2.5. Microbiological analysesTen gr

2.5. Microbiological analyses
Ten grammes of ostrich meat from each group was transferred to a sterile bag with 90 mL sterile Peptone water (Oxoid, CM0009, Hampshire, UK), and was homogenised for 90 s using a stomacher (Lab Blender 400, Model BA6021, Steward Lab., London, UK). Serial decimal dilutions were prepared using the same diluent. A 0.1- or 1-mL inoculum of appropriate dilution was spread on plate count agar (PCA, Oxoid, CM0325). Plates were incubated at 35 °C for 48 h for determination of total aerobic plate counts (TAPC) and at 7 °C for 10 days for total psychrophilic bacteria (Andrews et al., 1995 and Harrigan, 1998).
Lactic acid bacteria (LAB) counts were determined by plating with overlay on de Man, Rogosa, Sharpe agar (MRS, Oxoid, CM0361) and incubating at 35 °C for 48 h (Davidson & Cronin, 1973); Pseudomonas spp. were enumerated on Pseudomonas agar with Cetrimid, Fucidin, Cephaloridin supplement (PA with CFC, Oxoid, CM0559 and SR0103); on spread plates were incubated at 25–30 °C for 48 h. Enterobacteria and Coliforms were examined in Violet Red Bile Glucose agar (VRBG, Oxoid, CM0485) and Violet Red Bile agar (VRB, Oxoid, CM0107) respectively by using pour plates with overlay added before incubation, with incubation at 35 °C for 24 h ( Harrigan, 1998). E. coli was determined according to the ISO 16649–2 ( ISO, 2001) procedure in Tryptone Bile X-Glucuronide agar (TBX, Oxoid, CM0945); pour plates were incubated at 44 °C for 24 h. Yeast and mould were defined on Dichloran Rose Bengal Chloramphenicol agar with Chloramphenicol Selective supplement (DRBC, Oxoid, CM0727 and SR0078). Spread plates were incubated at 25 °C for 3–5 days ( Harrigan, 1998). All microbiological tests were carried out in duplicate, and the results expressed as log10 CFU/g.
2.6. Physico-chemical and sensory analyses
2.6.1. pH
The pH was determined by blending a 10 g sample with 100 mL deionized water for 2 min. The pH of the resultant suspension was measured after 10 min at room temperature (about 20 ± 2 °C) using a Hanna pH metre (Hanna HI-9321,Woonsocket, RI), equipped with a FC220B electrode (Hanna HI-9321), calibrated with standard buffers of pH 4.0 and 7.0. Three readings were made for each sample and the mean recorded (AOAC, 1984).
2.6.2. Thiobarbituric acid reactive substances (TBARS) value
The ostrich meat samples were first chopped thoroughly and then homogenised using a Waring blender. Twenty grammes of the sample was mixed with 50 mL of 20% trichloroacetic acid in 2 M phosphoric acid at 4 °C, and then homogenised by ultra-turrax (ART Miccra RT) for 1.5 min. The resulting mixture was diluted with deionised water to a final volume of 100 mL and then filtered through a Whatman filter paper No. 4. Five millilitre of freshly prepared 0.005 M thiobarbituric acid solution was added to 5 mL of filtrate in a stopper fitted glass tube, mixed by inverting the tube several times, and then kept in the dark for 15 h at room temperature. Finally, the absorbance was measured at 530 nm using a UV visual spectrophotometer (Chebios Optimum-One). Results are expressed as the percentage of malondialdehyde (MDA), which has a molecular weight of 72.06 (Shrestha & Min, 2006).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.5 การทางจุลชีววิทยาวิเคราะห์Grammes สิบเนื้อนกกระจอกเทศจากแต่ละกลุ่มถูกโอนย้ายไปยังถุงฆ่าเชื้อด้วยน้ำ Peptone ฆ่าเชื้อ 90 มล. (Oxoid, CM0009 แฮมเชียร์ UK), และถูก homogenised สำหรับ 90 ใช้เป็นแผงประดับหน้าอก (Lab Blender 400 รุ่น BA6021 ห้อง ปฏิบัติ Steward ลอนดอน สหราชอาณาจักร) Dilutions ลำดับทศนิยมถูกเตรียมใช้ diluent เดียวกัน Inoculum 0.1 - หรือ 1-mL ของเจือจางที่เหมาะสมกระจายไปบนแผ่นนับ agar (PCA, Oxoid, CM0325) แผ่นก็ incubated ที่ 35 ° C สำหรับ 48 h สำหรับการกำหนดจำนวนแผ่นรวมแอโรบิก (TAPC) และ ที่ 7 ° C สำหรับ 10 วันรวม psychrophilic แบคทีเรีย (แอนดรูวส์และ al., 1995 และ Harrigan, 1998)กรดแลกติกแบคทีเรีย (LAB) จำนวนที่กำหนด โดยชุบกับซ้อนทับบนเดอแมน Rogosa, Sharpe agar (MRS, Oxoid, CM0361) และ incubating ที่ 35 ° C สำหรับ 48 h (Davidson และครอเนิน 1973); โอลีได้ระบุใน Pseudomonas agar กับ Cetrimid, Fucidin, Cephaloridin เสริม (PA กับ CFC, Oxoid, CM0559 และ SR0103); บนแผ่นก็ incubated ที่ 25 – 30 ° C สำหรับ 48 h. แพร่กระจาย Enterobacteria และกำจัดถูกตรวจสอบใน agar ม่วงแดงน้ำดีกลูโคส (VRBG, Oxoid, CM0485) และม่วงแดงน้ำดี agar (VRB, Oxoid, CM0107) ตามลำดับ โดยใช้แผ่นเทเพิ่มก่อนบ่ม บ่มที่ 35 ° C ใน 24 h (Harrigan, 1998) กับซ้อนทับ E. coli ถูกกำหนดตาม ISO 16649 – 2 (ISO, 2001) ขั้นตอนใน Tryptone น้ำดี X-Glucuronide agar (TBX, Oxoid, CM0945); เทแผ่นถูก incubated ที่ 44 ° C 24 h. ยีสต์และเชื้อราได้ถูกกำหนดบน Dichloran โรสเบงกอล Chloramphenicol agar กับใช้ Chloramphenicol เสริม (DRBC, Oxoid, CM0727 และ SR0078) แผ่นแพร่กระจายได้ incubated ที่ 25 ° C 3 – 5 วัน (Harrigan, 1998) การทดสอบทางจุลชีววิทยาทั้งหมดถูกดำเนินซ้ำ และผลที่แสดงเป็น log10 CFU/g2.6 การเคมีและฟิสิกส์และการวิเคราะห์ทางประสาทสัมผัส2.6.1. ค่า pHPH ที่ถูกกำหนด โดยการผสมตัวอย่าง 10 กรัมกับน้ำ 100 mL deionized ใกล มีวัด pH ของการระงับผลแก่หลังจาก 10 นาทีที่อุณหภูมิห้อง (ประมาณ 20 ± 2 ° C) โดยใช้แบบ Hanna pH เมตร (Hanna HI-9321, Woonsocket, RI), พร้อมไฟฟ้า FC220B (Hanna HI-9321), ปรับเทียบกับข้อมูลมาตรฐานของค่า pH 7.0 และ 4.0 ทำการพิจารณาในแต่ละตัวอย่าง และค่าเฉลี่ยบันทึก (AOAC, 1984)2.6.2 ค่า Thiobarbituric สารปฏิกิริยากรด (TBARS)ตัวอย่างเนื้อนกกระจอกเทศได้แรกสับอย่างละเอียด และ homogenised ใช้ Waring blender แล้ว Grammes 20 ของตัวอย่างคือผสมกับ 50 มิลลิลิตรของกรด trichloroacetic กรดฟอสฟอริก 2 เมตรที่ 4 ° C 20% และ homogenised โดยอัลตร้า-turrax (ศิลปะ Miccra RT) สำหรับ 1.5 นาทีแล้ว ส่วนผสมได้ผสมกับน้ำปริมาตรสุดท้ายของ 100 มล deionised และกรองโดยใช้กระดาษกรอง Whatman เลข 4 แล้ว Millilitre ห้าของลิ้ม 0.005 M thiobarbituric กรดถูกเพิ่มไป 5 mL ของสารกรองในการตกแต่งจุกหลอดแก้ว ผสม ด้วยสีตรงกันข้ามท่อหลายครั้ง และจากนั้น เก็บไว้ในมืดสำหรับ 15 h ที่อุณหภูมิห้อง สุดท้าย มีวัด absorbance ที่ที่ 530 nm ใช้เป็น UV ภาพเครื่องทดสอบกรดด่าง (Chebios เหมาะสมหนึ่ง) ผลลัพธ์จะแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของ malondialdehyde (MDA), ซึ่งมีน้ำหนักโมเลกุลของ 72.06 (Shrestha และ Min, 2006)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.5 จุลชีววิทยาวิเคราะห์
สิบกรัมของเนื้อนกกระจอกเทศจากแต่ละกลุ่มได้รับการถ่ายโอนไปยังถุงปลอดเชื้อ 90 มิลลิลิตรน้ำหมันเปปโตน (Oxoid, CM0009, Hampshire, UK) และถูกปั่นเป็นเวลา 90 วินาทีโดยใช้ Stomacher (Lab ปั่น 400, รุ่น BA6021 สจ๊วต Lab. ลอนดอนสหราชอาณาจักร) เจือจางทศนิยมอนุกรมถูกจัดทำขึ้นโดยเจือจางเดียวกัน 0.1- หรือหัวเชื้อ 1 มิลลิลิตรของการลดสัดส่วนที่เหมาะสมถูกแพร่กระจายบนแผ่นวุ้นนับ (PCA, Oxoid, CM0325) แผ่นบ่มที่อุณหภูมิ 35 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมงสำหรับการกำหนดนับจานแอโรบิกรวม (TAPC) และที่ 7 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 10 วันสำหรับแบคทีเรีย psychrophilic ทั้งหมด (แอนดรู et al., 1995 และ Harrigan, 1998).
แบคทีเรียกรดแลคติก (LAB ) นับถูกกำหนดโดยการชุบด้วยการซ้อนทับบนชาย Rogosa ชาร์ปวุ้น (MRS, Oxoid, CM0361) และบ่มที่อุณหภูมิ 35 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมง (เดวิดสันและโครนิน, 1973); Pseudomonas spp ถูกระบุในอาหารเลี้ยงเชื้อ Pseudomonas กับ Cetrimid, Fucidin, Cephaloridin อาหารเสริม (PA ที่มีสาร CFC, Oxoid, CM0559 และ SR0103); บนจานแพร่กระจายไปบ่มที่อุณหภูมิ 25-30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมง Enterobacteria Coliforms และมีการตรวจสอบในสีแดงม่วงน้ำดีกลูโคสวุ้น (VRBG, Oxoid, CM0485) และสีแดงม่วงน้ำดีวุ้น (VRB, Oxoid, CM0107) ตามลำดับโดยใช้เทแผ่นซ้อนทับกับเพิ่มก่อนการบ่มด้วยการบ่มที่อุณหภูมิ 35 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง (Harrigan, 1998) เชื้อ E. coli ที่ถูกกำหนดให้เป็นไปตามมาตรฐาน ISO 16649-2 (ISO 2001) ขั้นตอนใน Tryptone น้ำดี X-glucuronide วุ้น (TBX, Oxoid, CM0945); แผ่นเทบ่มที่อุณหภูมิ 44 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง ยีสต์และราที่ถูกกำหนดไว้ใน Dichloran โรสเบงกอล Chloramphenicol วุ้นกับอาหารเสริม Chloramphenicol Selective (DRBC, Oxoid, CM0727 และ SR0078) แผ่นแพร่กระจายไปบ่มที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 3-5 วัน (Harrigan, 1998) การทดสอบทางจุลชีววิทยาทั้งหมดถูกดำเนินการในที่ซ้ำกันและผลที่แสดงเป็น log10 CFU / กรัม.
2.6 ทางกายภาพและทางเคมีและการวิเคราะห์ทางประสาทสัมผัส
2.6.1 ค่า pH
ค่า pH ถูกกำหนดโดยการผสม 10 กรัมตัวอย่าง 100 มิลลิลิตรน้ำกลั่นปราศจากไอออนเป็นเวลา 2 นาที ค่าพีเอชของการระงับผลวัดหลังจาก 10 นาทีที่อุณหภูมิห้อง (ประมาณ 20 ± 2 ° C) โดยใช้ค่าพีเอชฮันนาเมตร (ฮันนา HI-9321, Woonsocket, RI) พร้อมกับขั้ว FC220B (ฮันนา HI-9321) การสอบเทียบกับมาตรฐานของบัฟเฟอร์ค่า pH 4.0 และ 7.0 สามการอ่านที่ถูกสร้างขึ้นสำหรับแต่ละตัวอย่างและบันทึกค่าเฉลี่ย (AOAC, 1984).
2.6.2 กรดด่างทั้งหมดที่ระเหยสารปฏิกิริยา (TBARS) มูลค่า
ตัวอย่างเนื้อนกกระจอกเทศถูกสับเป็นครั้งแรกอย่างทั่วถึงและจากนั้นเข้ากันโดยใช้เครื่องปั่น Waring ยี่สิบกรัมของกลุ่มตัวอย่างที่ได้รับการผสมกับ 50 มล 20% กรดไตรคลอโรใน 2 M กรดฟอสฟอรัสที่ 4 ° C และเข้ากันแล้วโดยอัลตร้า Turrax (ART Miccra RT) 1.5 นาที ส่วนผสมที่ถูกเจือจางด้วยน้ำผล deionised กับปริมาณสุดท้ายของ 100 มิลลิลิตรแล้วกรองผ่านกระดาษกรอง Whatman ลำดับที่ 4. ห้ามิลลิลิตรปรุงสดๆ 0.005 M ด่างทั้งหมดที่ระเหยสารละลายกรดถูกบันทึกอยู่ใน 5 มิลลิลิตรกรองอุดในการติดตั้งหลอดแก้ว ผสมโดย inverting หลอดหลายครั้งแล้วและเก็บไว้ในที่มืดเป็นเวลา 15 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง ในที่สุดการดูดกลืนแสงวัดที่ 530 นาโนเมตรโดยใช้สเปก UV ภาพ (Chebios เหมาะสม-One) ผลการค้นหาจะแสดงเป็นร้อยละของ Malondialdehyde (MDA) ซึ่งมีน้ำหนักโมเลกุล 72.06 (Shrestha & Min 2006)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.5 การวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยา
10 กรัมเนื้อนกกระจอกเทศจากแต่ละกลุ่มถูกย้ายลงถุงปลอดเชื้อด้วย 90 มิลลิลิตร ตามลำดับ ( oxoid cm0009 น้ำหมัน , Hampshire , UK ) และ homogenised 90 s โดยใช้แผงประดับหน้าอก ( Lab ปั่น 400 , รูปแบบ ba6021 แล็บ , UK , ลอนดอน , สจ๊วต ) วิธีการเตรียมการใช้ทศนิยมซีเรียลเจือจางเดียวกัน 01 - หรือ 1-ml เชื้อเจือจางที่เหมาะสมคือกระจาย Planetmath reference ( PCA oxoid cm0325 , ) แผ่นอุณหภูมิ 35 องศา C เป็นเวลา 48 ชั่วโมง เพื่อวิเคราะห์ปริมาณออกซิเจนจานนับ ( tapc ) และ 7 ° C เป็นเวลา 10 วัน ไซโครฟิลิกแบคทีเรียทั้งหมด ( แอนดรู et al . , 1995 และฮาร์ริแกน , 1998 ) .
) แบคทีเรียแลกติกนับซึ่งชุบด้วยการซ้อนทับบน rogosa เดอชาย ,ชาร์ป ( นาง oxoid cm0361 , ) และไข่ที่ 35 °องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมง ( เดวิดสัน&โครนิน , 1973 ) ; Pseudomonas spp . ) ที่ระบุบนอาหารวุ้น cetrimid Pseudomonas , cephaloridin ( ฟิวซิดิน อาหารเสริมที่มีสาร CFC , PA , และ oxoid cm0559 , sr0103 ) ; บนแผ่นกระจายอุณหภูมิ 25 – 30 ° C สำหรับ 48 ชั่วโมง เทอโรแบคทีเรียโคลิฟอร์มและถูกตรวจสอบในวุ้นตาล ม่วงแดง ( vrbg oxoid , น้ำดี ,cm0485 ) และม่วงแดง ( vrb oxoid , น้ำดี , เท cm0107 ) ตามลำดับ โดยใช้แผ่นวางซ้อนเพิ่มก่อนการบ่มด้วยการบ่มที่ 35 ° C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง ( ฮาร์ริแกน , 1998 ) E . coli ถูกกำหนดตาม ISO 16649 – 2 ( ISO , 2001 ) ขั้นตอนใน x-glucuronide ทริพโทนน้ำดี ( tbx oxoid cm0945 , , ) ; เทแผ่นอุณหภูมิ 44 องศา C เป็นเวลา 24 ชั่วโมงยีสต์และราในอาหารวุ้นไว้ไดคลอแรนกุหลาบอลเบงกอลกับ chloramphenicol เลือกเสริม ( drbc oxoid cm0727 , และ , sr0078 ) แผ่แผ่นอุณหภูมิ 25 ° C เป็นเวลา 3 - 5 วัน ( ฮาร์ริแกน , 1998 ) การทดสอบทางจุลชีววิทยาทั้งหมดถูกดำเนินการที่ซ้ำซ้อน และผลลัพธ์ที่แสดงเป็น LN CFU / g .
2.6 physico เคมีและการวิเคราะห์ทางประสาทสัมผัส
ดูแล .
อpH ถูกกำหนดจาก 10 กรัม ผสมกับน้ำ 100 มิลลิลิตร ตัวอย่างคล้ายเนื้อเยื่อประสาน 2 นาที ของช่วงล่าง ซึ่งถูกวัดหลังจาก 10 นาทีที่อุณหภูมิห้อง ( ประมาณ 20 ± 2 ° C ) โดยใช้ pH เมตรแฮน ( hi-9321 Woonsocket , รีฮันนา , ) พร้อมกับ fc220b ขั้ว ( ฮันนา hi-9321 ) เทียบกับบัฟเฟอร์มาตรฐาน pH 4.0 และ 7.0 .สามอ่านเป็นทำสำหรับแต่ละตัวอย่างและค่าเฉลี่ยบันทึกไว้ ( โปรตีน , 1984 ) .
ดาวน์โหลด . เท่ากับกรดปฏิกิริยาสาร ( ปกติ ) ค่า
เนื้อนกกระจอกเทศจำนวนแรกสับให้ละเอียดแล้ว homogenised ใช้สินค้าเครื่องปั่น 20 กรัมของตัวอย่างที่ผสมกับ 50 มล. 20 % กรดไตรคลอโรอะซิติก 2 M กรดฟอสฟอริกที่ 4 ° Cแล้ว homogenised อัลตร้า turrax ( ศิลปะ miccra RT ) ประมาณ 1.5 นาที ส่งผลให้ส่วนผสมเจือจางด้วยน้ำ เพื่อ deionised เล่มสุดท้ายของ 100 มิลลิลิตร แล้วกรองผ่านกระดาษกรอง whatman หมายเลข 4 5 มิลลิลิตรของเตรียมสด 0.005 m เท่ากับสารละลายกรดเพิ่ม 5 มิลลิลิตร กรองในกันชนติดตั้งท่อแก้วผสมโดยกลับหัวหลอด หลายๆ ครั้งแล้วเก็บไว้ในที่มืดเป็นเวลา 15 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง ในที่สุด ค่าวัดที่ 530 nm ใช้ UV Spectrophotometer ( chebios ภาพที่ 1 ) ผลลัพธ์ที่ได้จะแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของมาลอนไดอัลดีไฮด์ ( MDA ) ซึ่งมีน้ำหนักโมเลกุลของ 72.06 ( shrestha &มิน
, 2006 )