแตกต่างระหว่างค่าเฉลี่ยของทรีทเมนต์หลากหลายขึ้น (P < 0.05)
การแปล กรุณารอสักครู่..
2. Materials and methods
2.1. Materials
Potato starch (Xue Guan Starch Company, Ning Xia, China) was provided after drying in the oven at 50 °C for three days. Six amino acids were used, including Lys and Arg (positively charged), Asp and Glu (negatively charged), and Phe and Met (neutral) (Biosharp, Korea).
2.2. Swelling power and solubility measurement
The swelling power and solubility of starch was measured using the procedure described by (Collado, 1997). Potato starch (0.5 g) with amino acids (1%, 5% and 10% on a starch weight basis, % w/w) was suspended in a beaker with 25 mL of distilled water, and then heated in a water bath at 70 °C for 30 min with manual stirring. The control was starch sample without amino acids. After cooling to room temperature and transferring to a 50 ml centrifuge tube, the starch suspension was centrifuged at 1950g for 30 min at 20 °C. The resulting supernatant was placed in a petri dish and dried at 105 °C to constant weight (Ws). The precipitate was weighed (Wp) and also dried at 105 °C for 24 h to obtain a constant weight (Wd). The swelling power and solubility was calculated by the following equation:
Swelling Power=Wp/Wd
Turn MathJax on
Solubility=Ws/0.5×100
Turn MathJax on
2.3. Transparency
Aqueous suspensions of potato starch (1%, w/w) with different levels of amino acids were placed in the beaker and heated in boiling water bath (95 °C) heating for 30 min with manual stirring. Then, fully gelatinized starch suspension was cooled to room temperature. The transmittance (%T) of samples was determined against water blank with UV/VIS spectroscopy (Lambda 35, Perkin Elmer Corp., USA) at 650 nm (Craig, Maningat, Seib, & Hoseney, 1989).
2.4. Syneresis after freeze–thaw
Potato starch pastes (3%, w/w) with different levels of amino acids were prepared by heating at 95 °C for 20 min in a water bath with manual stirring. Then the pastes were weighed (30 g) accurately into centrifuge tubes and stored in a freezer (−25 °C) for 24 h. The frozen pastes were thawed at room temperature for 6 h and centrifuged at 1950g for 10 min. The percentage of water separated was measured and expressed as the syneresis (%) ( Schmitz et al., 2006).
2.5. Preparation of potato starch gels
Amino acids (1%, 5% and 10% on a starch weight basis, % w/w) were weighed and placed into beaker. Distilled water (50 ml) was added and then mixed with 3 g potato starch. The potato starch suspension (6%, w/w) with different levels of amino acids were obtained. The gels were prepared by heating starch suspension at 95 °C for 20 min in a water bath with manual stirring and then poured into the weighing bottle (40 mm in diameter and 25 mm in depth). The samples were sealed with plastic wrap to prevent moisture loss and stored at 4 °C overnight.
2.6. Colour measurement
Colour measurements of gels were performed in a Hunter Lab Ultra Scan XE colorimeter (Hunter Lab Co., Ltd, Reston, VA, USA) at ambient temperature. The equipment was standardized with a standard-white reflection plate (Hansen, Jackson, Wehling, Wilson, & Graybosch, 2010). The colour parameters (L∗, a∗ and b∗ values) were recorded. L∗ is the parameter that measures lightness (0 = black, 100 = white), a∗ is red or green colour (negative = green, positive = red), and b∗ is blue or yellow colour (negative = blue, positive = yellow). The Hunter L∗, a∗ and b∗ values were determined in triplicate.
2.7. Gel strength measurement
Gel strength was measured by a TA.XTPlus Texture Analyzer (Texture Technologies Corp, Scarsdale, NY, USA) and analyses were made using return to start model with a cylindrical probe (P/0.5, 12.7 mm in diameter), which was programmed to move downwards for a compression ration of 40% of the original height at a speed of 2 mm/s and a pre-test speed of 1 mm/s, a post-test speed of 5 mm/s as well as a trigger force of 5 g. All measurements were carried out in triplicate. The maximum force (N) required to compress the sample was recorded as gel strength.
2.8. Dynamic rheological testing
Dynamic rheological testing was performed on an AR2000ex Rheometer (TA Instruments, New Castle, DE, USA) equipped with 40 mm diameter parallel plate system. The gap size was set at 1 mm. The strain and angular frequency (2% and 5 rad/s), which were obtained from stress and frequency sweep in the linear range, were set for all determination. Starch suspensions of 20% (w/w) concentration added with amino acids were loaded onto the pettier of rheometer and the outer edge of the starch suspension was covered with a thin layer of silicone oil to minimize evaporation loss. The starch samples were heated from 20 °C to 100 °C at the rate of 1 °C/min. Storage modulus (G′) was obtained.
2.9. Statistical analysis
Results of colour and TPA were reported as mean values ± standard deviation (SD). For data analysis, the analysis of variance (ANOVA) was performed using a SPSS package (SPSS 17.0 for Windows, SPSS Inc, Chicago, IL, US). Differences among the mean values of various treatments were made using Duncan’s multiple range test (P < 0.05).
2.1. Materials
Potato starch (Xue Guan Starch Company, Ning Xia, China) was provided after drying in the oven at 50 °C for three days. Six amino acids were used, including Lys and Arg (positively charged), Asp and Glu (negatively charged), and Phe and Met (neutral) (Biosharp, Korea).
2.2. Swelling power and solubility measurement
The swelling power and solubility of starch was measured using the procedure described by (Collado, 1997). Potato starch (0.5 g) with amino acids (1%, 5% and 10% on a starch weight basis, % w/w) was suspended in a beaker with 25 mL of distilled water, and then heated in a water bath at 70 °C for 30 min with manual stirring. The control was starch sample without amino acids. After cooling to room temperature and transferring to a 50 ml centrifuge tube, the starch suspension was centrifuged at 1950g for 30 min at 20 °C. The resulting supernatant was placed in a petri dish and dried at 105 °C to constant weight (Ws). The precipitate was weighed (Wp) and also dried at 105 °C for 24 h to obtain a constant weight (Wd). The swelling power and solubility was calculated by the following equation:
Swelling Power=Wp/Wd
Turn MathJax on
Solubility=Ws/0.5×100
Turn MathJax on
2.3. Transparency
Aqueous suspensions of potato starch (1%, w/w) with different levels of amino acids were placed in the beaker and heated in boiling water bath (95 °C) heating for 30 min with manual stirring. Then, fully gelatinized starch suspension was cooled to room temperature. The transmittance (%T) of samples was determined against water blank with UV/VIS spectroscopy (Lambda 35, Perkin Elmer Corp., USA) at 650 nm (Craig, Maningat, Seib, & Hoseney, 1989).
2.4. Syneresis after freeze–thaw
Potato starch pastes (3%, w/w) with different levels of amino acids were prepared by heating at 95 °C for 20 min in a water bath with manual stirring. Then the pastes were weighed (30 g) accurately into centrifuge tubes and stored in a freezer (−25 °C) for 24 h. The frozen pastes were thawed at room temperature for 6 h and centrifuged at 1950g for 10 min. The percentage of water separated was measured and expressed as the syneresis (%) ( Schmitz et al., 2006).
2.5. Preparation of potato starch gels
Amino acids (1%, 5% and 10% on a starch weight basis, % w/w) were weighed and placed into beaker. Distilled water (50 ml) was added and then mixed with 3 g potato starch. The potato starch suspension (6%, w/w) with different levels of amino acids were obtained. The gels were prepared by heating starch suspension at 95 °C for 20 min in a water bath with manual stirring and then poured into the weighing bottle (40 mm in diameter and 25 mm in depth). The samples were sealed with plastic wrap to prevent moisture loss and stored at 4 °C overnight.
2.6. Colour measurement
Colour measurements of gels were performed in a Hunter Lab Ultra Scan XE colorimeter (Hunter Lab Co., Ltd, Reston, VA, USA) at ambient temperature. The equipment was standardized with a standard-white reflection plate (Hansen, Jackson, Wehling, Wilson, & Graybosch, 2010). The colour parameters (L∗, a∗ and b∗ values) were recorded. L∗ is the parameter that measures lightness (0 = black, 100 = white), a∗ is red or green colour (negative = green, positive = red), and b∗ is blue or yellow colour (negative = blue, positive = yellow). The Hunter L∗, a∗ and b∗ values were determined in triplicate.
2.7. Gel strength measurement
Gel strength was measured by a TA.XTPlus Texture Analyzer (Texture Technologies Corp, Scarsdale, NY, USA) and analyses were made using return to start model with a cylindrical probe (P/0.5, 12.7 mm in diameter), which was programmed to move downwards for a compression ration of 40% of the original height at a speed of 2 mm/s and a pre-test speed of 1 mm/s, a post-test speed of 5 mm/s as well as a trigger force of 5 g. All measurements were carried out in triplicate. The maximum force (N) required to compress the sample was recorded as gel strength.
2.8. Dynamic rheological testing
Dynamic rheological testing was performed on an AR2000ex Rheometer (TA Instruments, New Castle, DE, USA) equipped with 40 mm diameter parallel plate system. The gap size was set at 1 mm. The strain and angular frequency (2% and 5 rad/s), which were obtained from stress and frequency sweep in the linear range, were set for all determination. Starch suspensions of 20% (w/w) concentration added with amino acids were loaded onto the pettier of rheometer and the outer edge of the starch suspension was covered with a thin layer of silicone oil to minimize evaporation loss. The starch samples were heated from 20 °C to 100 °C at the rate of 1 °C/min. Storage modulus (G′) was obtained.
2.9. Statistical analysis
Results of colour and TPA were reported as mean values ± standard deviation (SD). For data analysis, the analysis of variance (ANOVA) was performed using a SPSS package (SPSS 17.0 for Windows, SPSS Inc, Chicago, IL, US). Differences among the mean values of various treatments were made using Duncan’s multiple range test (P < 0.05).
การแปล กรุณารอสักครู่..
2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . แป้งมัน วัสดุ
( Xue กวนแป้ง บริษัท หนิงเซียะ ประเทศจีน ) คือให้ หลังจากการอบแห้งในเตาอบที่อุณหภูมิ 50 องศาซี เป็นเวลา 3 วัน หกกรดอะมิโนที่ใช้ ได้แก่ ไลซีน และไม่ดี ( ประจุบวก ) , ASP และ GLU ( ประจุลบ ) และเพและพบ ( กลาง ) ( biosharp เกาหลี ) .
. . การพองตัวและ
การวัดการละลายมีการพองตัว และการละลายของแป้งที่ถูกวัดโดยใช้วิธีการที่อธิบายโดย ( COLLADO , 1997 ) แป้งมันฝรั่ง ( 0.5 กรัม ) กับกรดอะมิโน ( 1% , 5% และ 10% ในแป้งน้ำหนักพื้นฐาน , % w / w ) ถูกระงับในบีกเกอร์ที่มี 25 มล. น้ำกลั่น แล้วอุ่นในอ่างน้ำที่ 70 องศา C เป็นเวลา 30 นาที พร้อม คู่มือ กวน การควบคุมคือตัวอย่างแป้งปราศจากกรดอะมิโนหลังจากเย็นเพื่ออุณหภูมิห้องและการถ่ายโอนไปยัง 50 ml centrifuge หลอด แป้งระงับได้ระดับที่ 1950g สำหรับ 30 นาทีที่ 20 ° C ซึ่งนำลงในจานเพาะเชื้อและแห้งที่ 105 ° C น้ำหนักคงที่ ( WS ) ที่เป็นหนัก ( WP ) และ อบแห้งที่อุณหภูมิ 105 องศา C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง เพื่อให้ได้น้ำหนักคงที่ ( WD )มีการพองตัว และการละลายถูกคำนวณโดยสมการต่อไปนี้ :
การพองตัว = WP / WD
เปิด mathjax ในการละลาย = WS / 0.5 × 100
เปิด mathjax บน 2.3 ความโปร่งใสของสารละลายแขวนลอย
แป้งมัน ( 1% w / w ) ที่มีระดับที่แตกต่างกันของกรดอะมิโนอยู่ในบีกเกอร์และอุ่นในอ่างน้ำเดือด ( 95 องศา C ) 30 นาที พร้อม คู่มือ เครื่องกวน จากนั้นเต็มที่ได้แป้งระงับมันเย็นที่อุณหภูมิห้อง ส่องผ่าน ( % ) ของตัวอย่างที่ถูกกำหนดกับน้ำเปล่ากับ UV / VIS spectroscopy ( แลมบ์ดาเพอร์กินเอลเมอร์ 35 . , USA ) ที่ 650 nm ( Craig maningat ซิบ , & hoseney , 1989 ) .
2.4 . น้ำละลายหลังแช่แข็ง–
แป้งมันฝรั่งวาง ( 3 %w / w ) ที่มีระดับที่แตกต่างกันของกรดอะมิโนที่เตรียมจากความร้อนที่อุณหภูมิ 95 องศา C เป็นเวลา 20 นาทีในน้ำอาบพร้อม คู่มือ กวน แล้วฉันก็หนัก ( 30 กรัม ) ที่ถูกต้องลงในหลอดปั่นเหวี่ยงและเก็บไว้ในช่องแช่แข็ง ( − 25 ° C ) เป็นเวลา 24 ชั่วโมง วางถูกแช่แข็งละลายที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 6 ชั่วโมงและระดับที่ 1950g นาน 10 นาทีร้อยละของน้ำแยกวัดและแสดงเป็น น้ำ ( % ) ( ชมิดส์ et al . , 2006 ) .
2.5 เตรียมมันฝรั่งแป้งเจล
กรดอะมิโน ( 1% , 5% และ 10% ในแป้งน้ำหนักพื้นฐาน , % w / w ) และมีน้ำหนักอยู่ในบีกเกอร์ . น้ำกลั่น ( 50 มล. ) เพิ่มแล้วผสมกับ 3 กรัมมันฝรั่งแป้ง มันฝรั่งแป้งระงับ ( 6 %w / w ) ที่มีระดับที่แตกต่างกันของกรดอะมิโนที่ได้รับ เจล เตรียมแป้งระงับความร้อน 95 องศา C เป็นเวลา 20 นาทีในน้ำอาบพร้อม คู่มือ กวน แล้วเทลงไปในขวดชั่ง ( 40 มม. และ 25 มม. ความลึก ) ตัวอย่างที่ปิดผนึกด้วยพลาสติกเพื่อป้องกันการสูญเสียความชุ่มชื้นและเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 4 องศา C ค้างคืน
2.6
การวัดสีเจลสีและจำนวนในฮันเตอร์ ( Hunter Lab Ultra Scan XE colorimeter Lab Co . , Ltd , Reston , VA , USA ) ที่อุณหภูมิห้อง อุปกรณ์ที่ได้มาตรฐาน ด้วยจานสะท้อนแสงสีขาวมาตรฐาน ( Hansen , แจ็คสัน , wehling , วิลสัน , & graybosch , 2010 ) ค่าสี ( L ∗ , ∗และ B ∗ค่า ) ถูกบันทึกไว้ ผม∗เป็นพารามิเตอร์ที่ความสว่างมาตรการ ( 0 = สีดำ100 = ขาว ) , ∗เป็นสีแดงหรือสีเขียวสี ( ลบ = สีเขียว บวก = สีแดง ) และ B ∗เป็นสีฟ้าหรือสีเหลืองสี ( ลบ = สีฟ้า , บวก = สีเหลือง ) ฮันเตอร์ ผม∗ , ∗และ B ∗ค่าคำนวณทั้งสามใบ
2.7 . การวัดค่าความแข็งแรงของเจล
ค่าความแข็งแรงของเจลถูกวัดด้วยเครื่องวิเคราะห์เนื้อสัมผัส ( texture ta.xtplus เทคโนโลยีคอร์ป , เชล นิวยอร์กสหรัฐอเมริกา ) และวิเคราะห์ข้อมูลทำโดยใช้กลับไปเริ่มต้นกับรูปแบบการสอบสวนทรงกระบอก ( P / 0.5 , 1.0 มม. ) ซึ่งเป็นโปรแกรมที่จะย้ายลงสำหรับการบีบอัด ส่วน 40% ของความสูงเดิมที่ความเร็ว 2 mm / s และทดสอบความเร็วของ 1 มิลลิเมตร / วินาที ทดสอบโพสต์ ความเร็ว 5 mm / s เช่นเดียวกับการเรียกแรง 5 . วัดทั้งหมด พบว่าทั้งสามใบพลังสูงสุด ( N ) ต้องอัดตัวอย่างถูกบันทึกไว้เป็นค่าความแข็งแรงของเจล
2.8 . การทดสอบการไหลแบบไดนามิก
แบบทดสอบในการ ar2000ex รีโอ ( ใช้ทา New Castle , เดอ , USA ) ซึ่งมีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 40 มม. แบบจานระบบ ช่องว่างขนาดเท่ากับ 1 มิลลิเมตร ความเครียดและความถี่เชิงมุม ( 2 % และ 5 rad / s )ซึ่งได้จากความเครียดและความถี่กวาดในช่วงเชิงเส้นถูกตั้งค่าสำหรับทุกการตัดสินใจ แป้งรับน้ำหนัก 20 % ( w / w ) ความเข้มข้นเพิ่มกับกรดอะมิโนถูกโหลดลงบน pettier ของรีโอ และขอบนอกของแป้งระงับถูกปกคลุมด้วยชั้นบาง ๆของน้ำมันเพื่อลดการสูญเสีย การระเหยแป้งอุ่นจาก 20 ° C จำนวน 100 ° C ที่อัตรา 1 กระเป๋า° C ต่อนาที modulus ( G ’ ) ได้
2.9 . สถิติวิเคราะห์
ผลสีและ สสท. มีรายงานเป็นค่าเฉลี่ย±ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐาน ( SD ) เพื่อการวิเคราะห์ข้อมูล การวิเคราะห์ความแปรปรวน ( ANOVA ) การใช้โปรแกรมสำเร็จรูป ( SPSS 17.0 สำหรับ Windows , โปรแกรม SPSS Inc , ชิคาโก , อิลลินอยส์ , สหรัฐอเมริกา )ความแตกต่างระหว่างค่าเฉลี่ยของทรีทเมนต์ต่าง ๆถูกสร้างโดยใช้ Duncan ' s Multiple Range Test ( P < 0.05 )
2.1 . แป้งมัน วัสดุ
( Xue กวนแป้ง บริษัท หนิงเซียะ ประเทศจีน ) คือให้ หลังจากการอบแห้งในเตาอบที่อุณหภูมิ 50 องศาซี เป็นเวลา 3 วัน หกกรดอะมิโนที่ใช้ ได้แก่ ไลซีน และไม่ดี ( ประจุบวก ) , ASP และ GLU ( ประจุลบ ) และเพและพบ ( กลาง ) ( biosharp เกาหลี ) .
. . การพองตัวและ
การวัดการละลายมีการพองตัว และการละลายของแป้งที่ถูกวัดโดยใช้วิธีการที่อธิบายโดย ( COLLADO , 1997 ) แป้งมันฝรั่ง ( 0.5 กรัม ) กับกรดอะมิโน ( 1% , 5% และ 10% ในแป้งน้ำหนักพื้นฐาน , % w / w ) ถูกระงับในบีกเกอร์ที่มี 25 มล. น้ำกลั่น แล้วอุ่นในอ่างน้ำที่ 70 องศา C เป็นเวลา 30 นาที พร้อม คู่มือ กวน การควบคุมคือตัวอย่างแป้งปราศจากกรดอะมิโนหลังจากเย็นเพื่ออุณหภูมิห้องและการถ่ายโอนไปยัง 50 ml centrifuge หลอด แป้งระงับได้ระดับที่ 1950g สำหรับ 30 นาทีที่ 20 ° C ซึ่งนำลงในจานเพาะเชื้อและแห้งที่ 105 ° C น้ำหนักคงที่ ( WS ) ที่เป็นหนัก ( WP ) และ อบแห้งที่อุณหภูมิ 105 องศา C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง เพื่อให้ได้น้ำหนักคงที่ ( WD )มีการพองตัว และการละลายถูกคำนวณโดยสมการต่อไปนี้ :
การพองตัว = WP / WD
เปิด mathjax ในการละลาย = WS / 0.5 × 100
เปิด mathjax บน 2.3 ความโปร่งใสของสารละลายแขวนลอย
แป้งมัน ( 1% w / w ) ที่มีระดับที่แตกต่างกันของกรดอะมิโนอยู่ในบีกเกอร์และอุ่นในอ่างน้ำเดือด ( 95 องศา C ) 30 นาที พร้อม คู่มือ เครื่องกวน จากนั้นเต็มที่ได้แป้งระงับมันเย็นที่อุณหภูมิห้อง ส่องผ่าน ( % ) ของตัวอย่างที่ถูกกำหนดกับน้ำเปล่ากับ UV / VIS spectroscopy ( แลมบ์ดาเพอร์กินเอลเมอร์ 35 . , USA ) ที่ 650 nm ( Craig maningat ซิบ , & hoseney , 1989 ) .
2.4 . น้ำละลายหลังแช่แข็ง–
แป้งมันฝรั่งวาง ( 3 %w / w ) ที่มีระดับที่แตกต่างกันของกรดอะมิโนที่เตรียมจากความร้อนที่อุณหภูมิ 95 องศา C เป็นเวลา 20 นาทีในน้ำอาบพร้อม คู่มือ กวน แล้วฉันก็หนัก ( 30 กรัม ) ที่ถูกต้องลงในหลอดปั่นเหวี่ยงและเก็บไว้ในช่องแช่แข็ง ( − 25 ° C ) เป็นเวลา 24 ชั่วโมง วางถูกแช่แข็งละลายที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 6 ชั่วโมงและระดับที่ 1950g นาน 10 นาทีร้อยละของน้ำแยกวัดและแสดงเป็น น้ำ ( % ) ( ชมิดส์ et al . , 2006 ) .
2.5 เตรียมมันฝรั่งแป้งเจล
กรดอะมิโน ( 1% , 5% และ 10% ในแป้งน้ำหนักพื้นฐาน , % w / w ) และมีน้ำหนักอยู่ในบีกเกอร์ . น้ำกลั่น ( 50 มล. ) เพิ่มแล้วผสมกับ 3 กรัมมันฝรั่งแป้ง มันฝรั่งแป้งระงับ ( 6 %w / w ) ที่มีระดับที่แตกต่างกันของกรดอะมิโนที่ได้รับ เจล เตรียมแป้งระงับความร้อน 95 องศา C เป็นเวลา 20 นาทีในน้ำอาบพร้อม คู่มือ กวน แล้วเทลงไปในขวดชั่ง ( 40 มม. และ 25 มม. ความลึก ) ตัวอย่างที่ปิดผนึกด้วยพลาสติกเพื่อป้องกันการสูญเสียความชุ่มชื้นและเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 4 องศา C ค้างคืน
2.6
การวัดสีเจลสีและจำนวนในฮันเตอร์ ( Hunter Lab Ultra Scan XE colorimeter Lab Co . , Ltd , Reston , VA , USA ) ที่อุณหภูมิห้อง อุปกรณ์ที่ได้มาตรฐาน ด้วยจานสะท้อนแสงสีขาวมาตรฐาน ( Hansen , แจ็คสัน , wehling , วิลสัน , & graybosch , 2010 ) ค่าสี ( L ∗ , ∗และ B ∗ค่า ) ถูกบันทึกไว้ ผม∗เป็นพารามิเตอร์ที่ความสว่างมาตรการ ( 0 = สีดำ100 = ขาว ) , ∗เป็นสีแดงหรือสีเขียวสี ( ลบ = สีเขียว บวก = สีแดง ) และ B ∗เป็นสีฟ้าหรือสีเหลืองสี ( ลบ = สีฟ้า , บวก = สีเหลือง ) ฮันเตอร์ ผม∗ , ∗และ B ∗ค่าคำนวณทั้งสามใบ
2.7 . การวัดค่าความแข็งแรงของเจล
ค่าความแข็งแรงของเจลถูกวัดด้วยเครื่องวิเคราะห์เนื้อสัมผัส ( texture ta.xtplus เทคโนโลยีคอร์ป , เชล นิวยอร์กสหรัฐอเมริกา ) และวิเคราะห์ข้อมูลทำโดยใช้กลับไปเริ่มต้นกับรูปแบบการสอบสวนทรงกระบอก ( P / 0.5 , 1.0 มม. ) ซึ่งเป็นโปรแกรมที่จะย้ายลงสำหรับการบีบอัด ส่วน 40% ของความสูงเดิมที่ความเร็ว 2 mm / s และทดสอบความเร็วของ 1 มิลลิเมตร / วินาที ทดสอบโพสต์ ความเร็ว 5 mm / s เช่นเดียวกับการเรียกแรง 5 . วัดทั้งหมด พบว่าทั้งสามใบพลังสูงสุด ( N ) ต้องอัดตัวอย่างถูกบันทึกไว้เป็นค่าความแข็งแรงของเจล
2.8 . การทดสอบการไหลแบบไดนามิก
แบบทดสอบในการ ar2000ex รีโอ ( ใช้ทา New Castle , เดอ , USA ) ซึ่งมีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 40 มม. แบบจานระบบ ช่องว่างขนาดเท่ากับ 1 มิลลิเมตร ความเครียดและความถี่เชิงมุม ( 2 % และ 5 rad / s )ซึ่งได้จากความเครียดและความถี่กวาดในช่วงเชิงเส้นถูกตั้งค่าสำหรับทุกการตัดสินใจ แป้งรับน้ำหนัก 20 % ( w / w ) ความเข้มข้นเพิ่มกับกรดอะมิโนถูกโหลดลงบน pettier ของรีโอ และขอบนอกของแป้งระงับถูกปกคลุมด้วยชั้นบาง ๆของน้ำมันเพื่อลดการสูญเสีย การระเหยแป้งอุ่นจาก 20 ° C จำนวน 100 ° C ที่อัตรา 1 กระเป๋า° C ต่อนาที modulus ( G ’ ) ได้
2.9 . สถิติวิเคราะห์
ผลสีและ สสท. มีรายงานเป็นค่าเฉลี่ย±ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐาน ( SD ) เพื่อการวิเคราะห์ข้อมูล การวิเคราะห์ความแปรปรวน ( ANOVA ) การใช้โปรแกรมสำเร็จรูป ( SPSS 17.0 สำหรับ Windows , โปรแกรม SPSS Inc , ชิคาโก , อิลลินอยส์ , สหรัฐอเมริกา )ความแตกต่างระหว่างค่าเฉลี่ยของทรีทเมนต์ต่าง ๆถูกสร้างโดยใช้ Duncan ' s Multiple Range Test ( P < 0.05 )
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- ณัฐภัทร เหล่ามัง
- Yes honey. Dr. tooth fillings and polish
- What do you mean?
- Lack of desire to do the right thing, or
- เมาหรือยัง
- Too bad
- Eliminate lichen in water supply
- มันจะถูกนำออกมาโดยตัวนำความร้อน คือ น้ำ
- ครบกันไปนานๆก่อน
- มะเดื่อ
- แล้วปีนี้ไปไหนดีล่ะ
- มะเดื่อ
- A ploblem caused the program to stop wor
- 你很生气。愤怒的你. 生你的气。
- Data level parallel (DLP) can be accompl
- ผมไซเล็กครับ
- Data level parallel (DLP) can be accompl
- ผมไซเล็กครับ
- Thanks to follow me.ผลลัพธ์ (ภาษาญี่ปุ่น
- so that we can see our selfs
- ฉันรักแปลi wash your hands
- เมื่อเช้า
- Also, we will highlight some advantages
- ทำให้อวัยวะนั้นๆ คงทำหน้าที่ได้ตามปกติ
