Approximately 200g of frozen xylem were ground to a
powder in a Waring Blendor cooled with liquid nitrogen. The
powder was then transferred to a glass beaker and a twofold
(v/w) excess of buffer A added. The frozen mixture was stirred
gently with a spatula until the buffer thawed, then squeezed
through 10 layers of cheesecloth (premoistened with buffer A)
and filtered through one layer of Miracloth.
The filtrate was centrifuged at 20,000g for 30 min. Ammonium
sulfate fractionation was carried out on the supernatant,
and the fraction precipitating between 40 and 70% of
saturation was taken for further purification. The precipitate
was resuspended in a minimum volume of buffer B and
dialyzed against two changes of buffer B. Insoluble material
was removed by centrifugation at 14,000g for 20 min. The
supernatant was diluted to a protein concentration of less
than 15 mg/mL and loaded onto a 2.5 x 20-cm column of
DEAE-Sephacel. The column was washed with buffer B until
the protein content of the effluent returned to baseline level,
determined by an in-line UV monitor. A linear gradient
elution was then carried out with 250 mL each of buffer B
and buffer C, and 5-mL fractions were collected.
Fractions containing PAL activity were pooled and concentrated
to 1 mL using centrifugal ultrafiltration devices (Centriprep
30; Amicon). The concentrated material was then
loaded onto a 1.5 x 80-cm Sephacryl S-300 gel filtration
column and eluted with buffer D, and 2-mL fractions were
collected. Fractions containing PAL activity were pooled and
concentrated as before, and the purified enzyme preparation
stored at -70°C. The S-300 column was calibrated for native
mol wt determination using marker proteins from Sigma:
bovine thyroglobulin (Mr 669,000), equine apoferritin (Mr
443,000), sweet potato p3-amylase (Mr 200,000), yeast alcohol
dehydrogenase (Mr 150,000), and BSA (Mr 66,000).
Approximately 200g of frozen xylem were ground to apowder in a Waring Blendor cooled with liquid nitrogen. Thepowder was then transferred to a glass beaker and a twofold(v/w) excess of buffer A added. The frozen mixture was stirredgently with a spatula until the buffer thawed, then squeezedthrough 10 layers of cheesecloth (premoistened with buffer A)and filtered through one layer of Miracloth.The filtrate was centrifuged at 20,000g for 30 min. Ammoniumsulfate fractionation was carried out on the supernatant,and the fraction precipitating between 40 and 70% ofsaturation was taken for further purification. The precipitatewas resuspended in a minimum volume of buffer B anddialyzed against two changes of buffer B. Insoluble materialwas removed by centrifugation at 14,000g for 20 min. Thesupernatant was diluted to a protein concentration of lessthan 15 mg/mL and loaded onto a 2.5 x 20-cm column ofDEAE-Sephacel. The column was washed with buffer B untilthe protein content of the effluent returned to baseline level,determined by an in-line UV monitor. A linear gradientelution was then carried out with 250 mL each of buffer Band buffer C, and 5-mL fractions were collected.Fractions containing PAL activity were pooled and concentratedto 1 mL using centrifugal ultrafiltration devices (Centriprep30; Amicon). The concentrated material was thenloaded onto a 1.5 x 80-cm Sephacryl S-300 gel filtrationcolumn and eluted with buffer D, and 2-mL fractions werecollected. Fractions containing PAL activity were pooled andconcentrated as before, and the purified enzyme preparationstored at -70°C. The S-300 column was calibrated for nativemol wt determination using marker proteins from Sigma:bovine thyroglobulin (Mr 669,000), equine apoferritin (Mr443,000), sweet potato p3-amylase (Mr 200,000), yeast alcoholdehydrogenase (Mr 150,000), and BSA (Mr 66,000).
การแปล กรุณารอสักครู่..

ประมาณ 200g ของท่อน้ำแช่แข็งมาบดให้เป็น
ผงใน Waring Blendor ระบายความร้อนด้วยไนโตรเจนเหลว
ผงนั้นก็ย้ายไปบีกเกอร์แก้วและสองเท่า
(v / w) ส่วนเกินของบัฟเฟอร์เพิ่ม ส่วนผสมที่แช่แข็งถูกกวน
เบา ๆ ด้วยไม้พายจนบัฟเฟอร์ละลายแล้วบีบ
ทั้งหมด 10 ชั้นของผ้า (premoistened กับบัฟเฟอร์ A)
และกรองผ่านชั้นหนึ่ง Miracloth.
กรองถูกหมุนเหวี่ยงที่ 20,000g เป็นเวลา 30 นาที แอมโมเนียม
ซัลเฟตแยกได้ดำเนินการในสารละลายที่
และเศษทำให้เกิดความวุ่นวายระหว่าง 40 และ 70% ของ
ความอิ่มตัวของสีถูกนำสำหรับการทำให้บริสุทธิ์ต่อไป ตะกอน
ถูก resuspended ในปริมาณขั้นต่ำของบัฟเฟอร์ B และ
dialyzed กับสองการเปลี่ยนแปลงของวัสดุที่ไม่ละลายน้ำบัฟเฟอร์บี
ถูกลบออกโดยการหมุนเหวี่ยงที่ 14,000g สำหรับ 20 นาที
สารละลายเจือจางความเข้มข้นของโปรตีนน้อย
กว่า 15 mg / ml และโหลดลงในคอลัมน์ 2.5 x 20 ซม. ของ
DEAE-Sephacel คอลัมน์ถูกล้างด้วยบัฟเฟอร์ B จนกว่า
ปริมาณโปรตีนของน้ำทิ้งกลับไปที่ระดับพื้นฐาน
กำหนดโดยจอภาพรังสียูวีในสายการผลิต ลาดเชิงเส้น
ชะได้ดำเนินการแล้วออกมาพร้อมกับ 250 มลแต่ละบัฟเฟอร์ B
และ buffer C, และเศษส่วน 5 มิลลิลิตรถูกเก็บรวบรวม.
เศษส่วนที่มีกิจกรรม PAL ถูกรวบรวมและเข้มข้น
1 มิลลิลิตรใช้อุปกรณ์กรองแรงเหวี่ยง (Centriprep
30 Amicon) วัสดุที่มีความเข้มข้นแล้ว
โหลดลง 1.5 x 80 ซม Sephacryl S-300 กรองเจล
คอลัมน์และชะด้วยบัฟเฟอร์ D, และเศษส่วน 2 มิลลิลิตรถูก
เก็บรวบรวม เศษส่วนที่มีกิจกรรม PAL ถูกรวบรวมและ
เข้มข้นเป็นมาก่อนและการเตรียมเอนไซม์
ที่เก็บไว้ที่อุณหภูมิ -70 องศาเซลเซียส คอลัมน์ S-300 ได้รับการสอบเทียบสำหรับพื้นเมือง
mol การกำหนดน้ำหนักโดยใช้โปรตีนเครื่องหมายจากซิกม่า:
thyroglobulin วัว (นาย 669000) apoferritin ม้า (นาย
443,000) มันเทศ P3 อะไมเลส (นาย 200,000) ยีสต์แอลกอฮอล์
dehydrogenase (นาย 150,000) และบีเอสเอ (นาย 66,000)
การแปล กรุณารอสักครู่..
