from five randomly selected farm va

from five randomly selected farm vats within each region. An effort was
made to avoid testing any supply more than once during the study. The
outcomewas that 297 sampleswere actually collected during the study:
Northland— 54 samples from53 suppliers;Waikato — 54 samples from
48 suppliers; Taranaki/Manawatu — 60 samples from 60 suppliers;
Canterbury — 64 samples from 64 suppliers; Southland — 65 samples
from 65 suppliers. Only seven farm vats were sampled more than once
during the entire study.
2.2. Microbiological analyses
The samples were analysed for Staphylococcus aureus and
Escherichia coli using agar enumeration methods, and for the presence
of E. coli O157:H7, Listeria, Campylobacter and Salmonella according to
standard enrichment methods described in Table 1.
In order to estimate concentrations of E. coli O157:H7, Listeria,
Campylobacter and Salmonella, a modified most probable number
(MPN) method was developed (Table 2) and used to analyse samples
enriched using standard procedures. In this approach, 25, 10 and 1 ml
portions of each milk sample were enriched using the appropriate
enrichment methods (Table 1). The application of the modified
MPN approach allowed a large number of samples to be screened to
detect low numbers of pathogens. To minimise cost, all three subsamples
(25, 10, 1 ml) were enriched; however, initially, only the 25 ml
sample was screened with the appropriate rapid method (Table 1).
If the 25 ml sample returned a positive result, the 10 and 1 ml
enriched samples were also screened immediately. However, if the
25 ml sample returned a negative result, the 10 and 1 ml enrichment
samples were discarded. For the pathogens enumerated using this
modified MPN technique, a MPN result could be calculated from the
25, 10 and 1 ml results using Table 2.
3. Results and discussion
Fig. 1 presents the enumeration results for S. aureus (

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

จาก vats ฟาร์มเลือกสุ่มห้าภายในแต่ละภูมิภาค มีความพยายามทำเพื่อหลีกเลี่ยงการทดสอบการมากกว่าหนึ่งครั้งในระหว่างการศึกษา ที่outcomewas sampleswere 297 ที่จริง รวบรวมในระหว่างการศึกษา:นอร์ทแลนด์ — 54 ตัวอย่าง from53 ซัพพลายเออร์ ไวกาโต้ซึ่งตัวอย่างที่ 54 จากจำหน่าย 48 Taranaki/จัด นี้ — 60 ตัวอย่างจากซัพพลายเออร์ 60แคนเทอบิวรี่ — ตัวอย่าง 64 จากซัพพลายเออร์ 64 เซาท์แลนด์รีซอร์ซ — 65 ตัวอย่างจาก 65 จำหน่าย เฉพาะเซเว่นฟาร์ม vats มีตัวอย่างมากกว่าหนึ่งครั้งในระหว่างการศึกษาทั้งหมด2.2 การทางจุลชีววิทยาวิเคราะห์ตัวอย่างถูก analysed สำหรับ Staphylococcus หมอเทศข้างลาย และEscherichia coli โดยใช้วิธีการแจงนับ agar และสถานะE. coli Campylobacter O157:H7 ออลิ และสายตามวิธีการขอมาตรฐานที่อธิบายไว้ในตารางที่ 1การประเมินความเข้มข้นของ E. coli O157:H7 ออลิCampylobacter และสาย การปรับเปลี่ยนหมายเลขน่าเป็นที่สุดถูกวิธี (บริษัทเอ็มพีเอ็น) (ตารางที่ 2) พัฒนา และใช้ในการวิเคราะห์ตัวอย่างอุดมไปใช้กระบวนการมาตรฐาน ในวิธีการนี้ 25, 10 และ 1 mlบางส่วนของแต่ละตัวอย่างนมอุดมไปใช้งานขอวิธี (ตารางที่ 1) แอพลิเคชันของการปรับเปลี่ยนบริษัทเอ็มพีเอ็นวิธีอนุญาตให้ใช้จำนวนตัวอย่างจะมีฉายให้ตรวจสอบหมายเลขต่ำสุดของโรค เพื่อลดต้นทุน subsamples ทั้งหมด 3(25, 10, 1 ml) อุดมไป อย่างไรก็ตาม เริ่ม เท่า 25 mlตัวอย่างถูกฉาย ด้วยวิธีการอย่างรวดเร็วเหมาะสม (ตารางที่ 1)ถ้าตัวอย่าง 25 ml ส่งกลับผลลัพธ์บวก ml 10 และ 1ตัวอย่างอุดมก็ยังฉายทันที อย่างไรก็ตาม ถ้าการตัวอย่าง 25 ml ส่งกลับผลลัพธ์ติดลบ บ่อ ml 10 และ 1ตัวอย่างที่ถูกละทิ้ง สำหรับโรคที่ใช้ระบุปรับเปลี่ยนเทคนิคบริษัทเอ็มพีเอ็น บริษัทเอ็มพีเอ็นผลลัพธ์สามารถคำนวณได้จากการ25, 10 และ 1 ml มีผลลัพธ์จากการใช้ตารางที่ 23. ผลลัพธ์ และสนทนาFig. 1 นำเสนอผลการแจงนับสำหรับ S. (หมอเทศข้างลาย

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

จากห้าสุ่มเลือกถังฟาร์มที่อยู่ในแต่ละภูมิภาค ความพยายามที่ถูกสร้างขึ้นมาเพื่อหลีกเลี่ยงการทดสอบอุปทานใด ๆ มากกว่าหนึ่งครั้งในระหว่างการศึกษา outcomewas ที่ 297 sampleswere จริงที่เก็บรวบรวมในระหว่างการศึกษา: Northland- 54 ตัวอย่าง from53 ซัพพลายเออร์; Waikato - 54 ตัวอย่างจาก48 ซัพพลายเออร์; Taranaki / Manawatu - 60 ตัวอย่างจาก 60 ซัพพลายเออร์แคนเทอร์- 64 ตัวอย่างจาก 64 ซัพพลายเออร์; เซาท์แลนด์ - 65 ตัวอย่างจาก65 ซัพพลายเออร์ เพียงเจ็ดถังฟาร์มเก็บตัวอย่างมากกว่าหนึ่งครั้งในระหว่างการศึกษาทั้งหมด. 2.2 วิเคราะห์ทางจุลชีววิทยากลุ่มตัวอย่างที่ได้มาวิเคราะห์หาเชื้อ Staphylococcus aureus และเชื้อ Escherichia coli โดยใช้วิธีการนับวุ้นและสำหรับการปรากฏตัวของเชื้อE. coli O157: H7, Listeria, Campylobacter และ Salmonella ตามวิธีการตกแต่งมาตรฐานที่อธิบายไว้ในตารางที่1 เพื่อประเมินความเข้มข้นของ เชื้อ E. coli O157: H7, Listeria, Campylobacter และ Salmonella, แก้ไขจำนวนน่าจะเป็นที่สุด(MPN) ได้รับการพัฒนาวิธีการ (ตารางที่ 2) และใช้ในการวิเคราะห์ตัวอย่างที่อุดมไปโดยใช้วิธีการมาตรฐาน ในวิธีนี้, 25, 10 และ 1 มิลลิลิตรส่วนของแต่ละตัวอย่างนมที่ถูกผสานการใช้ที่เหมาะสมวิธีการเพิ่มคุณค่า(ตารางที่ 1) การประยุกต์ใช้การปรับเปลี่ยนวิธีเอ็มพีเอ็นได้รับอนุญาตเป็นจำนวนมากของกลุ่มตัวอย่างที่จะได้รับการคัดเลือกในการตรวจสอบตัวเลขที่ต่ำของเชื้อโรค เพื่อลดค่าใช้จ่ายทั้งสาม subsamples (25, 10, 1 มล.) ได้รับการอุดม; แต่ในขั้นต้นเพียง 25 มล. ตัวอย่างคือการคัดเลือกด้วยวิธีการที่รวดเร็วที่เหมาะสม (ตารางที่ 1). ถ้า 25 มลตัวอย่างกลับผลบวก, 10 และ 1 มล. อุดมตัวอย่างนอกจากนี้ยังได้รับการคัดเลือกทันที แต่ถ้า25 มลตัวอย่างกลับเป็นผลลบ 10 มล. 1 และเพิ่มคุณค่าตัวอย่างที่ถูกทิ้ง สำหรับเชื้อโรคแจกแจงใช้นี้มีการปรับเปลี่ยนเทคนิค MPN เป็นผล MPN อาจจะคำนวณจาก 25 และ 10 มล. 1 ผลการใช้ตารางที่ 2 3 และการอภิปรายผลมะเดื่อ 1 นำเสนอผลการนับสำหรับเชื้อ S. aureus (

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

จากห้าสุ่มฟาร์มถังในแต่ละภูมิภาค ความพยายามที่จะหลีกเลี่ยงการทดสอบใด ๆที่จัดหา
ทำมากกว่าหนึ่งครั้งในช่วงระยะเวลาที่ศึกษา
outcomewas ที่จำนวน 297 จริงรวบรวมได้ในระหว่างการศึกษา :
เมืองเหนือ - 54 ตัวอย่าง from53 ซัพพลายเออร์ ; Waikato - 54 ตัวอย่างจาก
48 ซัพพลายเออร์ ; Taranaki / บัตร - 60 คน จาก 60 เป็นซัพพลายเออร์ ;
Canterbury - 64 จาก 64 จำนวนซัพพลายเออร์ ;นักรบ - 65 ตัวอย่าง
จาก 65 ซัพพลายเออร์ เพียงเจ็ดฟาร์มถัง จำนวนครั้งมากกว่า
ในระหว่างการศึกษาทั้งหมด
2.2 . การวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยา
วิเคราะห์หาเชื้อ Staphylococcus aureus และ Escherichia coli โดยใช้วิธีการแจกแจงวุ้น

และการแสดงตนเป็นสมาชิกของ E . coli ) รวมทั้งเชื้อ Listeria และ , ตามมาตรฐานวิธีการอธิบายไว้ในโต๊ะเสริม

1 .เพื่อประมาณความเข้มข้นของเชื้อ E . coli เป็นสมาชิก ) Listeria
ประกวด , Salmonella , แก้ไขตัวเลขน่าจะเป็นที่สุด
( MPN ) วิธีการพัฒนา ( ตารางที่ 2 ) และใช้เพื่อวิเคราะห์ตัวอย่าง
อุดมการใช้ขั้นตอนมาตรฐาน ในวิธีนี้ , 25 , 10 , และ 1 ml
แต่ละส่วนนมจำนวนด้วยวิธีการที่เหมาะสม
( ตารางที่ 1 ) การแก้ไข
วิธีการกำจัดที่ได้รับอนุญาตเป็นจำนวนมากของกลุ่มตัวอย่างจะคัด

ตรวจสอบต่ำจำนวนของเชื้อโรค เพื่อลดต้นทุน ทั้งสาม subsamples
( 25 , 10 , 1 มิลลิลิตรด้วย อย่างไรก็ตาม เริ่มต้นเพียง 25 ml
ตัวอย่างฉายด้วยวิธีที่รวดเร็วที่เหมาะสม ( ตารางที่ 1 ) .
ถ้า 25 ml ตัวอย่างกลับมาบวก , 10 และ 1 ml
อุดมจำนวนยังฉายทันที . แต่ถ้า
25 ml ตัวอย่างกลับมา ผลเชิงลบ , 10 และ 1 ตัวอย่างเสริม
มลทิ้ง สำหรับโรคที่ระบุการใช้เทคนิคพลิกแพลงมากกว่านี้
, MPN ผลอาจจะคำนวณจาก
25 , 10 , และ 1 มิลลิลิตร ผลลัพธ์ของการใช้ตาราง 2 .
3 ผลและการอภิปราย
รูปที่ 1 แสดงผลสำหรับ S . aureus ( การ