Agar plates (1% (w/v) bacteriological agar (Oxoid) with 1% (v/v) acetic
acid, pH 5.0) with or without (control) 0.25% (w/v) chitosan dissolved in
1% acetic acid (v/v) at pH 5.0, were prepared. On the bottom of each agar
plate (140 mm in diameter), a circle of 90 mm in diameter was drawn.
Then 450 μL of a diluted bacterial culturewas spread on each agar plate
within the circle. Groups of 20 plates with or without chitosan were
prepared with S. Enteritidis and groups of 15 plates were prepared with
the other bacteria. The plates were then dried in a laminar flowcabinet for
30 min, then incubated for 2 h at 20 °C and 60% relative humidity (RH) in
a climate chamber (Termaks KBP 6395 F, Solheimsviken, Norway). The
bacteriawere recovered using contact plates of TSA (contact time of 30 s)
that were 90 mm in diameter. Subsequently, the contact plates were
incubated overnight at 37 °C (a, b, i, j and k) or 30 °C (c, d, e, f, g and h). The
colonies were counted and the mean log10 reduction was calculated as
Agar plates (1% (w/v) bacteriological agar (Oxoid) with 1% (v/v) aceticacid, pH 5.0) with or without (control) 0.25% (w/v) chitosan dissolved in1% acetic acid (v/v) at pH 5.0, were prepared. On the bottom of each agarplate (140 mm in diameter), a circle of 90 mm in diameter was drawn.Then 450 μL of a diluted bacterial culturewas spread on each agar platewithin the circle. Groups of 20 plates with or without chitosan wereprepared with S. Enteritidis and groups of 15 plates were prepared withthe other bacteria. The plates were then dried in a laminar flowcabinet for30 min, then incubated for 2 h at 20 °C and 60% relative humidity (RH) ina climate chamber (Termaks KBP 6395 F, Solheimsviken, Norway). Thebacteriawere recovered using contact plates of TSA (contact time of 30 s)that were 90 mm in diameter. Subsequently, the contact plates wereincubated overnight at 37 °C (a, b, i, j and k) or 30 °C (c, d, e, f, g and h). Thecolonies were counted and the mean log10 reduction was calculated as
การแปล กรุณารอสักครู่..
แผ่นวุ้น (1% (w / v) อาหารเลี้ยงเชื้อแบคทีเรีย (Oxoid) 1% (v / v)
อะซิติกกรดpH 5.0) โดยมีหรือไม่มี (ควบคุม) 0.25% (w / v) ไคโตซานที่ละลายใน
1% กรดอะซิติก ( v / v) ที่ pH 5.0 ได้จัดทำ ที่ด้านล่างของแต่ละวุ้นแผ่น (140 มม), วงกลม 90 มมถูกดึงก. แล้ว 450 ไมโครลิตรของ culturewas แบคทีเรียปรับลดการแพร่กระจายบนแต่ละจานอาหารเลี้ยงเชื้อที่อยู่ในวงกลม กลุ่มของ 20 แผ่นโดยมีหรือไม่มีไคโตซานถูกปรุงด้วยS. Enteritidis และกลุ่มที่ 15 ได้จัดทำแผ่นที่มีเชื้อแบคทีเรียอื่นๆ แผ่นแห้งแล้วใน flowcabinet ราบเรียบสำหรับ30 นาทีแล้วบ่มเป็นเวลา 2 ชั่วโมงที่ 20 ° C และ 60% ความชื้นสัมพัทธ์ (RH) ในห้องสภาพภูมิอากาศ(Termaks KBP 6395 F, Solheimsviken, นอร์เวย์) bacteriawere กู้คืนโดยใช้แผ่นติดต่อของ TSA (เวลาติดต่อ 30 s) ที่อยู่ 90 มม ต่อจากนั้นแผ่นติดต่อที่ถูกบ่มค้างคืนที่ 37 ° C (A, B, ฉัน j และ k) หรือ 30 องศาเซลเซียส (C, D, E, F, G และเอช) อาณานิคมนับและค่าเฉลี่ย log10 ลดที่คำนวณได้เป็น
การแปล กรุณารอสักครู่..
วุ้นแผ่น ( 1% ( w / v ) แบคทีเรีย ( oxoid ) กับ 1% ( v / v )
กรดกรด pH 5.0 ) มีหรือไม่มี ( ควบคุม ) 0.25% ( w / v ) ไคโตแซนที่ละลายในกรด
1 % ( v / v ) ที่ pH 5.0 , เตรียมไว้แล้ว ที่ด้านล่างของแต่ละจานวุ้น
( 140 มม. ) , วงกลมของ 90 มม. วาด .
แล้ว 450 μลิตรปรับลดแบคทีเรีย culturewas กระจายในแต่ละ agar plate
ภายในวงกลมกลุ่มของ 20 แผ่น มี หรือ ไม่มี ไคโตแซน
เตรียมเอส enteritidis และกลุ่มของ 15 แผ่นพร้อมกับ
แบคทีเรียอื่น ๆ แผ่นแล้วแห้งในการ flowcabinet สำหรับ
30 นาที แล้วเติม 2 ชั่วโมง 20 ° C และ 60 % ความชื้นสัมพัทธ์ ( RH )
บรรยากาศห้อง ( termaks kbp 6395 F , solheimsviken นอร์เวย์ )
bacteriawere กู้คืนโดยใช้แผ่นสัมผัสของ TSA ( ติดต่อเวลา 30 S )
ที่ 90 มม. โดยติดต่อจานถูกบ่มค้างคืนที่ 37 ° C
( A , B , I , J และ K ) หรือ 30 ° C ( C , D , E , F , G และ H )
อาณานิคมได้ถูกนับและหมายถึง LN มีการคํานวณ
การแปล กรุณารอสักครู่..