2. Materials and methods2.1. Chemic

2. Materials and methods
2.1. Chemicals and reagents
Standard of b-carotene Type I (95% purity, UV) was obtained
from SigmaeAldrich. All of the solvents and chemicals used in this
study were of analytical grade and were procured from SRL, s d fine
chemicals and Rankem, India.
2.2. Standard preparation
The standard stock solution at 1 mg/ml concentration was
prepared by dissolving standard in acetone. The working standard
solutions of 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0.50, 0.25, 0.125, 0.062, and 0.03 mg/ml
were prepared daily in the same solvent and were used to spike raw
carrot, sweet potato and blank meat samples. All solutions were
protected against light with aluminium foil and maintained at 4 C
for one month maximum, because greater periods of storage may
produce irreproducible results due to degradation or reaction
processes.
2.3. Sample collection
Raw carrots (red variety) and sweet potatoes (orange variety)
were purchased from local grocery stores. Chicken meat samples
were collected from experimental slaughterhouse of Department of
Livestock Products Technology, College of Veterinary Science,
GADVASU, Ludhiana, India. The collected vegetables were cleaned,
washed and then packed in colourless low density polyethylene
(LDPE) bags. Chicken meat samples were collected from the
deboning table where the chilled carcasses were cut, deboned,
trimmed, and packed. About 2 kg of the sample was cut aseptically
during deboning operations and transferred to self-sealing LDPE.
Meat emulsion of control samplewas prepared by blending of meat
mince, salt, sugar, phosphates, nitrite, spice mix, condiments,
refined wheat flour, etc (Bhosale, Biswas, Sahoo, Chatli, Sharma &
Sikka, in press). Emulsions for treated samples were prepared by
adding carrot (10 g/100 g) and sweet potato (10 g/100 g) along with
other ingredients as mentioned for control sample. The meat
emulsions prepared as above formulations were filled up in rectangular
shape aluminium molds and cooked in an autoclave at 15lb
pressure, 121 C temperature for 20 min. The cooked samples were
cooled to room temperature, cut into nuggets, packed in colourless
low density polyethylene bags (150e200 gauges), sealed, labeled
and then deep-frozen. All types of samples were stored at 20 C
before analysis, separately.
2.4. Sample preparation and extraction
Frozen samples were thawed overnight in a refrigerator
(4 1 C). For vegetables, outer most thin layer (skin or cuticle) and
central white (only for carrot) portion were removed and remaining
portions were sliced. The components so obtained were then
ground separately into a spice grinder until become fine paste. The
muscle samples (10e15 g) were diced into small pieces after being
trimmed of external fat and fascia and then blended properly using
pestle and mortar for 2 min.
For extraction, a representative portion of this sample (1 g) was
accurately weighed in a glass test tube. Then 5 ml of chilled acetone
was added to it, and the tube was held for 15 min with occasional
shaking at 4 1 C, vortexed at high speed for 10 min, and finally
centrifuged at 1370 g for 10 min. Supernatant was collected into
a separate test tube, and the compound was re-extracted with 5 ml
of an acetone followed by centrifugation once again as above. Both
of the supernatants were pooled together and then passed through
the Whatman filter paper No. 42. The absorbance of the extract was
determined at 449 nmwavelength in a UVeVis spectrophotometer.
Other extracts of diethyl ether, acetonitrile and methanol also
prepared in similar manner as mentioned for acetone extraction.
Carrot and sweet potato fortified nuggets as well as control
(without added carrot/sweet potato) sample were extracted with
acetone alone after identification of best extractant from above
extraction mehods.
2.5. Fortification of blanks and preparation of calibration curves
Blank samples for raw carrot (RC), sweet potato (SP), raw
chicken meat (RCM) and cooked chicken meat (CCM) were
prepared as described above. A working standard containing 32 mg/
ml was prepared from the 1 mg/ml stock solutions kept at 4 C.
From this working standard different dilutions were made to spike
the samples. Blank samples of 1.0 g were spiked with working
standards to obtain final concentrations 16.0, 8.0, 4.0, 2.0, 1.0, 0.5,
0.25, 0.125, 0.062, 0.031 and 0.015 mg/g of b- carotene and extracted
as described previously. Calibration curves were plotted by taking
Optical Density (O. D.) value to the respective concentrations by
back extrapolation methods. These curves were used to quantify
the b-carotene content in the samples analyzed.
2.6. Analytical recovery and precision
Analytical recoveries were determined by spiking b-carotene to
blank samples to yield concentrations of 1 mg/g by back extrapolation
method and then analyzed. The amount of b-carotene found
by the assay method for each concentration was estimated using
a linear regression equation after calibration of standard curves
considering O. D. values. Five determinants were made for each
concentration, and the percent recovery was calculated. Both intraand
inter-day assay precisions [repeatability relative standard
deviation (RSDr) and reproducibility relative standard deviation
(RSDR)] were determined by analyzing three spiked concentrations
of 0.1, 1.0, and 5.0 mg/g, five sets each with blank. However, intraday
assay precisionwas determined at three occasions at least 6 h apart,
whereas inter-day precision was determined at three successive
days.
2.7. Statistics
The recovery and precision data were evaluated with an inhouse
statistical software program making use of robust statistic
concepts of Snedecor and Cochran (1994).

2. Materials and methods
2.1. Chemicals and reagents
Standard of b-carotene Type I (95% purity, UV) was obtained
from SigmaeAldrich. All of the solvents and chemicals used in this
study were of analytical grade and were procured from SRL, s d fine
chemicals and Rankem, India.
2.2. Standard preparation
The standard stock solution at 1 mg/ml concentration was
prepared by dissolving standard in acetone. The working standard
solutions of 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0.50, 0.25, 0.125, 0.062, and 0.03 mg/ml
were prepared daily in the same solvent and were used to spike raw
carrot, sweet potato and blank meat samples. All solutions were
protected against light with aluminium foil and maintained at 4 C
for one month maximum, because greater periods of storage may
produce irreproducible results due to degradation or reaction
processes.
2.3. Sample collection
Raw carrots (red variety) and sweet potatoes (orange variety)
were purchased from local grocery stores. Chicken meat samples
were collected from experimental slaughterhouse of Department of
Livestock Products Technology, College of Veterinary Science,
GADVASU, Ludhiana, India. The collected vegetables were cleaned,
washed and then packed in colourless low density polyethylene
(LDPE) bags. Chicken meat samples were collected from the
deboning table where the chilled carcasses were cut, deboned,
trimmed, and packed. About 2 kg of the sample was cut aseptically
during deboning operations and transferred to self-sealing LDPE.
Meat emulsion of control samplewas prepared by blending of meat
mince, salt, sugar, phosphates, nitrite, spice mix, condiments,
refined wheat flour, etc (Bhosale, Biswas, Sahoo, Chatli, Sharma &
Sikka, in press). Emulsions for treated samples were prepared by
adding carrot (10 g/100 g) and sweet potato (10 g/100 g) along with
other ingredients as mentioned for control sample. The meat
emulsions prepared as above formulations were filled up in rectangular
shape aluminium molds and cooked in an autoclave at 15lb
pressure, 121 C temperature for 20 min. The cooked samples were
cooled to room temperature, cut into nuggets, packed in colourless
low density polyethylene bags (150e200 gauges), sealed, labeled
and then deep-frozen. All types of samples were stored at 20 C
before analysis, separately.
2.4. Sample preparation and extraction
Frozen samples were thawed overnight in a refrigerator
(4 1 C). For vegetables, outer most thin layer (skin or cuticle) and
central white (only for carrot) portion were removed and remaining
portions were sliced. The components so obtained were then
ground separately into a spice grinder until become fine paste. The
muscle samples (10e15 g) were diced into small pieces after being
trimmed of external fat and fascia and then blended properly using
pestle and mortar for 2 min.
For extraction, a representative portion of this sample (1 g) was
accurately weighed in a glass test tube. Then 5 ml of chilled acetone
was added to it, and the tube was held for 15 min with occasional
shaking at 4  1 C, vortexed at high speed for 10 min, and finally
centrifuged at 1370  g for 10 min. Supernatant was collected into
a separate test tube, and the compound was re-extracted with 5 ml
of an acetone followed by centrifugation once again as above. Both
of the supernatants were pooled together and then passed through
the Whatman filter paper No. 42. The absorbance of the extract was
determined at 449 nmwavelength in a UVeVis spectrophotometer.
Other extracts of diethyl ether, acetonitrile and methanol also
prepared in similar manner as mentioned for acetone extraction.
Carrot and sweet potato fortified nuggets as well as control
(without added carrot/sweet potato) sample were extracted with
acetone alone after identification of best extractant from above
extraction mehods.
2.5. Fortification of blanks and preparation of calibration curves
Blank samples for raw carrot (RC), sweet potato (SP), raw
chicken meat (RCM) and cooked chicken meat (CCM) were
prepared as described above. A working standard containing 32 mg/
ml was prepared from the 1 mg/ml stock solutions kept at 4 C.
From this working standard different dilutions were made to spike
the samples. Blank samples of 1.0 g were spiked with working
standards to obtain final concentrations 16.0, 8.0, 4.0, 2.0, 1.0, 0.5,
0.25, 0.125, 0.062, 0.031 and 0.015 mg/g of b- carotene and extracted
as described previously. Calibration curves were plotted by taking
Optical Density (O. D.) value to the respective concentrations by
back extrapolation methods. These curves were used to quantify
the b-carotene content in the samples analyzed.
2.6. Analytical recovery and precision
Analytical recoveries were determined by spiking b-carotene to
blank samples to yield concentrations of 1 mg/g by back extrapolation
method and then analyzed. The amount of b-carotene found
by the assay method for each concentration was estimated using
a linear regression equation after calibration of standard curves
considering O. D. values. Five determinants were made for each
concentration, and the percent recovery was calculated. Both intraand
inter-day assay precisions [repeatability relative standard
deviation (RSDr) and reproducibility relative standard deviation
(RSDR)] were determined by analyzing three spiked concentrations
of 0.1, 1.0, and 5.0 mg/g, five sets each with blank. However, intraday
assay precisionwas determined at three occasions at least 6 h apart,
whereas inter-day precision was determined at three successive
days.
2.7. Statistics
The recovery and precision data were evaluated with an inhouse
statistical software program making use of robust statistic
concepts of Snedecor and Cochran (1994).

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

2. วัสดุและวิธีการ2.1. เคมีและ reagentsมาตรฐานชนิดบีแคโรทีน (บริสุทธิ์ 95%, UV) ได้รับจาก SigmaeAldrich หรือสารทำละลายและสารเคมีที่ใช้ในการนี้ทั้งหมดเรียนได้เกรดวิเคราะห์ และถูกค้นหาจาก SRL, s d ดีสารเคมีและ Rankem อินเดีย2.2 เตรียมมาตรฐานโซลูชั่นสินค้าคงคลังมาตรฐานที่ความเข้มข้น 1 mg/mlเตรียม โดยยุบมาตรฐานในอะซิโตน มาตรฐานการทำงานโซลูชั่นของ 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0.50, 0.25, 0.125, 0.062 และ 0.03 mg/mlได้เตรียมไว้ในตัวทำละลายเดียวกันทุกวัน และใช้วัตถุดิบที่เก็บชั่วคราวแครอท มันฝรั่งหวาน และตัวอย่างเนื้อเปล่า โซลูชั่นทั้งหมดได้ป้องกันแสง ด้วยอลูมิเนียมฟอยล์ และยังคงอยู่ที่ 4 Cสำหรับสูงสุด เนื่องจากอาจเก็บระยะมากกว่าหนึ่งเดือนผลลัพธ์จากการสลายตัวหรือปฏิกิริยา irreproducibleกระบวนการทาง2.3 เก็บตัวอย่างดิบแครอท (หลากหลายสีแดง) และมันเทศ (สีส้มต่าง ๆ)ซื้อจากร้านค้าร้านขายของชำท้องถิ่น ตัวอย่างเนื้อไก่ถูกรวบรวมไว้จากบิดาทดลองของภาควิชาปศุสัตว์ผลิตภัณฑ์เทคโนโลยี วิทยาลัยสัตวศาสตร์GADVASU ลุเธียน่า อินเดีย ผักเก็บถูกทำความสะอาดล้าง และบรรจุแล้ว ในเอทิลีนความหนาแน่นต่ำสีใสกระเป๋า (LDPE) ตัวอย่างเนื้อไก่ถูกเก็บรวบรวมจากการdeboning ตารางที่มีตัดซากเย็น debonedตัด และบรรจุ ประมาณ 2 กิโลกรัมของตัวอย่างถูกตัด asepticallyระหว่าง deboning การดำเนินงาน และโอนย้ายไปผลิตและจำหน่ายยาแนวรอยต่อด้วยตนเองเนื้ออิมัลชันของ samplewas ควบคุมโดยผสมเนื้อไส้ เกลือ น้ำตาล ฟอสเฟต ไนไตรต์ ผสม เครื่องปรุงรส เครื่องเทศบริสุทธิ์สาลี ฯลฯ (Bhosale บิสวาส Sahoo, Chatli, Sharma และSikka ในข่าว) Emulsions สำหรับบำบัดตัวอย่างถูกจัดทำโดยเพิ่ม (10 g/100 g) แครอทและมันเทศ (10 g/100 g) ตามด้วยส่วนผสมอื่น ๆ กล่าวถึงตัวอย่างควบคุม เนื้อemulsions เป็นเหนือสูตรเต็มไปค่าในสี่เหลี่ยมแม่พิมพ์อลูมิเนียมรูปทรง และในตัวด้วยที่ 15 ปอนด์ความดัน อุณหภูมิ 121 C สำหรับ 20 นาที ตัวอย่างสวยดีระบายความร้อนด้วยอุณหภูมิห้อง ตัดเป็นนักเก็ต บรรจุสีใสความหนาแน่นต่ำถุงพลาสติก (150e200 เกจ), ปิดผนึก ติดป้ายแล้ว เยือก ทุกอย่างถูกเก็บไว้ที่ 20 Cก่อนวิเคราะห์ แยกต่างหาก2.4 การเตรียมและการสกัดตัวอย่างตัวอย่างน้ำแข็งถูก thawed ค้างคืนในตู้เย็น(4 1 C) สำหรับผัก ส่วนใหญ่ภายนอกบางชั้น (ผิวหรือการตัดแต่งหนัง) และส่วนกลางสีขาว (สำหรับแครอท) ถูกเอาออกไป และคงเหลือบางส่วนถูกหั่น มีส่วนประกอบที่ได้รับดังนั้น แล้วพื้นดินแยกเป็นเครื่องเทศเครื่องบดจนกลายเป็น วางดี ที่ตัวอย่างกล้ามเนื้อ (10e15 g) มีวุ้นเป็นชิ้นเล็ก ๆ ถูกตัดไขมันภายนอกและรับทั้งการบำบัด และการผสมผสานอย่างเหมาะสมโดยใช้pestle และมอร์ต้าสำหรับ 2 นาทีสำหรับสกัด เป็นส่วนตัวแทนของตัวอย่างนี้ (1 กรัม)อย่างหนักในหลอดทดสอบกระจก อะซีโตนเย็นแล้ว 5 mlwas added to it, and the tube was held for 15 min with occasionalshaking at 4 1 C, vortexed at high speed for 10 min, and finallycentrifuged at 1370 g for 10 min. Supernatant was collected intoa separate test tube, and the compound was re-extracted with 5 mlof an acetone followed by centrifugation once again as above. Bothof the supernatants were pooled together and then passed throughthe Whatman filter paper No. 42. The absorbance of the extract wasdetermined at 449 nmwavelength in a UVeVis spectrophotometer.Other extracts of diethyl ether, acetonitrile and methanol alsoprepared in similar manner as mentioned for acetone extraction.Carrot and sweet potato fortified nuggets as well as control(without added carrot/sweet potato) sample were extracted withacetone alone after identification of best extractant from aboveextraction mehods.2.5. Fortification of blanks and preparation of calibration curvesBlank samples for raw carrot (RC), sweet potato (SP), rawchicken meat (RCM) and cooked chicken meat (CCM) wereprepared as described above. A working standard containing 32 mg/ml was prepared from the 1 mg/ml stock solutions kept at 4 C.From this working standard different dilutions were made to spikethe samples. Blank samples of 1.0 g were spiked with workingstandards to obtain final concentrations 16.0, 8.0, 4.0, 2.0, 1.0, 0.5,0.25, 0.125, 0.062, 0.031 and 0.015 mg/g of b- carotene and extractedตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ถูกพล็อตเส้นโค้งเทียบด้วยค่าความหนาแน่น (โอดี) แสงความเข้มข้นตามลำดับโดยกลับวิธี extrapolation เส้นโค้งเหล่านี้ถูกใช้เพื่อกำหนดปริมาณเนื้อหาบีแคโรทีนในตัวอย่างที่วิเคราะห์2.6 การกู้คืนวิเคราะห์และความแม่นยำRecoveries วิเคราะห์ได้ตาม spiking b-แคโรทีนเพื่อตัวอย่างที่ว่างเปล่าให้ความเข้มข้นของ 1 mg/g ตามหลัง extrapolationวิธีการ และวิเคราะห์แล้ว จำนวน b-แคโรทีนพบโดยการวิเคราะห์ วิธีการสำหรับแต่ละความเข้มข้นถูกประเมินโดยใช้สมการถดถอยเชิงเส้นหลังแต่งเส้นโค้งมาตรฐานพิจารณาค่าดีโอ ดีเทอร์มิแนนต์ห้าทำสำหรับแต่ละมีคำนวณความเข้มข้น และกู้คืนเปอร์เซ็นต์ Intraand ทั้งสองวันระหว่างทดสอบ precisions [ทำซ้ำในแบบมาตรฐานความเบี่ยงเบน (RSDr) และส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานสัมพัทธ์ reproducibility(RSDR)] ถูกกำหนด โดยการวิเคราะห์ความเข้มข้นถูกแทงสาม0.1, 1.0 และ 5.0 mg/g ห้าชุดละเปล่า อย่างไรก็ตาม กราฟรายprecisionwas วิเคราะห์กำหนดที่โอกาสน้อย 6 h กันในขณะที่กำหนดความแม่นยำระหว่างวันที่ 3 ต่อเนื่องวันนั้น2.7. สถิติมีประเมินความแม่นยำและการกู้คืนข้อมูล ด้วยการชมใช้ทำโปรแกรมซอฟต์แวร์ทางสถิติของสถิติที่มีประสิทธิภาพแนวคิดของ Snedecor และ Cochran (1994)

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

2. วัสดุและวิธีการ
2.1 สารเคมีและสารเคมีมาตรฐานประเภทขแคโรทีน I (ความบริสุทธิ์ 95%, UV) ที่ได้รับจากSigmaeAldrich ทั้งหมดของตัวทำละลายและสารเคมีที่ใช้ในการศึกษามีคุณภาพและได้รับการวิเคราะห์จัดหาจาก SRL, SD ปรับสารเคมีและRankem อินเดีย. 2.2 การจัดทำมาตรฐานการแก้ปัญหามาตรฐานหุ้น ณ วันที่ 1 มก. / มล. มีความเข้มข้นได้รับการจัดทำขึ้นโดยการละลายในอะซีโตนมาตรฐาน ทำงานมาตรฐานการแก้ปัญหาของ 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0.50, 0.25, 0.125, 0.062 และ 0.03 mg / ml ได้จัดทำในชีวิตประจำวันในตัวทำละลายที่เหมือนกันและถูกนำมาใช้เพื่อขัดขวางดิบแครอทมันฝรั่งหวานและเนื้อสัตว์ที่ว่างเปล่าตัวอย่าง การแก้ปัญหาทั้งหมดได้รับการป้องกันจากแสงที่มีอลูมิเนียมและการบำรุงรักษาที่ 4 องศาเซลเซียสเกินหนึ่งเดือนเพราะช่วงเวลาที่มากขึ้นของการจัดเก็บข้อมูลที่อาจก่อให้เกิดผลirreproducible เกิดจากการย่อยสลายหรือปฏิกิริยากระบวนการ. 2.3 การเก็บตัวอย่างแครอทดิบ (หลากหลายสีแดง) และมันฝรั่งหวาน (สีส้มหลากหลาย) ที่ซื้อมาจากร้านขายของชำในท้องถิ่น ตัวอย่างเนื้อไก่ที่ถูกเก็บรวบรวมจากโรงฆ่าสัตว์ทดลองของกรมปศุสัตว์เทคโนโลยีผลิตภัณฑ์วิทยาลัยสัตวแพทยศาสตร์GADVASU, ลูเธียนา, อินเดีย ผักที่เก็บรวบรวมได้รับการทำความสะอาดล้างและบรรจุแล้วในความหนาแน่นต่ำไม่มีสีเอทิลีน(LDPE) ถุง ตัวอย่างเนื้อไก่ที่ถูกเก็บรวบรวมจากตาราง deboning ที่แช่เย็นซากที่ถูกตัดแยกกระดูก, การตัดแต่งและบรรจุ ประมาณ 2 กิโลกรัมของตัวอย่างถูกตัดปลอดเชื้อในระหว่างการดำเนินdeboning และย้ายไปปิดผนึกด้วยตนเอง LDPE. อิมัลชันเนื้อ samplewas ควบคุมจัดทำขึ้นโดยการผสมเนื้อสับ, เกลือ, น้ำตาล, ฟอสเฟต, ไนไตรท์ผสมเครื่องเทศเครื่องปรุงรส, แป้งสาลีกลั่น ฯลฯ (Bhosale, Biswas, Sahoo, Chatli ชาร์ & Sikka, ในการกด) อีมัลชั่สำหรับกลุ่มตัวอย่างได้รับการรักษาที่ถูกจัดทำขึ้นโดยการเพิ่มแครอท (10 กรัม / 100 กรัม) และมันเทศ (10 กรัม / 100 กรัม) พร้อมด้วยส่วนผสมอื่นๆ ที่เป็นที่กล่าวถึงตัวอย่างการควบคุม เนื้ออิมัลชันเตรียมเป็นสูตรข้างต้นได้รับการเติมเต็มในรูปสี่เหลี่ยมผืนผ้าแม่พิมพ์อลูมิเนียมรูปร่างและปรุงสุกในหม้อนึ่งความดันที่£ 15 แรงดัน 121? C อุณหภูมิ 20 นาที กลุ่มตัวอย่างที่ปรุงสุกถูกระบายความร้อนที่อุณหภูมิห้องหั่นเป็นนักเก็ตบรรจุในสีความหนาแน่นต่ำถุงพลาสติกชนิด(150e200 เกจ) ปิดผนึกป้ายแล้วแช่แข็งลึก ทุกประเภทของตัวอย่างที่ถูกเก็บไว้ที่ 20 องศาเซลเซียสก่อนที่จะวิเคราะห์แยกต่างหาก. 2.4 การเตรียมตัวและการสกัดตัวอย่างถูกแช่แข็งละลายในชั่วข้ามคืนในตู้เย็น(4? 1? C) สำหรับผักนอกชั้นบางมากที่สุด (ผิวหนังหรือหนังกำพร้า) และสีขาวกลาง(เฉพาะแครอท) ส่วนที่ถูกถอดออกและที่เหลือส่วนที่ถูกหั่น ส่วนประกอบที่ได้รับเพื่อให้ได้รับแล้วพื้นดินแยกเข้าไปในเครื่องบดเครื่องเทศจนกลายเป็นดีวาง ตัวอย่างของกล้ามเนื้อ (10e15 ช) ถูกหั่นเป็นชิ้นเล็ก ๆ หลังจากที่ถูกตัดไขมันภายนอกและพังผืดแล้วผสมอย่างถูกต้องโดยใช้สากและปูนเป็นเวลา2 นาที. สำหรับการสกัดส่วนที่เป็นตัวแทนของตัวอย่างนี้ (1 กรัม) ได้รับการชั่งน้ำหนักอย่างถูกต้องในหลอดทดลองแก้ว จากนั้น 5 มิลลิลิตรอะซีโตนแช่เย็นถูกบันทึกอยู่ในนั้นและหลอดที่จัดขึ้นเป็นเวลา15 นาทีเป็นครั้งคราวสั่นที่4? 1 องศาเซลเซียส, การ vortex ที่ความเร็วสูงเป็นเวลา 10 นาทีและในที่สุดก็หมุนเหวี่ยงที่1370? กรัมเป็นเวลา 10 นาที ใสถูกเก็บเข้าหลอดทดลองที่แยกต่างหากและสารประกอบเป็นอีกครั้งที่สกัดด้วย 5 มล. ของอะซิโตนตามด้วยการหมุนเหวี่ยงอีกครั้งดังกล่าว ทั้งสองของ supernatants ถูกรวบรวมเข้าด้วยกันและผ่านไปแล้วผ่านกระดาษกรองเบอร์ฉบับที่42 การดูดกลืนแสงของสารสกัดที่ได้รับการกำหนดที่449 nmwavelength ใน spectrophotometer UVeVis. สารสกัดอื่น ๆ ของอีเทอร์, acetonitrile และเมทานอลนอกจากนี้ยังจัดทำในลักษณะที่คล้ายกันตามที่กล่าวไว้สำหรับการสกัดอะซีโตน. แครอทและมันฝรั่งหวานนักเก็ตเสริมเช่นเดียวกับการควบคุม(โดยไม่ต้องเพิ่มแครอท / มันเทศ) ตัวอย่างถูกสกัดด้วยอะซีโตนคนเดียวหลังจากที่บัตรประจำตัวของสารสกัดที่ดีที่สุดจากข้างต้นmehods สกัด. 2.5 ป้อมปราการของช่องว่างและการเตรียมการของเส้นโค้งการสอบเทียบตัวอย่างที่ว่างเปล่าสำหรับแครอทดิบ (RC) มันเทศ (SP), ดิบเนื้อไก่(RCM) และเนื้อไก่ปรุงสุก (CCM) ได้รับการจัดทำขึ้นตามที่อธิบายไว้ข้างต้น มาตรฐานการทำงานที่มี 32 มิลลิกรัม / มิลลิลิตรถูกจัดทำขึ้นจาก 1 มิลลิกรัม / มิลลิลิตรโซลูชั่นหุ้นเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียส. จากนี้การทำงานที่แตกต่างกันเจือจางมาตรฐานที่ถูกสร้างขึ้นที่จะขัดขวางกลุ่มตัวอย่าง ตัวอย่างที่ว่างเปล่า 1.0 กรัมถูกแทงกับการทำงานมาตรฐานเพื่อให้ได้ความเข้มข้นสุดท้าย16.0, 8.0, 4.0, 2.0, 1.0, 0.5, 0.25, 0.125, 0.062, 0.031 และ 0.015 มิลลิกรัม / กรัมของแคโรทีน B- และสกัดตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ เส้นโค้งการสอบเทียบที่ถูกวางแผนโดยการOptical Density (OD) ค่าความเข้มข้นที่เกี่ยวข้องโดยวิธีการคาดการณ์กลับ เส้นโค้งเหล่านี้ถูกนำมาใช้เพื่อวัดปริมาณเนื้อหาขแคโรทีนในตัวอย่างวิเคราะห์. 2.6 การกู้คืนการวิเคราะห์และความแม่นยำกลับคืนวิเคราะห์ถูกกำหนดโดยของศาแคโรทีนที่จะตัวอย่างว่างเปล่าเพื่อให้ได้ความเข้มข้น1 มิลลิกรัม / กรัมโดยการคาดการณ์กลับวิธีการและวิเคราะห์แล้ว ปริมาณของขแคโรทีนที่พบด้วยวิธีการทดสอบสำหรับแต่ละความเข้มข้นเป็นที่คาดกันโดยใช้สมการถดถอยเชิงเส้นหลังเส้นโค้งการสอบเทียบมาตรฐานพิจารณาค่าOD ห้าปัจจัยที่ถูกสร้างขึ้นมาสำหรับแต่ละความเข้มข้นและการกู้คืนร้อยละที่คำนวณได้ ทั้งสอง intraand ทดสอบระหว่างวันแม่นยำ [การทำซ้ำญาติมาตรฐานเบี่ยงเบน(RSDr) และการทำสำเนาส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานสัมพัทธ์(RSDR)] ได้รับการพิจารณาโดยการวิเคราะห์ความเข้มข้นสามแหลม0.1, 1.0 และ 5.0 มก. / g ห้าชุดแต่ละคนมีที่ว่างเปล่า อย่างไรก็ตามระหว่างวันทดสอบ precisionwas กำหนดสามครั้งอย่างน้อย 6 ชั่วโมงออกจากกันในขณะที่ความแม่นยำระหว่างวันก็ตัดสินใจที่สามต่อเนื่องวัน. 2.7 สถิติการฟื้นตัวและข้อมูลที่ได้รับการประเมินความแม่นยำด้วยการชมในห้องพักโปรแกรมซอฟต์แวร์สถิติการใช้งานการทำสถิติที่แข็งแกร่งแนวคิดSNEDECOR และ Cochran (1994)

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . เคมีและสารเคมี
มาตรฐานของเบต้า - แคโรทีน ประเภท ( ความบริสุทธิ์ 95% UV ) ซึ่งได้จาก sigmaealdrich
. ทั้งหมดของตัวทำละลายและสารเคมีที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้คือ การวิเคราะห์ในระดับ
และจัดหาจาก Srl , S D ดี
เคมีและ rankem อินเดีย
2.2 . การเตรียมมาตรฐาน
โซลูชั่นสินค้ามาตรฐานที่ 1 mg / ml มีค่า
เตรียมโดยละลายมาตรฐาน ) . มาตรฐาน
โซลูชั่นการทำงานของ 32 , 16 , 8 , 4 , 2 , 1 , 0.50 , 0.25 , 0.125 , ลักษณะ , และ 0.03 มก. / มล.
เตรียมไว้ทุกวัน ในตัวทำละลายเดียวกัน และถูกใช้เพื่อขัดขวางแครอทดิบ
, มันฝรั่งหวานและตัวอย่างเนื้อเปล่า ทั้งหมดโซลูชั่น
ป้องกันแสงด้วยอลูมิเนียมฟอยล์และเก็บรักษาที่ 4 C
ไม่เกินหนึ่งเดือน เพราะระยะเวลาที่มากขึ้นของกระเป๋าอาจ
ผลลัพธ์ irreproducible เนื่องจากกระบวนการย่อยสลายหรือปฏิกิริยา
.
2.3
การเก็บตัวอย่างดิบ แครอท ( พันธุ์สีแดง ) และมันฝรั่งหวาน ( พันธุ์ส้ม )
ซื้อจากร้านค้าร้านขายของชำท้องถิ่น จากการเก็บตัวอย่างเนื้อไก่

โรงฆ่าสัตว์ทดลองภาควิชาเทคโนโลยีผลิตภัณฑ์สัตว์ คณะสัตวแพทยศาสตร์ gadvasu
, Ludhiana อินเดียเก็บผักสะอาด , ล้างและบรรจุแล้วใน

สีพลาสติกความหนาแน่นต่ำ ( LDPE ) กระเป๋า ไก่เนื้อ โดยเก็บตัวอย่างจาก
deboning ตารางที่แช่เย็นซาก ถูกตัดและเลาะก้างออก
, , , จัด ประมาณ 2 กิโลกรัม จากตัวอย่างคือตัด aseptically
ในระหว่างการโอน deboning และ LDPE
ปิดผนึกด้วยตนเองอิมัลชันเนื้อของการควบคุม samplewas เตรียมโดยการผสมเนื้อ
สับ เกลือ น้ำตาล ฟอสเฟต ไนไตรท์ ผสม เครื่องปรุง เครื่องเทศ แป้ง
กลั่น ฯลฯ ( bhosale บิสวาส , sahoo chatli Sharma , , , &
สิกขาในกด ) อิมัลชั่นสำหรับตัวอย่างที่ถูกเตรียมโดย
เพิ่มแครอท ( 10 กรัม / 100 กรัม ) และมันฝรั่งหวาน ( 10 กรัม / 100 กรัม ) พร้อมกับส่วนผสมอื่น ๆเช่น
กล่าวถึงตัวอย่างควบคุม เนื้อ
อิมัลชันที่เตรียมไว้ข้างต้นสูตรเต็มขึ้นในรูปทรงสี่เหลี่ยม
อลูมิเนียมแม่พิมพ์และปรุงสุกในหม้อนึ่งความดันที่ความดัน 15lb
, 121 C อุณหภูมิ 20 นาที สุกจำนวน
เย็นที่อุณหภูมิห้อง หั่นเป็นนักเก็ต บรรจุในถุงพอลิเอทิลีนชนิดความหนาแน่นต่ำ ( 150e200 เครื่องวัดสี

) ประทับตราป้ายแล้ว ลึกแช่แข็ง ทุกประเภทของตัวอย่าง เก็บรักษาที่อุณหภูมิ 20 C
ก่อนการวิเคราะห์ แยก
2.4 . การเตรียมตัวอย่างและการสกัด
แช่แข็งจำนวนละลายข้ามคืนในตู้เย็น
( 4 1 C ) สำหรับผักชั้นบางมาก ( ผิวชั้นนอกหรือพร้า ) และ
กลางสีขาว ( เฉพาะแครอท ) ส่วนที่ถูกถอดออกและบางส่วนที่เหลือ
ถูกหั่นบาง ๆ ส่วนประกอบเพื่อให้ได้แล้ว
พื้นดินแยกเป็นเครื่องบดเครื่องเทศจนกลายเป็นวางดี
ตัวอย่างของกล้ามเนื้อ ( 10e15 กรัม ) หั่นเป็นชิ้นเล็ก ๆ อยู่หลังจากที่ถูก
ตัดไขมันภายนอก และพังผืด และผสมอย่างถูกต้องโดยใช้ครก 2 นาที

การสกัดแทนส่วนของตัวอย่างนี้ ( 1 g )
ถูกต้องชั่งน้ำหนักในแก้วหลอด แล้ว 5 ml แช่เย็นอะซิโตน
ถูกเพิ่มลงไป และหลอดที่จัดขึ้นเป็นเวลา 15 นาที เขย่าเป็นครั้งคราว
4 1 Cvortexed ที่ความเร็วสูงเป็นเวลา 10 นาที และสุดท้ายที่ระดับ 1370 g
ที่ 10 นาที นำมันเก็บลงในหลอดทดสอบ
แยกและสารสกัดได้อีกครั้งกับ 5 ml
ของอะซิโตนตามด้วยปั่นอีกครั้งเป็นข้างต้น ทั้ง
ของ supernatants ถูกรวมเข้าด้วยกันและจากนั้นผ่านกระดาษกรอง
whatman ฉบับที่ 42 นสารสกัดถูก
ตัดสินใจที่คุณ nmwavelength ใน uvevis Spectrophotometer .
สารสกัดอื่นๆของอีเทอร์ , Acetonitrile และเมทานอลยังเตรียมไว้ในลักษณะที่คล้ายกันดังกล่าว

สำหรับการสกัดอะซิโตน แครอท และมันเทศกล้านักเก็ต ตลอดจนการควบคุม
( โดยไม่ต้องเพิ่มแครอท / มันฝรั่งหวาน ) ตัวอย่างถูกสกัดด้วยอะซีโตนคนเดียวหลังจากการ
สกัดที่ดีที่สุดจาก ข้างบน

mehods สกัด .

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.