A commercial blue-veined cheese made from unpas-teurized milk was examined by conventional culturing and PCR denaturing gradient gel electrophoresis analy-sis of the bacterial community 16S rRNA genes using 3 primer sets, V3, V4V5, and V6V8. Genomic DNA for amplification was extracted directly from raw milk, starter culture, cheese at different stages of produc-tion, fully ripened cheese, and from the cultured cells grown on various media. The outer rind was sampled separately from the inner white core and blue veins. A diverse microbiota containing Lactococcus lactis ssp. lactis, Lactobacillus plantarum, Lactobacillus curvatus, Staphylococcus gallinarum, Staphylococcus devriesei, Microbacterium sp., Sphingobacterium sp., Mycetocolasp., Brevundimonas sp., Enterococcus faecalis, Proteussp., and Kocuria sp. was detected in the raw milk using culturing methods, but only Lactococcus lactis ssp. lac-tis, Lactobacillus plantarum, and Enterococcus faecalissurvived to the final cheese and were detected both in the core and the rind. Using PCR denaturing gradi-ent gel electrophoresis analysis of the cheese process samples, Staphylococcus equorum and Enterococcus du-rans were found in the rind of prepiercing samples but not in the core and veins; after piercing, these species were found in all parts of the cheese but survived only in the rind when the cheese was fully ripened. Brevibac-terium sp., Halomonas sp., Acinetobacter sp., Alkalibac-terium sp., and Corynebacterium casei were identified only by PCR denaturing gradient gel electrophoresis and not cultured from the samples. Brevibacterium sp. was initially identified in the cheese postpiercing (core and veins), Halomonas sp. was found in the matured cheese (rind), and Acinetobacter sp., Alkalibacteriumsp., and Corynebacterium casei were also found in the prepiercing samples (rind) and then found through the subsequent process stages. The work suggests that in this raw milk cheese, a limited community from the milk survive to the final cheese, with salt addition and handling contributing to the final cheese consortium.Key words: raw milk, blue-veined cheese, PCR denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE), microbial diversity
พาณิชย์ชีสสีฟ้าลายที่ทำจากนม unpas-teurized ได้รับการตรวจสอบโดยการเพาะเลี้ยงและการชุมนุม PCR เปลี่ยนรูป gel electrophoresis มีส่วน-SIS ของชุมชนแบคทีเรียยีน 16S rRNA โดยใช้ไพรเมอร์ 3 ชุด, V3, V4V5 และ V6V8 ดีเอ็นเอสำหรับการขยายถูกสกัดโดยตรงจากน้ำนมดิบวัฒนธรรมเริ่มต้นชีสในขั้นตอนที่แตกต่างกันของ produc-tion ชีสสุกเต็มที่และจากเซลล์เพาะเลี้ยงที่ปลูกในสื่อต่างๆ เปลือกนอกเป็นตัวอย่างแยกต่างหากจากแกนสีขาวด้านในและหลอดเลือดดำสีฟ้า microbiota มีความหลากหลายที่มี Lactococcus lactis เอสเอส lactis, Lactobacillus plantarum, Lactobacillus curvatus, Staphylococcus gallinarum, Staphylococcus devriesei, Microbacterium sp. Sphingobacterium sp. Mycetocolasp. Brevundimonas sp. Enterococcus faecalis, Proteussp. และ Kocuria SP ถูกตรวจพบในน้ำนมดิบโดยใช้วิธีการเพาะเลี้ยง แต่ Lactococcus lactis เอสเอส LAC-tis, Lactobacillus plantarum และ Enterococcus faecalissurvived กับชีสสุดท้ายและได้รับการตรวจพบทั้งในหลักและเปลือก โดยใช้วิธี PCR denaturing วิเคราะห์ gel electrophoresis Gradi-กิจการของตัวอย่างกระบวนการชีส, Staphylococcus eQuorum และ Enterococcus du-Rans ถูกพบในเปลือกของตัวอย่าง prepiercing แต่ไม่ได้อยู่ในหลักและหลอดเลือดดำ; หลังจากเจาะสายพันธุ์เหล่านี้ถูกพบอยู่ในทุกส่วนของชีส แต่รอดชีวิตเพียงคนเดียวในเปลือกเมื่อชีสถูกสุกเต็มที่ Brevibac-terium sp. Halomonas sp. Acinetobacter sp. Alkalibac-terium sp. และ Corynebacterium casei ถูกระบุโดยเฉพาะ PCR denaturing electrophoresis ลาดเจลและไม่สามารถเพาะเลี้ยงได้จากกลุ่มตัวอย่าง Brevibacterium SP ที่ถูกระบุว่าครั้งแรกใน postpiercing ชีส (หลักและหลอดเลือดดำ) Halomonas SP ถูกพบในชีสสุก (เปลือก) และ Acinetobacter sp. Alkalibacteriumsp. และ Corynebacterium casei นอกจากนี้ยังพบในตัวอย่าง prepiercing นี้ (เปลือก) และแล้วก็พบว่าผ่านขั้นตอนกระบวนการที่ตามมา งานที่แสดงให้เห็นว่าในชีสนมดิบนี้เป็นชุมชนที่ จำกัด จากนมรอดชีสสุดท้ายด้วยนอกจากนี้เกลือและการจัดการที่เอื้อต่อการสุดท้ายคำชีส consortium.Key: น้ำนมดิบสีฟ้าลายชีส PCR เปลี่ยนรูป gel electrophoresis (DGGE) ความหลากหลายของจุลินทรีย์
การแปล กรุณารอสักครู่..

ชี veined การค้าที่ทำจากนม unpas-teurized ได้รับการตรวจสอบโดยการเย็บแบบธรรมดาและ PCR การไล่ระดับสีเจล electrophoresis analy ของชุมชนแบคทีเรียที่ 16S rRNA ยีนใช้3ชุดไพรเมอร์, V3, V4V5 และ V6V8 Genomic ดีเอ็นเอสำหรับการขยายตัวถูกสกัดโดยตรงจากนมดิบ, วัฒนธรรมเริ่มต้น, ชีสในขั้นตอนที่แตกต่างกันของ produc, ชีสสุกอย่างเต็มที่, และจากเซลล์ที่เพาะเลี้ยงที่ปลูกในสื่อต่างๆ. ด้านนอกถูกสุ่มตัวอย่างแยกต่างหากจากแกนสีขาวด้านในและหลอดเลือดดำสีฟ้า Microbiota ที่มีความหลากหลายที่ประกอบด้วย Lactococcus lactis ssp. lactis, แลคโตบาซิลลัส, ยาแลคโตบาซิลลัส, Staphylococcus gallinarum, Staphylococcus devriesei, Microแบคทีเรีย sp., Sphingobacterium sp., Mycetocolasp., Enterococcus faecalis, Proteussp. และ Kocuria sp ได้รับการตรวจพบในนมดิบโดยใช้วิธีการที่เหมาะสม, แต่เฉพาะ Lactococcus lactis ssp. lac, แลคโตบาซิลลัส, และ Enterococcus faecalisรอดชีวิตไปชีสุดท้ายและถูกตรวจพบทั้งในหลัก และเปลือก การใช้ PCR electrophoresis การวิเคราะห์ของตัวอย่างกระบวนการชีส Staphylococcus equorum และ Enterococcus du-rans พบในเปลือกของตัวอย่างก่อนเจาะแต่ไม่ได้อยู่ในแกนและหลอดเลือดดำ; หลังจากเจาะ, สายพันธุ์เหล่านี้ถูกพบในทุกส่วนของชีสแต่รอดชีวิตเฉพาะในเปลือกเมื่อชีสเป็นการสุกอย่างเต็มที่ Brevibac, halomonas sp., acinetobacter sp., alkalibac-terium, และ Corynebacterium กาถูกระบุโดย PCR การไล่ระดับสีเจล electrophoresis และไม่เพาะเลี้ยงจากตัวอย่าง. Brevibacterium sp ครั้งแรกที่ระบุไว้ในการเจาะชีส (แกนและหลอดเลือดดำ) halomonas sp พบในชีส (rind) และ acinetobacter sp, alkalibacteriumsp และ Corynebacterium กายังพบในตัวอย่างก่อนการเจาะ (rind ) แล้วพบผ่านขั้นตอนกระบวนการที่ตามมา งานนี้แสดงให้เห็นว่าในชีสนมดิบนี้ชุมชนที่จำกัดจากนมอยู่รอดกับชีสสุดท้ายที่มีการเพิ่มเกลือและการจัดการที่มีส่วนร่วมในการชุมนุมชีสสุดท้าย คำสำคัญ: นมดิบ, ชี veined, PCR การไล่ระดับสีเจล electrophoresis (DGGE), ความหลากหลายของจุลินทรีย์
การแปล กรุณารอสักครู่..
