2. Materials and methods2.1. Select

2. Materials and methods
2.1. Selection of samples
A total of 125 samples were purchased from ﬁve major supermarkets and local markets all across Singapore. Taking samples
from a variety of places allowed products of popular brands as well
as those commonly available to consumers to be sampled; thus
making results of this study more representative. Commodities
tested were selected based on their commonalities to Singapore
and past implication as sources of foodborne disease. There were
eight types of fruits and vegetables in all, namely, apples, oranges,
mangoes, tomatoes, carrots, lettuces, fresh-cut salads and sprouts.
Sample units were chosen independently and randomly from the
various locations. Most of the samples were imported from overseas; only few were grown locally.
2.2. Transport and handling of sample
The samples, together with their original packaging, were
placed securely in a sterile re-sealable plastic bag, and then transported promptly to the laboratory in ice boxes, if necessary. Details
of each sample, including the manufacturer, ‘best-before’ date,
packing date, country of origin and retailer, were recorded
systematically. All samples were analysed within 24 h after time of
purchase, keeping them in their original storage conditions as
much as possible in the meantime. Fresh-cut salads were analysed
before their ‘best-before’ dates. This ensured that the conditions of
the samples represent the product accurately, as retailers should
not be selling products that are past the ‘best-before’ date (CFIA,
2001). Before samples were taken out of their original packaging,
the surfaces of the packaging were carefully sterilised using ethanol
swaps to prevent cross-contamination. Samples that had been
damaged, unpackaged or visibly compromised before analysis were
discarded.
2.3. Aerobic mesophilic plate count and psychrotrophic plate count
For lettuce, fresh-cut salads and sprouts, approximately 25 g of
each sample were placed in a sterile stomacher bag and homogenised using a stomacher (IUL Instruments, Barcelona, Spain) with
225 ml of sterile 0.1% peptone water (PW) (Oxoid, Cambridge, UK)
for 2 min. For all other commodities, i.e. apple, orange, mango,
carrot and tomato, each sample (whole) was aseptically transferred
into a stomacher bag ﬁlled with equal weight of PW. Each whole
sample was then agitated and rubbed by hand in the stomacher bag
for 2 min to suspend surface microbes (FDA BAM, 1998;
McLandsborough, 2005). Appropriate 1:10 dilutions of the resultant homogenate or the rinse ﬂuid were prepared using PW. Plate
Count Agar (PCA) (Oxoid) plates were then inoculated with the
selected dilutions using a spiral plater (WASP spiral plater, Don
Whitley Scientiﬁc, Shipley, West Yorkshire, UK). For mesophilic
plate count, the plates were placed in an incubator for 24 h at 37
C
(FDA BAM, 1998; McLandsborough, 2005). For psychrotrophic plate
count, the PCA plates were placed in an incubator at 6
C for 5e7
days (Greer & Nattress, 2004). After incubation, plates with at least
20 colonies were counted using an automated plate counter
(aCOLyte, Microbiology International, California, US). Results were
reported in terms of colony forming units (cfu/g).
2.4. Enumeration of coliforms
Samples were prepared as described above. Appropriate 1:10
dilutions of the resultant homogenate or the rinse ﬂuid were
prepared using PW. For each selected dilution, 0.1 ml of sample was
spread-plated onto chromogenic agar (Brilliance E. coli/coliform;
Oxoid). The plates were incubated at 37
C for 24 h, following
which, the number of pink and purple colonies was counted.
2.5. Enumeration of yeasts and moulds
Samples were prepared as described above. Appropriate 1:10
dilutions of the resultant homogenate or the rinse ﬂuid were
prepared using PW. For each selected dilution, 0.1 ml of sample was
spread-plated onto Dichloran Rose Bengal Chloramphenicol agar
(DRBC) (Oxoid) containing 0.1% chloramphenicol (SigmaeAldrich,
Missouri, US). The plates were incubated at 25
C for 5e7 days,
following which, the number of colonies was counted (FDA BAM,
1998).
2.6. Isolation of E. coli O157:H7
For lettuce, fresh-cut salads and sprouts, approximately 25 g of
each sample was stomached with 225 ml of modiﬁed EC broth
(Oxoid) supplemented with 20 mg/L of novobiocin (Oxoid) (FDA
BAM, 1998; McLandsborough, 2005). For all other commodities,
i.e. apple, orange, mango, carrot and tomato, each sample (whole)
was aseptically transferred into a stomacher bag ﬁlled with sufﬁ-
cient modiﬁed EC broth supplemented with 20 mg/L of novobiocin
to submerge the whole sample. Each whole sample was then
agitated and rubbed by hand in the stomacher bag for 2 min to
suspend surface microbes. For enrichment, the resultant homogenate or the rinse ﬂuid was incubated at 37
C for 24 h. Following
incubation, each enrichment was streaked onto Tellurite Ceﬁxime
Sorbitol MacConkey Agar (TC-SMAC) (Oxoid). The plates were
incubated at 37
C for 24 h (FDA BAM, 1998). The presumptive
colonies on TC-SMAC were streaked onto chromogenic agar
(CHROMagar O157, Paris, France) and then incubated for 24 h at
37
C. Typical colonies from chromogenic agar were picked and
streaked onto trypticase soy agar with 0.6% yeast extract (TSAYE)
(Oxoid) plates and incubated for 24 h at 37
C. These colonies
40 J. Seow et al. / Food Control 25 (2012) 39e44grown on TSAYE plates were used subsequently for further identiﬁcation via biochemical tests.
2.7. Isolation of Salmonella spp.
For lettuce, fresh-cut salads and sprouts, approximately 25 g of
each sample were stomached with 225 ml of sterile buffered
peptone water (BPW) (Oxoid) for 2 min. For all other commodities,
i.e. apple, orange, mango, carrot and tomato, each sample (whole)
was aseptically transferred into a stomacher bag ﬁlled with sufﬁ-
cient BPW to submerge the whole sample. Each whole sample was
then agitated and rubbed by hand in the stomacher bag for 2 min to
suspend surface microbes. The homogenate or the rinse ﬂuid was
incubated for 24 h at 37
C for pre-enrichment. Selective enrichment was then done by transferring 1 ml of pre-enrichment to 9 ml
of tetrathionate (TT) broth (Oxoid), followed by incubating for 24 h
at 42
C (Dallal et al., 2010; FDA BAM, 1998). After incubation, one
loopful of sample was taken from the TT broth and streaked on
XLT4 agar (Oxoid) and chromogenic agar (Brilliance Salmonella
Agar; Oxoid) and incubated for 24 h at 37
C. Out of the typical
colonies, 2 or more were picked and streaked onto TSAYE plates to
be incubated for 24 h at 37
C. These colonies grown on TSAYE
plates were used subsequently for further identiﬁcation via
biochemical tests.
2.8. Conﬁrmation of presumptive colonies
API
20E (bioMerieux, Inc., Marcy-l’Etoile, France) was used for
the conﬁrmation of presumptive colonies. The biochemical tests
were carried out according to the manufacturer’s instructions.
2.9. Statistical analysis
The mean values obtained from the microbiological evaluation
of fruit and vegetable were analysed by one-way analysis of variance (ANOVA) and subject to Tukey test to determine any statistically signiﬁcant difference (P

2. Materials and methods
2.1. Selection of samples
A total of 125 samples were purchased from ﬁve major supermarkets and local markets all across Singapore. Taking samples
from a variety of places allowed products of popular brands as well
as those commonly available to consumers to be sampled; thus
making results of this study more representative. Commodities
tested were selected based on their commonalities to Singapore
and past implication as sources of foodborne disease. There were
eight types of fruits and vegetables in all, namely, apples, oranges,
mangoes, tomatoes, carrots, lettuces, fresh-cut salads and sprouts.
Sample units were chosen independently and randomly from the
various locations. Most of the samples were imported from overseas; only few were grown locally.
2.2. Transport and handling of sample
The samples, together with their original packaging, were
placed securely in a sterile re-sealable plastic bag, and then transported promptly to the laboratory in ice boxes, if necessary. Details
of each sample, including the manufacturer, ‘best-before’ date,
packing date, country of origin and retailer, were recorded
systematically. All samples were analysed within 24 h after time of
purchase, keeping them in their original storage conditions as
much as possible in the meantime. Fresh-cut salads were analysed
before their ‘best-before’ dates. This ensured that the conditions of
the samples represent the product accurately, as retailers should
not be selling products that are past the ‘best-before’ date (CFIA,
2001). Before samples were taken out of their original packaging,
the surfaces of the packaging were carefully sterilised using ethanol
swaps to prevent cross-contamination. Samples that had been
damaged, unpackaged or visibly compromised before analysis were
discarded.
2.3. Aerobic mesophilic plate count and psychrotrophic plate count
For lettuce, fresh-cut salads and sprouts, approximately 25 g of
each sample were placed in a sterile stomacher bag and homogenised using a stomacher (IUL Instruments, Barcelona, Spain) with
225 ml of sterile 0.1% peptone water (PW) (Oxoid, Cambridge, UK)
for 2 min. For all other commodities, i.e. apple, orange, mango,
carrot and tomato, each sample (whole) was aseptically transferred
into a stomacher bag ﬁlled with equal weight of PW. Each whole
sample was then agitated and rubbed by hand in the stomacher bag
for 2 min to suspend surface microbes (FDA BAM, 1998;
McLandsborough, 2005). Appropriate 1:10 dilutions of the resultant homogenate or the rinse ﬂuid were prepared using PW. Plate
Count Agar (PCA) (Oxoid) plates were then inoculated with the
selected dilutions using a spiral plater (WASP spiral plater, Don
Whitley Scientiﬁc, Shipley, West Yorkshire, UK). For mesophilic
plate count, the plates were placed in an incubator for 24 h at 37 
C
(FDA BAM, 1998; McLandsborough, 2005). For psychrotrophic plate
count, the PCA plates were placed in an incubator at 6 
C for 5e7
days (Greer & Nattress, 2004). After incubation, plates with at least
20 colonies were counted using an automated plate counter
(aCOLyte, Microbiology International, California, US). Results were
reported in terms of colony forming units (cfu/g).
2.4. Enumeration of coliforms
Samples were prepared as described above. Appropriate 1:10
dilutions of the resultant homogenate or the rinse ﬂuid were
prepared using PW. For each selected dilution, 0.1 ml of sample was
spread-plated onto chromogenic agar (Brilliance E. coli/coliform;
Oxoid). The plates were incubated at 37 
C for 24 h, following
which, the number of pink and purple colonies was counted.
2.5. Enumeration of yeasts and moulds
Samples were prepared as described above. Appropriate 1:10
dilutions of the resultant homogenate or the rinse ﬂuid were
prepared using PW. For each selected dilution, 0.1 ml of sample was
spread-plated onto Dichloran Rose Bengal Chloramphenicol agar
(DRBC) (Oxoid) containing 0.1% chloramphenicol (SigmaeAldrich,
Missouri, US). The plates were incubated at 25 
C for 5e7 days,
following which, the number of colonies was counted (FDA BAM,
1998).
2.6. Isolation of E. coli O157:H7
For lettuce, fresh-cut salads and sprouts, approximately 25 g of
each sample was stomached with 225 ml of modiﬁed EC broth
(Oxoid) supplemented with 20 mg/L of novobiocin (Oxoid) (FDA
BAM, 1998; McLandsborough, 2005). For all other commodities,
i.e. apple, orange, mango, carrot and tomato, each sample (whole)
was aseptically transferred into a stomacher bag ﬁlled with sufﬁ-
cient modiﬁed EC broth supplemented with 20 mg/L of novobiocin
to submerge the whole sample. Each whole sample was then
agitated and rubbed by hand in the stomacher bag for 2 min to
suspend surface microbes. For enrichment, the resultant homogenate or the rinse ﬂuid was incubated at 37 
C for 24 h. Following
incubation, each enrichment was streaked onto Tellurite Ceﬁxime
Sorbitol MacConkey Agar (TC-SMAC) (Oxoid). The plates were
incubated at 37 
C for 24 h (FDA BAM, 1998). The presumptive
colonies on TC-SMAC were streaked onto chromogenic agar
(CHROMagar O157, Paris, France) and then incubated for 24 h at
37 
C. Typical colonies from chromogenic agar were picked and
streaked onto trypticase soy agar with 0.6% yeast extract (TSAYE)
(Oxoid) plates and incubated for 24 h at 37 
C. These colonies
40 J. Seow et al. / Food Control 25 (2012) 39e44grown on TSAYE plates were used subsequently for further identiﬁcation via biochemical tests.
2.7. Isolation of Salmonella spp.
For lettuce, fresh-cut salads and sprouts, approximately 25 g of
each sample were stomached with 225 ml of sterile buffered
peptone water (BPW) (Oxoid) for 2 min. For all other commodities,
i.e. apple, orange, mango, carrot and tomato, each sample (whole)
was aseptically transferred into a stomacher bag ﬁlled with sufﬁ-
cient BPW to submerge the whole sample. Each whole sample was
then agitated and rubbed by hand in the stomacher bag for 2 min to
suspend surface microbes. The homogenate or the rinse ﬂuid was
incubated for 24 h at 37 
C for pre-enrichment. Selective enrichment was then done by transferring 1 ml of pre-enrichment to 9 ml
of tetrathionate (TT) broth (Oxoid), followed by incubating for 24 h
at 42 
C (Dallal et al., 2010; FDA BAM, 1998). After incubation, one
loopful of sample was taken from the TT broth and streaked on
XLT4 agar (Oxoid) and chromogenic agar (Brilliance Salmonella
Agar; Oxoid) and incubated for 24 h at 37 
C. Out of the typical
colonies, 2 or more were picked and streaked onto TSAYE plates to
be incubated for 24 h at 37 
C. These colonies grown on TSAYE
plates were used subsequently for further identiﬁcation via
biochemical tests.
2.8. Conﬁrmation of presumptive colonies
API
20E (bioMerieux, Inc., Marcy-l’Etoile, France) was used for
the conﬁrmation of presumptive colonies. The biochemical tests
were carried out according to the manufacturer’s instructions.
2.9. Statistical analysis
The mean values obtained from the microbiological evaluation
of fruit and vegetable were analysed by one-way analysis of variance (ANOVA) and subject to Tukey test to determine any statistically signiﬁcant difference (P

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

2. วัสดุและวิธีการ
2.1 เลือกตัวอย่าง
จำนวน 125 ตัวอย่างซื้อจาก ﬁve ใหญ่ซุปเปอร์มาร์เก็ตและตลาดท้องถิ่นทั้งสิงคโปร์ ตัวอย่างการ
จากหลากหลายสถานที่อนุญาตให้ใช้ผลิตภัณฑ์ของแบรนด์ยอดนิยมเช่น
ที่พร้อมใช้งานโดยทั่วไปผู้บริโภคอย่าง ดังนั้น
ทำผลการศึกษานี้ตัวแทนเพิ่มเติม สินค้าโภคภัณฑ์
ทดสอบได้เลือกตามความ commonalities สู่สิงคโปร์
และปริยายเป็นแหล่งโรค foodborne ที่ผ่านมา มี
แปดชนิดของผลไม้และผักทั้งหมด ได้แก่ แอปเปิ้ล ส้ม,
มะม่วง มะเขือเทศ แครอท lettuces ตัดสลัด และงอก
หน่วยตัวอย่างถูกเลือกแบบสุ่ม และเป็นอิสระจากการ
สถานต่าง ๆ ตัวอย่างส่วนใหญ่นำเข้าจากต่างประเทศ มีปลูกเพียงไม่กี่เครื่อง
2.2 ขนส่งและการจัดการตัวอย่าง
ตัวอย่าง พร้อมบรรจุภัณฑ์เดิมของพวกเขา ได้
วางปลอดภัยในถุงพลาสติกใหม่ sealable กอซ และส่งแล้ว ทันทีเพื่อปฏิบัติในถังน้ำแข็ง ถ้าจำเป็น รายละเอียด
ของแต่ละอย่าง รวมผู้ผลิต, ' สุด-ก่อน ' วัน,
บันทึกวัน ประเทศผู้ผลิตและจำหน่าย บันทึก
ระบบ ตัวอย่างทั้งหมดได้ analysed ภายใน 24 ชมหลังจากเวลา
ซื้อ ทำให้พวกเขาในสภาพเก็บเดิมเป็น
มากที่สุดในขณะเดียวกัน สลัดตัดถูก analysed
ก่อนของ ' สุด-ก่อน ' ที่ต้องการ นี้มั่นใจที่เงื่อนไขของ
ตัวอย่างแสดงผลิตภัณฑ์ได้อย่างถูกต้อง เป็นร้านค้าปลีกควร
ไม่มีการขายผลิตภัณฑ์ที่ผ่านการ ' สุด-ก่อน ' วัน (CFIA,
2001) ก่อนที่ตัวอย่างถูกนำออกจากบรรจุภัณฑ์เดิมของพวกเขา,
พื้นผิวของบรรจุภัณฑ์ถูก sterilised โดยใช้เอทานอลอย่าง
swaps เพื่อป้องกันการปนเปื้อนข้าม ตัวอย่างที่เคย
หาย unpackaged หรือระยะโจมตีก่อนวิเคราะห์ถูก
ละทิ้ง
2.3 Mesophilic แอโรบิกจำนวนแผ่นและจำนวนแผ่น psychrotrophic
สำหรับผักกาดหอม สลัดตัด และ งอก ประมาณ 25 g ของ
แต่ละตัวอย่างถูกเก็บไว้ในถุงใส่แผงประดับหน้าอก และ homogenised ด้วยแผงประดับหน้าอกเป็น (เครื่องมือ IUL บาร์เซโลนา สเปน)
225 ml น้ำฆ่าเชื้อ 0.1% peptone (PW) (Oxoid เคมบริดจ์ สหราชอาณาจักร)
สำหรับ 2 นาที สำหรับทั้งหมดอื่น ๆ สินค้าโภคภัณฑ์ เช่นแอปเปิ้ล ส้ม มะม่วง,
แครอทและมะเขือเทศ (ทั้งหมด) แต่ละตัวอย่างถูกถ่ายโอน aseptically
เข้า ﬁlled เป็นกระเป๋าแผงประดับหน้าอกด้วยน้ำหนักเท่าของ PW ทั้งหมดแต่ละ
ตัวอย่างแล้วนั้นกระตุ้นทำ และ rubbed มือในแผงประดับหน้าอก
สำหรับ 2 นาทีการหยุดชั่วคราวจุลินทรีย์ที่ผิว (อำนวยการ FDA มูลนิธิ 1998;
McLandsborough, 2005) เหมาะสม 1:10 dilutions homogenate ผลแก่หรือ ﬂuid ล้างถูกเตรียมใช้รหัส จาน
จำนวน Agar (PCA) (Oxoid) แผ่นได้แล้ว inoculated กับ
เลือก dilutions ใช้ plater เกลียว (WASP เกลียว plater ดอน
Whitley Scientiﬁc, Shipley เวสต์ยอร์คเชียร์ UK) สำหรับ mesophilic
จำนวน แผ่นจานถูกวางในการบ่มเพาะวิสาหกิจใน 24 ชมที่ 37
C
(FDA อำนวยการมูลนิธิ 1998 McLandsborough, 2005) สำหรับจาน psychrotrophic
นับ PCA แผ่นถูกวางในการบ่มเพาะวิสาหกิจที่ 6
C สำหรับ 5e7
วัน (อินน์เอ็กซ์เพลส& Nattress, 2004) หลังจากบ่ม แผ่นกับน้อย
อาณานิคม 20 นับได้โดยใช้การนับอัตโนมัติแผ่น
(aCOLyte จุลชีววิทยานานาชาติ แคลิฟอร์เนีย สหรัฐอเมริกา) ได้ผล
รายงานในอาณานิคมขึ้นหน่วย (cfu/g).
2.4 การแจงนับของกำจัด
ตัวอย่างเตรียมไว้ตามที่อธิบายไว้ข้างต้น เหมาะสม 1:10
dilutions homogenate ผลแก่หรือ ﬂuid ล้างได้
เตรียมใช้รหัส สำหรับเจือจางแต่ละเลือก 0.1 มล.ของตัวอย่างถูก
มาชุบลงใน chromogenic agar (ความหมาย E. coli/โค ลิฟอร์ม;
Oxoid) แผ่นก็ incubated ที่ 37
C ใน 24 ชม ต่อ
ที่ หมายเลขของสีชมพู และสีม่วงอาณานิคมถูกนับ
2.5 การแจงนับของ yeasts และแม่พิมพ์
ตัวอย่างเตรียมไว้ตามที่อธิบายไว้ข้างต้น เหมาะสม 1:10
dilutions homogenate ผลแก่หรือ ﬂuid ล้างถูก
ใช้ PW สำหรับแต่ละเลือกเจือจาง 0.1 มล.ของตัวอย่างถูก
ชุบแพร่กระจายบน agar
(DRBC) Dichloran โรสเบงกอล Chloramphenicol (Oxoid) ประกอบด้วย chloramphenicol 0.1% (SigmaeAldrich,
มิสซูรี สหรัฐอเมริกา) แผ่นก็ incubated ที่ 25
C วัน 5e7
หมายเลขของอาณานิคมถูกนับ (อำนวยการมูลนิธิ FDA,
1998) .
2.6 แยกของ E. coli O157:H7
สลัด สลัดตัด และ งอก ประมาณ 25 g ของ
ตัวอย่างแต่ละถูก stomached กับ 225 ml ของ broth
(Oxoid) EC modiﬁed เสริม ด้วย 20 mg/L novobiocin (Oxoid) (FDA
อำนวยการมูลนิธิ 1998 McLandsborough, 2005) สำหรับทั้งหมดอื่น ๆ commodities,
i.e. แอปเปิ้ล ส้ม มะม่วง แครอท และมะเขือเทศ แต่ละตัวอย่าง (ทั้งหมด)
ถูกถ่ายโอนมาเป็น ﬁlled เป็นกระเป๋าแผงประดับหน้าอกด้วย sufﬁ - aseptically
cient modiﬁed EC ซุปเสริม ด้วย 20 mg/L novobiocin
มิดตัวอย่างทั้งหมด แต่ละตัวอย่างทั้งหมดถูกแล้ว
นั้นกระตุ้นทำ และ rubbed มือในแผงประดับหน้าอกสำหรับ 2 นาทีไปยัง
ระงับจุลินทรีย์ที่ผิว สำหรับบ่อ homogenate ผลแก่หรือ ﬂuid ล้างถูก incubated ที่ 37
C ใน 24 ชม ต่อ
คณะทันตแพทยศาสตร์ แต่ละบ่อมีลายบน Tellurite Ceﬁxime
ซอร์บิทอล MacConkey Agar (TC-SMAC) (Oxoid) มีแผ่น
incubated ที่ 37
C ใน 24 ชม (FDA อำนวยการมูลนิธิ 1998) แบบ presumptive
อาณานิคมใน TC SMAC ได้ลายบน chromogenic agar
(CHROMagar O157 ปารีส ฝรั่งเศส) และ incubated ใน 24 ชมที่แล้ว
37
ปกติ C. อาณานิคมจาก chromogenic agar ได้รับเลือก และ
ลายไป trypticase ซอย agar กับ 0สารสกัดจากยีสต์ 6% (TSAYE)
(Oxoid) แผ่น และ incubated ใน 24 ชมที่ 37
c อาณานิคมเหล่านี้
40 J. Seow et al. / 39e44grown 25 การควบคุมอาหาร (2012) บนแผ่น TSAYE ใช้มาสำหรับ identiﬁcation เพิ่มเติมผ่านทดสอบชีวเคมี.
2.7 แยกของสายโอ
สำหรับผักกาดหอม สลัดตัด และ งอก ประมาณ 25 g ของ
ตัวอย่างแต่ละได้ stomached กับ 225 ml ของกอซ buffered
น้ำ peptone (สมาคมฯ) (Oxoid) ใน 2 นาที สำหรับทั้งหมดอื่น ๆ commodities,
i.e. แอปเปิ้ล ส้ม มะม่วง แครอท และมะเขือเทศ แต่ละตัวอย่าง (ทั้งหมด)
ถูกถ่ายโอนมาเป็น ﬁlled เป็นกระเป๋าแผงประดับหน้าอกด้วย sufﬁ - aseptically
cient สมาคมฯ มิดตัวอย่างทั้งหมด แต่ละตัวอย่างทั้งหมด
นั้นกระตุ้นทำ แล้ว rubbed มือในแผงประดับหน้าอกสำหรับ 2 นาทีไปยัง
ระงับจุลินทรีย์ที่ผิว Homogenate หรือ ﬂuid ล้าง
incubated ใน 24 ชมที่ 37
C สำหรับเติมเต็มก่อน ขอเลือกถูกแล้วโดยโอน 1 ml ของบ่อก่อน 9 ml
ของซุป tetrathionate (TT) (Oxoid), ตาม incubating ใน 24 h
ที่ 42
C (Dallal et al., 2010 FDA อำนวยการมูลนิธิ 1998) หลังจากบ่ม หนึ่ง
loopful ของตัวอย่างได้มาจากซุป TT และลายบน
XLT4 agar (Oxoid) และ chromogenic agar (ระดับความ
Agar Oxoid) และ incubated ใน 24 ชมที่ 37
C. ของปกติ
อาณานิคม 2 หรือมากกว่าได้รับ และลายบนแผ่น TSAYE เพื่อ
จะ incubated ใน 24 ชมที่ 37
c อาณานิคมเหล่านี้ปลูกใน TSAYE
แผ่นใช้ต่อสำหรับ identiﬁcation เพิ่มเติมผ่าน
ทดสอบชีวเคมี.
2.8 Conﬁrmation ของอาณานิคม presumptive
API
20E (bioMerieux, Inc., Marcy l'Etoile ฝรั่งเศส) ใช้สำหรับ
conﬁrmation ของอาณานิคม presumptive การทดสอบชีวเคมี
ได้ดำเนินการตามคำแนะนำของผู้ผลิต
2.9 วิเคราะห์ทางสถิติ
ค่าเฉลี่ยที่ได้จากการประเมินทางจุลชีววิทยา
ของผักและผลไม้ถูก analysed โดยต่างของการวิเคราะห์แบบทางเดียว (การวิเคราะห์ความแปรปรวน) และอาจ มีการทดสอบ Tukey กำหนดใด ๆ ทางสถิติแตกต่าง signiﬁcant (P < 005) ระหว่างวิธีใช้กำเนิด
8.0 ซอฟต์แวร์ (OriginLab Corporation ณ MA สหรัฐอเมริกา)

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

2 วัสดุและวิธีการ
2.1 การเลือกกลุ่มตัวอย่าง
รวม 125 ตัวอย่างที่ซื้อมาจากไฟและซูเปอร์มาร์เก็ตรายใหญ่และตลาดท้องถิ่นทั่วทั้งประเทศสิงคโปร์ การเก็บตัวอย่าง
จากความหลากหลายของสถานที่ที่ได้รับอนุญาตให้ผลิตภัณฑ์ของแบรนด์ที่เป็นที่นิยมเช่นเดียว
กับที่ปกติให้กับผู้บริโภคที่จะได้รับตัวอย่าง; จึง
ทำให้ผลที่ได้จากการศึกษาครั้งนี้เป็นตัวแทนมากขึ้น สินค้า
ที่ผ่านการทดสอบได้รับการคัดเลือกขึ้นอยู่กับความธรรมดาเหมือนของพวกเขาไปยังสิงคโปร์
และความหมายผ่านมาเป็นแหล่งที่มาของโรคที่เกิดจากอาหาร มี
แปดประเภทของผักและผลไม้ในทุก ได้แก่ แอปเปิ้ล, ส้ม,
มะม่วง, มะเขือเทศแครอทผักกาดหอมสลัดสดตัดและกะหล่ำ
หน่วยตัวอย่างได้รับการแต่งตั้งเป็นอิสระและสุ่มจาก
สถานที่ต่างๆ กลุ่มตัวอย่างส่วนใหญ่นำเข้าจากต่างประเทศ เพียงไม่กี่คนที่ปลูกในท้องถิ่น
2.2 การขนส่งและการจัดการของกลุ่มตัวอย่าง
กลุ่มตัวอย่างที่ใช้ร่วมกับบรรจุภัณฑ์เดิมของพวกเขาถูก
วางไว้อย่างปลอดภัยในถุงพลาสติกที่สามารถปิดได้ผ่านการฆ่าเชื้อแล้วส่งทันทีไปยังห้องปฏิบัติการในกล่องน้ำแข็งในกรณีที่จำเป็น รายละเอียด
ของแต่ละกลุ่มตัวอย่างรวมทั้งผู้ผลิตที่ดีที่สุดก่อนที่จะ ',
วันที่บรรจุประเทศต้นทางและร้านค้าปลีกที่ถูกบันทึกไว้
อย่างเป็นระบบ ตัวอย่างทั้งหมดถูกนำมาวิเคราะห์ภายใน 24 ชั่วโมงหลังจากที่เวลาของการ
ซื้อ, การเก็บรักษาไว้ในสภาพการเก็บรักษาของเดิมเป็น
มากที่สุดเท่าที่เป็นไปได้ในขณะเดียวกัน สลัดผักสดตัดวิเคราะห์
ก่อนที่จะดีที่สุดก่อนที่จะ 'วันของพวกเขา นี้ทำให้มั่นใจได้ว่าเงื่อนไขของ
ตัวอย่างแทนสินค้าที่ถูกต้องควรจะเป็นร้านค้าปลีก
ไม่สามารถขายสินค้าที่มีอดีตที่ผ่านมาวันที่ดีที่สุดก่อน (CFIA,
2001) ก่อนที่กลุ่มตัวอย่างถูกนำออกมาจากบรรจุภัณฑ์เดิมของพวกเขา
พื้นผิวของบรรจุภัณฑ์ที่ได้รับการฆ่าเชื้ออย่างระมัดระวังโดยใช้เอทานอล
แลกเปลี่ยนเพื่อป้องกันการปนเปื้อน ตัวอย่างที่ได้รับ
ความเสียหายหรือห่อหุ้มอย่างเห็นได้ชัดก่อนที่จะทำลายการวิเคราะห์ถูก
ทิ้ง
2.3 แอโรบิกนับจานอุณหภูมิปานกลางและจำนวนแผ่น psychrotrophic
สำหรับผักกาดหอม, สลัดสดตัดและกะหล่ำประมาณ 25 กรัมของ
แต่ละตัวอย่างถูกวางไว้ในถุง Stomacher ผ่านการฆ่าเชื้อและเป็นเนื้อเดียวกันโดยใช้ Stomacher (กรกฎาคมเครื่องมือบาร์เซโลนา, สเปน) กับ
225 มิลลิลิตรหมัน 0.1 % เปปโตนน้ำ (PW) (Oxoid, เคมบริดจ์, UK)
เป็นเวลา 2 นาที สำหรับสินค้าอื่น ๆ เช่นแอปเปิ้ล, ส้ม, มะม่วง,
มะเขือเทศและแครอทตัวอย่าง (ทั้งหมด) แต่ละถูกย้ายในขวดทดลอง
เป็นไฟถุง Stomacher lled มีน้ำหนักเท่ากัน PW แต่ละคนทั้ง
กลุ่มตัวอย่างได้รับการตื่นเต้นแล้วและถูด้วยมือในกระเป๋า Stomacher
2 นาทีที่จะระงับจุลินทรีย์พื้นผิว (FDA BAM 1998;
McLandsborough 2005) ที่เหมาะสม 01:10 เจือจางของ homogenate ผลหรือล้างชั้น UID ถูกเตรียมใช้ PW แผ่น
จำนวนวุ้น (PCA) (Oxoid) แผ่นถูกเชื้อแล้วกับ
เจือจางเลือกใช้ Plater เกลียว (WASP? Plater เกลียว, ดอน
วิทเลย์ scienti ไฟคชิพลีย์, West Yorkshire, สหราชอาณาจักร) สำหรับอุณหภูมิปานกลาง
นับจาน, จานที่ถูกวางอยู่ในตู้อบเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่ 37
C
(FDA BAM 1998; McLandsborough 2005) สำหรับแผ่น psychrotrophic
นับแผ่น PCA ถูกวางไว้ในตู้อบที่ 6?
เซลเซียส 5e7
วัน (เกรียร์และ Nattress, 2004) หลังจากการบ่ม, จานอย่างน้อย
20 อาณานิคมนับโดยใช้แผ่นเคาน์เตอร์อัตโนมัติ
(Acolyte จุลชีววิทยานานาชาติแคลิฟอร์เนียสหรัฐอเมริกา) ผลลัพธ์ที่ได้
รายงานในแง่ของการสร้างอาณานิคมหน่วย (โคโลนี / กรัม)
2.4 การแจงนับของโคลิฟอร์ม
ตัวอย่างที่เตรียมตามที่อธิบายไว้ข้างต้น ที่เหมาะสม 01:10
เจือจางของ homogenate ผลหรือล้างชั้น UID ถูก
จัดทำขึ้นโดยใช้ PW สำหรับการลดสัดส่วนที่เลือกแต่ละ 0.1 มิลลิลิตรของตัวอย่างถูก
แพร่กระจายไปชุบลงในอาหารเลี้ยงเชื้อ chromogenic (Brilliance E. coli / โคลิฟอร์ม;
Oxoid) แผ่นถูกบ่มที่ 37
C เป็นเวลา 24 ชั่วโมงหลังจาก
ที่จำนวนของสีชมพูและสีม่วงอาณานิคมนับ
2.5 การแจงนับของยีสต์และเชื้อรา
ตัวอย่างที่เตรียมตามที่อธิบายไว้ข้างต้น ที่เหมาะสม 01:10
เจือจางของ homogenate ผลหรือล้างชั้น UID ถูก
จัดทำขึ้นโดยใช้ PW สำหรับการลดสัดส่วนที่เลือกแต่ละ 0.1 มิลลิลิตรของตัวอย่างถูก
แพร่กระจายชุบบน Dichloran โรสเบงกอล Chloramphenicol วุ้น
(DRBC) (Oxoid) ที่มี 0.1% chloramphenicol (SigmaeAldrich,
มิสซูรี่สหรัฐอเมริกา) แผ่นถูกบ่มที่ 25?
C วัน 5e7,
ต่อไปนี้ซึ่งจำนวนโคโลนีที่นับ (FDA BAM,
1998)
2.6 การแยกเชื้อ E. coli O157: H7
สำหรับผักกาดหอม, สลัดสดตัดและกะหล่ำประมาณ 25 กรัมของ
แต่ละตัวอย่างถูก stomached 225 มิลลิลิตร Modi ไฟ ed EC น้ำซุป
(Oxoid) เสริมด้วย 20 mg / L ของ novobiocin (Oxoid) (FDA
BAM 1998; McLandsborough 2005) สำหรับสินค้าอื่น ๆ
เช่นแอปเปิ้ล, ส้ม, มะม่วงแครอทและมะเขือเทศตัวอย่าง (ทั้งหมด) แต่ละ
ถูกย้ายในขวดทดลองเป็นไฟถุง Stomacher lled กับพอเพียง Fi-
เพียงพอ Modi ไฟ ed EC น้ำซุปเสริมด้วย 20 mg / L ของ novobiocin
ที่จะจมลงใต้น้ำตัวอย่างทั้ง แต่ละตัวอย่างทั้งหมดถูกแล้ว
ตื่นเต้นและถูด้วยมือในกระเป๋า Stomacher 2 นาทีเพื่อ
ระงับจุลินทรีย์พื้นผิว สำหรับตกแต่ง homogenate ผลหรือล้างชั้น UID ถูกบ่มที่ 37
C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง ต่อไปนี้
การบ่มแต่ละตกแต่งเป็นลายบน tellurite Ce ไฟ Xime
ซอร์บิทอ MacConkey วุ้น (TC-SMAC) (Oxoid) แผ่นถูก
บ่มที่ 37
C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง (FDA BAM, 1998) สันนิษฐาน
อาณานิคมใน TC-SMAC ถูกลายลงบนอาหารเลี้ยงเชื้อ chromogenic
(CHROMagar? O157, ปารีส, ฝรั่งเศส) แล้วบ่มเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่
37?
C. อาณานิคมโดยทั่วไปจากวุ้น chromogenic ถูกหยิบและ
ลายลงบนวุ้นถั่วเหลือง trypticase ด้วยสารสกัดจากยีสต์ 0.6% (TSAYE)
(Oxoid) แผ่นและบ่มเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37?
ซี อาณานิคมเหล่านี้
40 เจ Seow และคณะ / การควบคุมอาหาร 25 (2012) 39e44grown บนจาน TSAYE ถูกนำมาใช้ในภายหลังต่อการประจุบวกไฟการระบุผ่านการทดสอบทางชีวเคมี
2.7 การแยกเชื้อ Salmonella spp
สำหรับผักกาดหอม, สลัดสดตัดและกะหล่ำประมาณ 25 กรัมของ
แต่ละตัวอย่างถูก stomached 225 มิลลิลิตรหมันบัฟเฟอร์
น้ำเปปโตน (BPW) (Oxoid) เป็นเวลา 2 นาที สำหรับสินค้าอื่น ๆ
เช่นแอปเปิ้ล, ส้ม, มะม่วงแครอทและมะเขือเทศตัวอย่าง (ทั้งหมด) แต่ละ
ถูกย้ายเข้าไปในขวดทดลองวิทยาศาสตร์ถุง Stomacher lled กับพอเพียง Fi-
เพียงพอที่จะจมลงใต้น้ำ BPW ตัวอย่างทั้ง แต่ละตัวอย่างทั้งหมดถูก
ตื่นเต้นแล้วและถูด้วยมือในกระเป๋า Stomacher 2 นาทีเพื่อ
ระงับจุลินทรีย์พื้นผิว homogenate หรือชั้นล้าง UID ถูก
บ่มเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่ 37
องศาเซลเซียสเป็นเวลาก่อนการตกแต่ง การตกแต่งที่เลือกเสร็จแล้วโดยการโอน 1 มิลลิลิตรก่อนการตกแต่งถึง 9 มล
ของ tetrathionate (TT) ซุป (Oxoid) ตามด้วยการบ่มเป็นเวลา 24 ชั่วโมง
ที่ 42?
C (Dallal, et al, 2010. FDA BAM, 1998) หลังจากการบ่มหนึ่ง
loopful ของตัวอย่างถูกนำมาจากน้ำซุป TT และลายบน
XLT4 วุ้น (Oxoid) และ chromogenic วุ้น (Brilliance เชื้อ
วุ้น; Oxoid) และบ่มเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37?
ซี จากปกติ
อาณานิคม 2 หรือมากกว่าถูกหยิบและลายลงบนแผ่น TSAYE ที่จะ
ได้รับการบ่มเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37?
ซี อาณานิคมเหล่านี้ที่ปลูกใน TSAYE
แผ่นถูกนำมาใช้ในภายหลังต่อการประจุบวกไฟการระบุผ่าน
การทดสอบทางชีวเคมี
2.8 rmation con ไฟของอาณานิคมสันนิษฐาน
API?
20E (bioMerieux, Inc, มาร์ซี่-l'Etoile, ฝรั่งเศส) ที่ใช้สำหรับ
rmation con ไฟของอาณานิคมสันนิษฐาน การทดสอบทางชีวเคมี
ได้ดำเนินการตามคำแนะนำของผู้ผลิต
2.9 การวิเคราะห์ทางสถิติ
ค่าเฉลี่ยที่ได้จากการประเมินผลทางจุลชีววิทยา
ของผักและผลไม้ถูกนำมาวิเคราะห์โดยการวิเคราะห์ทางเดียวของความแปรปรวน (ANOVA) และอาจมีการทดสอบ Tukey เพื่อตรวจสอบใด ๆ นัยสำคัญทางสถิติที่แตกต่างกันไฟลาดเท (p <0.05) หมายถึงการใช้แหล่งกำเนิด
8.0 ซอฟต์แวร์ ( OriginLab คอร์ปอเรชั่นนอร์ท, MA, USA)

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . การเลือกตัวอย่าง
จำนวน 125 ตัวอย่าง ซื้อมาจากซุปเปอร์มาร์เก็ตจึงได้หลักและตลาดท้องถิ่นทั่วสิงคโปร์ เอาตัวอย่าง
จากหลากหลายสถานที่อนุญาตผลิตภัณฑ์ของแบรนด์ที่เป็นที่นิยมเช่น
เป็นผู้มักใช้ได้กับผู้บริโภคเป็นตัวอย่าง จึงทำให้ผลการศึกษา
ตัวแทนมากขึ้น สินค้า
ทดสอบคัดเลือกตามสามัญชนของสิงคโปร์
และอดีตนัยเป็นแหล่งที่มาของโรคระบาดจากอาหาร . มี
แปดชนิดของผักและผลไม้ใน ทั้งหมด ได้แก่ แอปเปิ้ล ส้ม
มะม่วง มะเขือเทศ แครอท กระหล่ำ สลัด ตัดสด และถั่วงอก
หน่วยตัวอย่างถูกเลือกอย่างอิสระ และสุ่มจาก
สถานที่ต่างๆ กลุ่มตัวอย่างส่วนใหญ่ถูกนำเข้าจากต่างประเทศ เช่นน้อยเท่านั้นที่ปลูกในท้องถิ่น .
2.2 . การขนส่งและการจัดการตัวอย่าง
ตัวอย่างพร้อมกับบรรจุภัณฑ์เดิมของพวกเขา คือ
วางไว้อย่างปลอดภัยในฆ่าเชื้ออีกครั้ง sealable ถุงพลาสติกแล้วขนส่งทันทีเพื่อปฏิบัติการในกล่องน้ำแข็ง หากจำเป็น รายละเอียด
ของแต่ละตัวอย่าง รวมทั้งผู้ผลิต ' ที่ดีที่สุดก่อน ' วันที่
บรรจุวันที่ ประเทศ และผู้ค้าปลีก ได้ถูกบันทึกไว้
อย่างเป็นระบบ ตัวอย่างการวิเคราะห์ภายใน 24 ชั่วโมงหลังจากเวลาของ
ซื้อ รักษาสภาพกระเป๋าเดิมเป็น
มากที่สุดในตอนนี้ สลัดตัดสดวิเคราะห์
ก่อน ' ' ที่สุด ก่อนวันที่ นี้มั่นใจว่าเงื่อนไขของ
ตัวอย่างที่เป็นตัวแทนของสินค้าอย่างถูกต้อง ตามร้านค้าปลีกควร
ไม่ขายสินค้าที่เป็นอดีต ' ที่ดีที่สุดก่อนวันที่ ( cfia
, 2001 ) ก่อนตัวอย่างถ่ายจากบรรจุภัณฑ์เดิมของพวกเขา
พื้นผิวของบรรจุภัณฑ์มีการแลกเปลี่ยนอย่าง sterilised เอทานอล
เพื่อป้องกันการปนเปื้อนข้าม ตัวอย่างที่เคย
เสียหาย ยกเลิกการบรรจุหรือเห็นได้ชัดละเมิดก่อนวิเคราะห์

ทิ้ง 2.3นับจานมีแอโรบิกและ
นับจานไซโครโทรปสำหรับผักกาดหอม สลัดตัดสดและถั่วงอก ประมาณ 25 กรัม
แต่ละตัวอย่างถูกวางไว้ในถุงแผงประดับหน้าอกที่เป็นหมันและ homogenised ใช้แผงประดับหน้าอก ( iul เครื่องมือ , บาร์เซโลนา , สเปน )
225 มิลลิลิตร น้ำหมัน 0.1% ตามลำดับ ( PW ) ( oxoid , เคมบริดจ์ , สหราชอาณาจักร )
2 นาที สำหรับสินค้าอื่น ๆเช่นแอปเปิ้ล , ส้ม , มะม่วง ,
แครอท และ มะเขือเทศ แต่ละตัวอย่างทั้งหมด ( ) คือ aseptically โอน
เป็นแผงประดับหน้าอกกระเป๋าจึงฆ่าที่มีน้ำหนักเท่ากับของ PW . แต่ละตัวอย่างทั้ง
ก็ปั่นป่วน และถูด้วยมือในแผงประดับหน้าอกกระเป๋า
2 นาทีที่จะระงับจุลินทรีย์ที่ผิว ( FDA แบม , 1998 ;
mclandsborough , 2005 ) 1 : 10 วิธีการที่เหมาะสมของปริมาณผลหรือล้างﬂอี๊ดเตรียมใช้ PW . จาน
นับ ( PCA ) ( oxoid ) แผ่นแล้วใส่
เลือกเจือจางโดยใช้เกลียว ผู้พิมพ์ ( ตัวต่อ เกลียวผู้พิมพ์ ดอน
Whitley scienti จึง C Shipley , เวสต์ยอร์ค , UK ) นับจานมี
, แผ่นอยู่ในตู้อบนาน 24 ชั่วโมง 37
C
( FDA แบม , 1998 ; mclandsborough , 2005 ) นับจาน
ไซโครโทรป , PCA แผ่นอยู่ในตู้อบที่ 6
C
5e7วัน ( เกียร์& nattress , 2004 ) หลังจากบ่มแผ่นอย่างน้อย
20 อาณานิคมได้ถูกนับโดยใช้แผ่นอัตโนมัติเคาน์เตอร์
( นักบวช จุลชีววิทยานานาชาติ , แคลิฟอร์เนีย , สหรัฐอเมริกา ) ผลลัพธ์ที่ได้ในแง่ของการสร้างหน่วย
รายงานอาณานิคม ( cfu / g )
2.4 . การแจงนับ Coliforms
ตัวอย่างเตรียมตามที่อธิบายไว้ข้างต้น ที่ 1 : 10
เจือจางของปริมาณผลหรือล้างﬂ uid คือ
เตรียมใช้ PW . สำหรับแต่ละเลือกเจือจาง 0.1 มิลลิลิตร จำนวน
กระจายชุบบนการสนทนาผ่านข้อความโต้ตอบแบบทันที ( ของ E . coli / Coliform ;
oxoid ) จานถูกบ่มที่ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง

ซึ่งตามจำนวนของสีชมพูและสีม่วงอาณานิคมถูกนับ .
2.5 การแจงนับของยีสต์และเชื้อรา
ตัวอย่างเตรียมตามที่อธิบายไว้ข้างต้น 1 : 10
เหมาะสมวิธีการของปริมาณผลหรือล้างﬂ uid คือ
เตรียมใช้ PW . สำหรับแต่ละเลือกเจือจาง 0.1 มิลลิลิตร จำนวน
กระจายชุบลงไดคลอแรนโรสเบงกอล คลอแรมเฟนิคอล วุ้น
( drbc ) ( oxoid ) ที่ประกอบด้วย 0.1% คลอแรมเฟนิคอล ( sigmaealdrich
, มิสซูรี , สหรัฐอเมริกา ) จานที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียส

ต่อไปนี้ 5e7 วันซึ่งจำนวนโคโลนีถูกนับ ( FDA แบม

, 1998 ) 2.6การแยกเชื้อ E . coli เป็นสมาชิก : H7
สำหรับผักกาดหอม สลัดตัดสดและถั่วงอก ประมาณ 25 กรัม
แต่ละตัวอย่าง stomached กับ 225 มิลลิลิตร โมไดจึงเอ็ดซุป EC
( oxoid ) เสริมด้วย 20 mg / l ( oxoid โนโวไบโอซิน ( FDA )
แบม , 1998 ; mclandsborough , 2005 ) สำหรับสินค้าอื่น ๆทั้งหมด ,
เช่นแอปเปิ้ล , ส้ม , มะม่วง , แครอท และ มะเขือเทศ แต่ละตัวอย่าง ( ทั้ง )
คือ aseptically ถ่ายโอนลงในถุงจึงฆ่าซุฟจึงแผงประดับหน้าอกด้วย -
cient Modi เอ็ด EC broth จึงเสริมด้วย 20 มก. / ล. ที่โนโวไบโอซิน
ถ่วงทั้ง ตัวอย่าง แต่ละตัวอย่างทั้งหมดแล้ว
ปั่นป่วน และลูบมือในถุงแผงประดับหน้าอก 2 มิน

ระงับเชื้อจุลินทรีย์บนพื้นผิว วัด , ปริมาณผลลัพธ์หรือล้างﬂ uid คือบ่มที่ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง

ตามระยะเวลาแต่ละลายบนการเป็น tellurite CE จึง xime
ซอร์บิทอล Lynx ( tc-smac ) ( oxoid ) จานถูกบ่มที่ 37

C 24 H ( แบม FDA , 1998 ) อาณานิคมให้ผล
บน tc-smac ลายลงในการสนทนาผ่านข้อความโต้ตอบแบบทันทีวุ้น
( chromagar เป็นสมาชิก , ปารีส , ฝรั่งเศส ) แล้วบ่มเชื้อเป็นเวลา 24 ชั่วโมง

C ปกติที่ 37 อาณานิคมจากการสนทนาผ่านข้อความโต้ตอบแบบทันทีและวุ้นถูกเลือกลายบน
TrueCrypt กับ 0ยีสต์สกัดร้อยละ 6 tsaye )
( oxoid ) แผ่น และบ่มเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37
C
อาณานิคมเหล่านี้ 40 เจ. เซียว et al . การควบคุม / อาหาร 25 ( 2012 ) 39e44grown บนแผ่น tsaye ใช้ในภายหลังต่อไป จึง identi ไอออนบวกผ่านการทดสอบทางชีวเคมี
2.7 . การแยก Salmonella spp .
สำหรับผักกาดหอม สลัดตัดสดและถั่วงอก ประมาณ 25 กรัม
แต่ละจำนวน stomached กับ 225 มิลลิลิตร 2
เป็นหมันเปปโตนน้ำ ( BPW ) ( oxoid ) 2 นาที สำหรับสินค้าอื่น ๆทั้งหมด ,
เช่นแอปเปิ้ล , ส้ม , มะม่วง , แครอท และ มะเขือเทศ แต่ละตัวอย่าง ( ทั้งหมด ) aseptically
ถูกถ่ายโอนลงในถุงจึงฆ่าซุฟจึงแผงประดับหน้าอกด้วย -
cient BPW ถ่วงทั้ง ตัวอย่าง ทั้งแต่ละตัวอย่าง
แล้วปั่นป่วน และลูบมือในถุงแผงประดับหน้าอก 2 มิน

ระงับเชื้อจุลินทรีย์บนพื้นผิว การแยกหรือล้างﬂ uid คือ
บ่มเชื้อเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37
c ก่อนเสริมสมรรถนะ งานเสริมก็ทำได้โดยการโอน 1 มิลลิลิตร ก่อนเสริม 9 ml
ของเตตราไทโอเนต ( TT ) ซุป ( oxoid ) ตามด้วยการแช่ 24 H
42
c ( dallal et al . , 2010 ; FDA แบม , 1998 ) หลังจากระยะเวลาหนึ่ง
loopful ตัวอย่างได้มาจาก TT
xlt4 ลายในน้ำซุปและวุ้น ( agar ( oxoid ) และการสนทนาผ่านข้อความโต้ตอบแบบทันทีของ Salmonella
วุ้น ;oxoid ) และบ่มเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37
C จากอาณานิคมทั่วไป
2 หรือมากกว่าถูกเก็บและลายลงบนแผ่น tsaye

ถูกบ่มเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียส

แผ่นปลูกใน tsaye อาณานิคมเหล่านี้ถูกใช้โดยเพิ่มเติม จึง identi ไอออนบวกผ่านการทดสอบทางชีวเคมี
.
2.8 . คอน จึงสันนิษฐาน rmation ของอาณานิคม

20e API ( biomerieux , อิงค์ , marcy-l'etoile , ฝรั่งเศส ) ใช้
หมอจึงสันนิษฐาน rmation ของอาณานิคม การทดสอบทางชีวเคมี
ได้ดำเนินการตามคำแนะนำของผู้ผลิต
2.9 . สถิติที่ใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูลคือค่า

จุลชีววิทยาการประเมินที่ได้จากผักและผลไม้ วิเคราะห์ข้อมูลโดยการวิเคราะห์ความแปรปรวน ( ANOVA ) และการทดสอบการทดสอบว่า signi จึงไม่แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ ( p < 005 ) ระหว่างวิธีการกำเนิด
8.0 ซอฟต์แวร์ ( originlab Corporation , Northampton , MA , USA )

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.