Tryptone Bile 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-ß-D-glucuronide agar
(TBX), in accordance with the EU reference method ISO 16649-3
(ISO, 2005). In this method, 50 g of sample material were homogenised
in 450 ml Peptonewater (Difco Bacto peptone 1 g, NaCl 9 g,
distilled water to 1L) giving an initial 1:10 dilution. Appropriate
amounts from this homogenate were transferred to the tubes
resulting in 1 g, 0.1 g and 0.01 g of the original sample material in
the tubes at each dilution series, respectively. In the first five tubes,
10 ml of the 1:10 homogenate describes above were added, giving a
final dilution factor of 1:1 of the original sample. This procedure
makes it possible to quantify E. coli in lower concentrations
compared to methods based on plating on agar. The MMGB tubes
were incubated at 37 ± 1 C for 24 ± 2 h and inspected for colour
change. From each positive tube, material were transferred by a
loop to the surface of TBX agar, followed by examination of the
E. coli specific b-glucuronidase activity (Rice, Allen, & Edberg, 1990)
after aerobic incubation at 44 ± 1 C for 22 ± 2 h. The results were
given as the number of E. coli 100 g1. The MPNs were read from
tables in The National standard method, F16 Issue 4.2 from the
Health Protection Agency (HPA), UK, as described in HPA (2004),
and recommended by Donovan et al. (1998). The lowest detectable
concentration of E. coli when applying this method was 20 E. coli
100 g1.
น้ำดี Tryptone agar 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-ß-D-glucuronide(TBX), ตาม EU อ้างอิง ISO 16649 3 วิธี(ISO, 2005) มี homogenised g 50 ของวัสดุตัวอย่างในวิธีการนี้ใน Peptonewater (Difco Bacto peptone 1 g, 9 g, NaCl 450 มล.กลั่นน้ำ 1 L) ให้เป็น 1:10 เริ่มเจือจาง ที่เหมาะสมยอดเงินจาก homogenate นี้ถูกโอนย้ายไปที่หลอดเกิด ใน 1 g, 0.1 g 0.01 g ของวัสดุตัวอย่างเดิมในท่อในแต่ละชุดเจือจาง ตามลำดับ ในหลอดแรกห้า10 ml 1:10 homogenate ที่อธิบายข้างต้นเพิ่ม ให้เป็นปัจจัยสุดท้ายเจือจางของ 1:1 จากตัวอย่างเดิม ขั้นตอนนี้ทำให้สามารถกำหนดปริมาณ E. coli ในความเข้มข้นต่ำกว่าเมื่อเทียบกับวิธีใช้ชุบบน agar ท่อ MMGBincubated ที่ 37 ± 1 C สำหรับ 24 ± 2 h และตรวจสอบสำหรับการพิมพ์สีเปลี่ยนแปลง แต่ละหลอดบวก วัสดุถูกโอนย้ายโดยการวนรอบไปยังพื้นผิวของ agar TBX ตาม ด้วยการตรวจสอบการกิจกรรมเฉพาะบี-glucuronidase e. coli (ข้าว อัลเลน & Edberg, 1990)หลังจากบ่มแอโรบิกที่ 44 ± 1 C สำหรับ 22 ± 2 h ผลลัพธ์ได้ให้เป็นของ E. coli 100 กรัม 1 MPNs ได้อ่านจากตารางในวิธีมาตรฐานแห่งชาติ F16 4.2 ปัญหาจากการสุขภาพป้องกันหน่วย (HPA), สหราชอาณาจักร ใน HPA (2004),และแนะนำโดยโดโนแวนและ al. (1998) ต่ำที่สุดสามารถตรวจสอบได้ความเข้มข้นของ E. coli เมื่อใช้วิธีนี้ 20 E. coli100 กรัม 1
การแปล กรุณารอสักครู่..
ทริพโทนน้ำดี 5-bromo-4-chloro-3-indolyl - ßวิธีการวุ้น
( tbx ) ตาม EU อ้างอิงวิธี ISO 16649-3
( ISO , 2005 ) ในวิธีนี้ , 50 กรัมของวัสดุ จำนวน homogenised
ใน peptonewater 450 ml ( difco Bacto เปปโตน 1 กรัม ขนาด 9 g ,
กลั่นน้ำ 1 ลิตร ) ให้เริ่มต้นที่เจือจาง 1 : 10 . จากแยกนี้ในปริมาณที่เหมาะสม
มีการโอนท่อที่เกิดใน 1 กรัม0.1 g และ 0.01 กรัมวัสดุตัวอย่างต้นฉบับ
หลอดในแต่ละ 4 ชุด ตามลำดับ ใน 5 หลอดแรก
10 ml ของ 1 : 10 แยกอธิบายข้างต้นได้เพิ่มการให้
ปัจจัยเจือจางสุดท้าย 1 : 1 จากตัวอย่างเดิม ขั้นตอนนี้จะทำให้มันเป็นไปได้ที่จะหา
E . coli ในความเข้มข้นต่ำเมื่อเปรียบเทียบกับวิธีการที่ใช้ในการชุบวุ้น การ mmgb หลอด
อุณหภูมิ 37 ± 1 เป็นเวลา 24 ± 2 H และตรวจสอบสำหรับการเปลี่ยนสี
จากแต่ละบวกท่อ วัสดุที่ถูกย้ายโดย
ลูปเพื่อผิว tbx วุ้น ตามหลักสูตรของ
E . coli ที่เฉพาะเจาะจง b-glucuronidase กิจกรรม ( ข้าว , อัลเลน &เอดเบิร์ก , 1990 )
หลังจากแอโรบิกบ่มที่ 44 ± 1 C 22 ± 2 ชั่วโมงผล
ระบุเป็นตัวเลข E . coli 100 กรัม 1อ่านจากที่ mpns
ตารางในวิธีมาตรฐานแห่งชาติ ออก 4.2 F16 จาก
สำนักงานคุ้มครองสุขภาพ ( HPA ) , อังกฤษ , ตามที่อธิบายไว้ใน HPA ( 2004 ) ,
และแนะนำโดยโดโนแวน et al . ( 1998 ) ค่าความเข้มข้นของเชื้อ E . coli ได้
เมื่อใช้วิธีนี้คือ 20 E . coli
100 กรัม 1
การแปล กรุณารอสักครู่..