This study demonstrated that a flow rate of 7.6 1 min- ’ or greater was needed to
provide expected treatment concentrations in a Heath incubator tray system. Previous
330 TM. Schreier et al./Aquaculture I40 (1996) 323-331
Heath incubator flow-through studies used a one 1 min-’ flow rate (Marking et al.,
1994). The one 1 min- ’ flow rate was selected during an extensive fungicide screening
project in which a low water flow rate was used because only limited amounts of test
chemical were available and an exposure duration of 60 min was typically used. Fish
hatcheries culture eggs in vertical flow incubator trays at an average flow rate of 18.9 1
min-’ (Brown and Gratzek, 1980). The flow of water required to incubate eggs varies
depending on the number of stacked trays, egg-loading rates per tray, and life stage of
eggs. However, hatchery personnel should be aware that a flow rate of 7.6 1 min-’ (2
gal min-I) or g rea t er is necessary to achieve expected treatment concentrations when
using Heath incubators.
The loading of eggs into Heath incubator trays is dependent on existing conditions
and the facilities available. Brown and Gratzek (1980) reported that rainbow trout fry
have hatched successfully in units with 45000 eggs per tray. The acrylic ring was
attached to the bottom of the Heath incubator trays to confine the eggs and to simulate
densities of eggs at a typical hatchery. However, the density of eggs loaded at a hatchery
is approximately five times greater than the egg density used in our study. The lower
egg loading used in the chemical efficacy tests may have affected the occurrence of
fungus on all treatment groups.
Our tests were conducted using one type of water and this study focused solely on the
culture of rainbow trout eggs in fresh water. Variability of water-quality factors, such as
total hardness, pH, and temperature, can increase or decrease the toxicity of some
chemicals (Piper et al., 1982 and Howe et al., 1994). Rach (personal communication,
1995) has reported that hydrogen peroxide treatments of 500 ~1 1-l were not toxic to
eggs of walleye, northern pike, white sucker, lake sturgeon, and channel catfish and fish
toxicity significantly increased with water temperature. If water quality factors differ
greatly from those used in our study, we suggest treating a subsample of eggs before
treating the entire lot to verify any changes in sensitivity.
The quality of eggs tested could also have affected infection rates. The condition of
eggs in this study was excellent as evidenced by the high percent fertility (mean 92%)
and low initial percent mortality. The combination of these factors may have been
responsible for the fact that no statistical difference was observed between the negative
control groups and the prophylactic treatment groups for all chemical efficacy tests.
Hatcheries routinely administer formalin for the control of fungal infections on eggs
at concentrations of 1667-2000 ~1 1-l for 15 min exposures (Piper et al., 1982).
Marking et al. (1994) reported that lower formalin concentrations (250, 500, and 1000
~1 1-l) controlled fungus on cultured rainbow trout eggs at exposures of 60 min. This
study demonstrated that when there is an incidence of fungus on the eggs, formalin
treatments of 1000 or 1500 ~1 I-’ for 15 min are required to control spread of fungus
and to achieve a successful hatch. Lower formalin treatment concentrations are effective
for prophylactic control of fungus (Marking et al., 1994). The use of lower treatment
concentrations could reduce operational costs and decrease levels of formalin discharged
into the environment.
Hydrogen peroxide used at normal treatment concentrations should be relatively safe
to the environment given that its decomposition products are oxygen and water. The
FDA has classified hydrogen peroxide as a low regulatory priority drug if it is used at
TM. Schreier et al./Aquaculture 140 (1996) 323-33I 331
concentrations up to 500 ,ul 1-l to control fungal infections on all life stages of all fish
species, including eggs. This study demonstrated that with fungal infected eggs (10%
infection), hydrogen peroxide treatments of 500 ~1 l- ’ appeared to be the most effective
for controlling the spread of fungus and improving hatch. This study and previous
preliminary egg efficacy studies (Marking et al., 1994) tested hydrogen peroxide
treatments of 1000 ~1 1-j to evaluate the safety and efficacy of higher concentrations.
However, treatments of 1000 ~1 1-l are not currently permitted in the USA. Additional
toxicological and efficacy studies must be conducted before international acceptance of
higher treatment concentrations will be allowed for various life stages of fish.
การศึกษานี้แสดงให้เห็นว่าอัตราการไหลที่ 7.6 1 นาที - ' หรือความถูกต้องให้คาดรักษาความเข้มข้นในป่าเป็นตู้อบถาดระบบ ก่อนหน้านี้330 TM I40 ร้อยเอ็ด/เพาะเลี้ยงสัตว์น้ำ Schreier (1996) 323-331ตู้อบศึกษาไหลผ่านป่าใช้เป็น 1 หนึ่งนาที-' อัตราการไหล (หมาย et al.,1994) . หนึ่งนาที - ' เลือกอัตราการไหลในระหว่างการคัดกรองสารเคมีหลากหลายโครงการที่อัตราการไหลของน้ำต่ำถูกใช้เนื่องจากข้อจำกัดของการทดสอบเท่านั้นสารเคมีถูกใช้ และโดยปกติจะใช้ระยะเวลาการรับแสงของ 60 นาที ปลาhatcheries วัฒนธรรมไข่ในถาดตู้อบแนวการไหลอัตราการไหลเฉลี่ย 18.9 1นาที-' (น้ำตาลและ Gratzek, 1980) การไหลของน้ำที่ต้องฟักไข่แตกต่างกันไปขึ้นอยู่กับจำนวนของถาดซ้อน ราคาไข่-การโหลดถาด และช่วงชีวิตของไข่ อย่างไรก็ตาม บุคลากรโรงเพาะฟักควรทราบที่อัตราการไหลที่ 7.6 1 นาที-' (2นาที gal-ฉัน) หรือ g สวทช t เอ้อ จำเป็นเพื่อให้ได้ความเข้มข้นของการรักษาที่คาดไว้เมื่อใช้ผลิตและฮีธโหลดของไข่ลงในถาดตู้ฮีธได้ขึ้นอยู่กับเงื่อนไขที่มีอยู่และการอำนวยความสะดวก น้ำตาลและ Gratzek (1980) รายงานว่า ปลาเทราต์สายรุ้งทอดมีฟักเรียบร้อยแล้วในหน่วยกับไข่ 45000 ต่อถาด มีแหวนอะคริลิคใสแนบกับด้านล่างของถาดตู้ฮีธขังไข่ และ การจำลองความหนาแน่นของไข่ในบ่อเพาะทั่วไป อย่างไรก็ตาม ความหนาแน่นของไข่โหลดที่เป็นบ่อเพาะมีค่ามากกว่าความหนาแน่นของไข่ที่ใช้ในการศึกษาของเราประมาณห้าครั้ง ที่ต่ำกว่าโหลดไข่ที่ใช้ในการทดสอบประสิทธิภาพสารเคมีอาจมีผลกระทบที่เกิดขึ้นเชื้อราในกลุ่มรักษาทั้งหมดเราได้ทดสอบใช้น้ำชนิดหนึ่ง และการศึกษานี้มุ่งเน้นเพียงการวัฒนธรรมของไข่ปลาเทราต์สายรุ้งในน้ำจืด ความแปรปรวนของคุณภาพน้ำปัจจัย เช่นความกระด้างทั้งหมด ค่า pH อุณหภูมิ และสามารถเพิ่ม หรือลดความเป็นพิษของสารเคมี (ไพเพอร์ et al. 1982 และลอร์ดฮาว et al. 1994) ราช (สื่อสาร1995) มีรายงานว่า ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์รักษา 500 1 1 ลิตรไม่ได้เป็นพิษไข่ walleye เหนือ pike, sucker ขาว ปลาสเตอร์ เจียนทะเลสาบ และช่องปลาดุก และปลาความเป็นพิษขึ้นกับอุณหภูมิของน้ำอย่างมาก ถ้าปัจจัยคุณภาพน้ำที่แตกต่างกันอย่างมากจากผู้ใช้ในการศึกษาของเรา เราแนะนำ subsample ของไข่ก่อนการรักษารักษามากทั้งการตรวจสอบการเปลี่ยนแปลงใด ๆ ในความไวคุณภาพของไข่ที่ได้รับการทดสอบอาจมีผลต่ออัตราการติดเชื้อ สภาพของไข่ในการศึกษานี้ได้ดีเป็นหลักฐานความอุดมสมบูรณ์เปอร์เซ็นต์สูง (หมายถึง 92%)และการตายเปอร์เซ็นต์เริ่มต้นต่ำ การรวมกันของปัจจัยเหล่านี้อาจได้รับรับผิดชอบความจริงที่ว่า ความแตกต่างทางสถิติไม่ถูกตรวจสอบระหว่างการลบกลุ่มควบคุมและกลุ่มรักษาป้องกันโรคสำหรับการทดสอบประสิทธิภาพสารเคมีทั้งหมดHatcheries ดูแล formalin สำหรับการควบคุมการติดเชื้อราในไข่เป็นประจำที่ความเข้มข้นของ 1667-2000 1 1 l สำหรับ 15 นาทีแสง (ไพเพอร์ et al. 1982)หมาย et al. (1994) รายงาน formalin ที่ต่ำกว่าความเข้มข้น (250, 500 และ 10001 1-l) ควบคุมเชื้อราบนไข่ปลาเทราต์สายรุ้งอ่างที่แสงของ 60 นาทีนี้การศึกษาแสดงให้เห็นว่าเมื่อมีการเกิดเชื้อราบนไข่ formalinรักษาของ 1000 หรือ 1500 1 ฉัน-' 15 นาทีจะต้องควบคุมการแพร่กระจายของเชื้อราและ เพื่อให้บรรลุการฟักประสบความสำเร็จ ความเข้มข้นรักษา formalin ต่ำมีประสิทธิภาพการควบคุมป้องกันโรคของเชื้อรา (ทำเครื่องหมาย et al. 1994) การใช้การรักษาต่ำกว่าความเข้มข้นสามารถลดต้นทุน และลดระดับของ formalin ปล่อยในสภาพแวดล้อมไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ที่ใช้ที่ความเข้มข้นปกติรักษาควรจะค่อนข้างปลอดภัยสิ่งแวดล้อมระบุว่า ผลิตภัณฑ์ย่อยสลายมีออกซิเจนและน้ำ การFDA ได้จัดไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ให้เป็นยาสำคัญระเบียบต่ำถ้าใช้ได้เมื่อTM Schreier ร้อยเอ็ด/สัตว์น้ำ 140 (1996) 323-33I 331ความเข้มข้นถึง 500, ul 1 l เพื่อควบคุมเชื้อราในทุกขั้นตอนชีวิตของปลาทั้งหมดสายพันธุ์ รวมทั้งไข่ การศึกษานี้แสดงให้เห็นว่า มีไข่ติดเชื้อเชื้อรา (10%ติดเชื้อ), ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์รักษา 500 ~ 1 l - ' ดูเหมือนจะ มีประสิทธิภาพที่สุดสำหรับการควบคุมการแพร่กระจายของเชื้อรา และพัฒนาฟัก การศึกษานี้ และก่อนหน้านี้ศึกษา (ทำเครื่องหมาย et al. 1994) ทดสอบเบื้องต้นไข่ประสิทธิภาพไฮโดรเจนเพอร์ออกไซด์ทรีทเมนท์ 1000 j 1 1 การประเมินความปลอดภัยและประสิทธิภาพของความเข้มข้นสูงอย่างไรก็ตาม ทรีทเมนท์ 1000 1 1 l จะไม่ได้รับอนุญาตในสหรัฐอเมริกา เพิ่มเติมพิษ และศึกษาประสิทธิภาพต้องดำเนินการก่อนที่จะยอมรับระดับนานาชาติความเข้มข้นสูงของการรักษาจะได้รับอนุญาตสำหรับขั้นตอนต่าง ๆ ของชีวิตของปลา
การแปล กรุณารอสักครู่..
การศึกษาครั้งนี้แสดงให้เห็นว่าอัตราการไหล 7.6 1 min- 'หรือสูงกว่าที่จำเป็นเพื่อ
ให้ความเข้มข้นของการรักษาคาดว่าในระบบถาดศูนย์บ่มเพาะ Heath ก่อนหน้า
330 TM Schreier et al./Aquaculture I40 (1996) 323-331
Heath ศูนย์บ่มเพาะการศึกษาการไหลผ่านที่ใช้หนึ่ง 1 อัตราการไหล min- '(ทำเครื่องหมาย et al.,
1994) อัตราการไหลหนึ่ง 1 min- 'ได้รับเลือกในระหว่างการตรวจคัดกรองสารเคมีที่กว้างขวาง
โครงการซึ่งเป็นอัตราการไหลของน้ำต่ำถูกนำมาใช้เพราะจำนวน จำกัด เท่านั้นของการทดสอบ
สารเคมีที่มีอยู่และระยะเวลาการเปิดรับ 60 นาทีถูกนำมาใช้โดยทั่วไป ปลา
โรงเพาะฟักไข่วัฒนธรรมในถาดไหลศูนย์บ่มเพาะในแนวตั้งที่อัตราการไหลเฉลี่ย 18.9 1
min- '(บราวน์และ Gratzek, 1980) การไหลของน้ำที่จำเป็นในการฟักไข่แตกต่างกันไป
ขึ้นอยู่กับจำนวนของถาดซ้อนอัตราไข่โหลดต่อถาดและระยะของช่วงชีวิตของ
ไข่ แต่บุคลากรในโรงเพาะฟักควรจะตระหนักว่าอัตราการไหล 7.6 1 min- '(2
แกลลอนนาที I) หรือ G Rea T ER เป็นสิ่งที่จำเป็นเพื่อให้บรรลุความเข้มข้นของการรักษาที่คาดไว้เมื่อ
ใช้ตู้อบ Heath.
โหลดของไข่ลงในถาด Heath ศูนย์บ่มเพาะเป็น ขึ้นอยู่กับเงื่อนไขที่มีอยู่
และสิ่งอำนวยความสะดวกที่มีอยู่ บราวน์และ Gratzek (1980) รายงานว่าทอดเรนโบว์เทราท์
ได้ประสบความสำเร็จในการเพาะฟักในหน่วย 45000 ฟองต่อถาด แหวนคริลิคที่ได้รับการ
ติดอยู่กับด้านล่างของป่าถาดศูนย์บ่มเพาะการ จำกัด ไข่และการจำลอง
ความหนาแน่นของไข่ที่ฟักไข่ทั่วไป แต่ความหนาแน่นของไข่โหลดที่โรงเพาะฟักที่
จะอยู่ที่ประมาณห้าครั้งยิ่งใหญ่กว่าความหนาแน่นของไข่ที่ใช้ในการศึกษาของเรา ที่ต่ำกว่า
การโหลดไข่ที่ใช้ในการทดสอบประสิทธิภาพสารเคมีอาจมีผลกระทบต่อการเกิด
เชื้อราในทุกกลุ่มการรักษา.
การทดสอบของเราได้ดำเนินการโดยใช้ประเภทหนึ่งของน้ำและการศึกษาครั้งนี้มุ่งเน้น แต่เพียงผู้เดียวใน
วัฒนธรรมของไข่เรนโบว์เทราท์ในน้ำจืด ความแปรปรวนของปัจจัยคุณภาพน้ำเช่น
ความกระด้างรวม pH และอุณหภูมิสามารถเพิ่มหรือลดความเป็นพิษของบาง
สารเคมี (Piper et al., ปี 1982 และฮาว et al., 1994) Rach (การสื่อสารส่วนบุคคล,
1995) มีรายงานว่าการรักษาไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ 500 ~ 1 1-L ไม่เป็นพิษต่อ
ไข่ตาลหอกภาคเหนือดูดสีขาว, ทะเลสาบปลาสเตอร์เจียนและช่องดุกและปลา
เป็นพิษเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญกับอุณหภูมิของน้ำ หากปัจจัยคุณภาพน้ำที่แตกต่างกัน
อย่างมากจากการที่ใช้ในการศึกษาของเราเราขอแนะนำให้รักษา subsample ของไข่ก่อน
การรักษาจำนวนมากทั้งในการตรวจสอบการเปลี่ยนแปลงใด ๆ ในความไว.
คุณภาพของไข่ที่ผ่านการทดสอบยังอาจมีผลกระทบต่ออัตราการติดเชื้อ สภาพของ
ไข่ในการศึกษาครั้งนี้ได้ดีเป็นหลักฐานโดยความอุดมสมบูรณ์สูงร้อยละ (เฉลี่ย 92%)
และต่ำอัตราการเสียชีวิตร้อยละเริ่มต้น การรวมกันของปัจจัยเหล่านี้อาจจะเป็น
ผู้รับผิดชอบสำหรับความจริงที่ว่าไม่มีความแตกต่างทางสถิติพบว่าระหว่างเชิงลบ
กลุ่มควบคุมและกลุ่มการรักษาป้องกันโรคสำหรับทุกการทดสอบประสิทธิภาพสารเคมี.
Hatcheries ประจำจัดการฟอร์มาลินในการควบคุมการติดเชื้อราในไข่
ที่ระดับความเข้มข้น 1667 -2000 ~ 1 1-L 15 ความเสี่ยงนาที (Piper et al., 1982).
การทำเครื่องหมาย et al, (1994) รายงานว่าความเข้มข้นของฟอร์มาลินที่ต่ำกว่า (250, 500, 1000
~ 1 1-L) ควบคุมการเพาะเลี้ยงเชื้อราบนไข่เรนโบว์เทราท์ที่เปิดรับ 60 นาที นี้
การศึกษาแสดงให้เห็นว่าเมื่อมีอุบัติการณ์ของเชื้อราบนไข่ฟอร์มาลิน
รักษา 1000 หรือ 1500 ~ 1 I- 'นาน 15 นาทีจะต้องควบคุมการแพร่กระจายของเชื้อรา
และเพื่อให้บรรลุฟักที่ประสบความสำเร็จ ต่ำกว่าความเข้มข้นของฟอร์มาลินที่มีประสิทธิภาพ
ในการควบคุมป้องกันโรคของเชื้อรา (Marking et al., 1994) การใช้การรักษาที่ต่ำกว่า
ความเข้มข้นที่สามารถลดค่าใช้จ่ายในการดำเนินงานและลดระดับของฟอร์มาลินออกจากโรงพยาบาล
ในสภาพแวดล้อม.
ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์มาใช้ที่ความเข้มข้นการรักษาตามปกติควรจะค่อนข้างปลอดภัย
ต่อสิ่งแวดล้อมที่ได้รับจากการสลายตัวของมันเป็นออกซิเจนและน้ำ
FDA ได้จัดไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์เป็นยาลำดับความสำคัญของการกำกับดูแลในระดับต่ำหากมีการใช้ใน
TM Schreier et al./Aquaculture 140 (1996) 331 323-33I
ความเข้มข้นถึง 500, UL 1-L เพื่อควบคุมการติดเชื้อราในทุกช่วงชีวิตของปลา
ชนิดรวมทั้งไข่ การศึกษาครั้งนี้แสดงให้เห็นว่ามีไข่เชื้อราที่ติดเชื้อ (10%
ติดเชื้อ), การรักษาไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ 500 ~ 1 L- 'ดูเหมือนจะมีประสิทธิภาพมากที่สุด
ในการควบคุมการแพร่กระจายของเชื้อราและการปรับปรุงฟัก การศึกษาครั้งนี้และก่อนหน้านี้
การศึกษาเบื้องต้นไข่ประสิทธิภาพ (Marking et al., 1994) การทดสอบไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์
รักษา 1000 ~ 1 1-J เพื่อประเมินความปลอดภัยและประสิทธิภาพของความเข้มข้นสูง.
อย่างไรก็ตามการรักษา 1000 ~ 1 1-L ไม่ได้ในขณะนี้ ที่ได้รับอนุญาตในประเทศสหรัฐอเมริกา เพิ่มเติม
การศึกษาทางพิษวิทยาและประสิทธิภาพจะต้องดำเนินการก่อนที่จะได้รับการยอมรับระหว่างประเทศของ
ความเข้มข้นของการรักษาที่สูงขึ้นจะได้รับอนุญาตสำหรับช่วงชีวิตต่างๆของปลา
การแปล กรุณารอสักครู่..