ChemicalsAll reagents and solvents

ChemicalsAll reagents and solvents were of analytical reagent grade.Folin-Ciocalteau Reagent (FCR), phenol and sulfuric acid (H2SO4)were purchased from Merck (Darmstadt, Germany). The rest of theregents were procured from Sisco Research Laboratory (SRL), Indiaand used without further purification.2.2. Plant materialsA. vera suckers (1–2 months old) were collected from Ramakr-ishna Mission Ashrama, Narendrapur, West Bengal, India and wereidentified by Prof. G.G. Maity, Taxonomist, University of Kalyani.The plantation was established in the Agricultural and Food Engi-neering Departmental farm of Indian Institute of Technology,Kharagpur, India (Ray et al., 2012). The suckers were sown inJuly–August (2007–2008), under a randomized block design withforty replications. The overall topography of Kharagpur (22.33◦N,87.32◦E) is flat to undulating terrain with lateritic sandy–loamysoil (Ray et al., 2013a). On an average, the velocity of wind rangingbetween 10 km/h and 25 km/h, about 1800 mm annual rainfall and70–90% relative humidity create a favorable geophysical conditionfor the growth of various medicinal plants. Seasonal variation isevident in Kharagpur throughout the year (Ray et al., 2013b).2.3. Gel harvesting from different growth periods of A. vera L.After 24 ± 1, 36 ± 1, 48 ± 1 months of growth, the A. vera leaveshaving a length of 35–45 cm were harvested during summer(April–May) and used for extraction of the gel. For clarity, thedifferent age group of aloe was hereafter referred to as 2, 3 and4-year-plants. To study the influence of the season apart from sum-mer, 3-year-old plants were used to extract the gel during the rainy(July–August) and winter (December and January) season.Healthy and fresh leaves having a length of 35–45 cm were har-vested between 8.30 a.m. and 9 a.m. and carried to the laboratoryon ice. Two leaves were obtained from the 1st whorl position of theplants and washed with distilled water to remove dirt. After remov-ing the spikes, the leaves were cut transversely into pieces and thickepidermis was carefully separated from the parenchyma using ascalpel-shaped knife. The resulting mucilaginous gel was homoge-nized into a composite mixture and allowed to freeze at –20◦C forsolidification, which was followed by freeze-drying for consecutive72 h. The gel obtained from 2, 3 and 4-year-aloe during summerwas assigned as S2–S4, respectively. R3 and W3 represent the gelprepared from 3-year-old plants during rainy and winter season,respectively. Pulverized FD-AG was used in all of the analyses tostudy different parameters.2.4. Measurement of gel yieldA quantitative estimation was carried out to measure the freshgel yield following the method of Genet and van Schooten (1992).The fresh gel yield is related to the weight of extractable gel andthe weight of the harvested leaves, and expressed in ‘Raw gel figure’(RGF) which was calculated as,RGF = [Extractable gel (g)/Harvested leaves (g)].After freeze-drying, dried gel yield from the fresh gel was alsomeasured by ‘FD-gel and total leaf weight’ ratio, and referred as‘Dry gel figure’ (DGF).DGF was calculated as,DGF = [Freeze dried gel (mg)/Harvested leaves (g)].2.5. Physical characterization of freeze-dried A. vera L. gel2.5.1. Evaluation of Functional properties (SWC, WRC and FAC)and viscosity measurementThe functional properties of AG were measured following theevaluation of SWC, WRC and FAC, and were expressed in terms of mlper g FD-gel (ml/g), g water per g FD-gel (g/g) and g oil per g FD-gel(g/g), respectively (Femenia et al., 2003). To measure the viscosity ofthe gel, the suspension of FD-AG (0.4% w/v) in 10 ml of phosphatebuffer (pH 6.3) was homogenized for 1 min followed by standingfor 1 h for hydration and solubilization. The aqueous suspension ofAG was centrifuged at 4500 RPM for 15 min. The viscosity of clearsolution was measured with Brookfield DV II+ Pro ProgrammableViscometer (USA) at room temperature and expressed in centipoise(cP).2.5.2. SEM of A. vera L. gel at pre and post re-hydration stagesThe microstructure of dried gel at pre and post re-hydrationstages were studied under focused beam of high-energy electronsin a raster scan pattern. FD-AG was rehydrated in phosphate buffer(pH 6.3) to provide the similar hydration condition with precedingwater holding measurements. The microphotographs were cap-tured with JEOL JSMS 5800 Scanning Electron Microscope operatingat 20 keV in high vacuum mode (HV). Secondary electron imageswere recorded at various magnifications to study the topographyof AG.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

น้ำยา ChemicalsAll และตัวทำละลายเป็นของน้ำยาวิเคราะห์ grade.Folin-Ciocalteau Reagent (FCR) ฟีนอลและกรดกำมะถัน (H2SO4) ที่ซื้อมาจากเมอร์ค (ดาร์มสตัด, เยอรมนี) ส่วนที่เหลือของ theregents ถูกจัดหาจาก Sisco ห้องปฏิบัติการวิจัย (SRL) Indiaand ใช้โดยไม่ต้อง purification.2.2 ต่อไป พืช materialsA หางจระเข้หน่อ (1-2 เดือน) ที่ถูกเก็บรวบรวมจาก Ramakr-ishna Mission Ashrama, Narendrapur รัฐเบงกอลตะวันตกอินเดียและ wereidentified โดยศ GG Maity, Taxonomist มหาวิทยาลัยไร่ Kalyani.The ก่อตั้งขึ้นในเกษตรและอาหาร Engi-neering แผนกฟาร์มของสถ​​าบันเทคโนโลยีแห่งอินเดีย, ปัว, อินเดีย (เรย์ et al., 2012) หน่อถูกหว่าน inJuly สิงหาคม (2007-2008) ภายใต้การออกแบบบล็อกสุ่ม withforty ซ้ำ ภูมิประเทศโดยรวมของปัว (22.33◦N, 87.32◦E) จะแบนภูมิประเทศเป็นลูกคลื่นที่มีลูกรังทราย loamysoil (เรย์ et al., 2013a) โดยเฉลี่ยความเร็วของลม rangingbetween 10 กิโลเมตร / ชั่วโมงและ 25 กม. / ชมประมาณ 1,800 มิลลิเมตรปริมาณน้ำฝนประจำปี and70-90% ความชื้นสัมพัทธ์สร้างธรณีฟิสิกส์ที่ดี conditionfor การเจริญเติบโตของพืชสมุนไพรต่างๆ isevident การเปลี่ยนแปลงตามฤดูกาลในปัวตลอดทั้งปี (เรย์ et al., 2013b) .2.3 เก็บเกี่ยวเจลจากระยะเวลาการเจริญเติบโตที่แตกต่างกันของเอหางจระเข้ L.After 24 ± 1, 36 ± 1, 48 ± 1 เดือนของการเจริญเติบโตที่หางจระเข้เอ leaveshaving ความยาวของ 35-45 เซนติเมตรเก็บเกี่ยวในช่วงฤดู​​ร้อน (เมษายนพฤษภาคม) และ ที่ใช้ในการสกัดของเจล เพื่อความชัดเจนกลุ่มอายุของว่านหางจระเข้ thedifferent ถูกเรียกว่าต่อจากนี้จะเป็น 2, 3 and4 ปีพืช เพื่อศึกษาอิทธิพลของฤดูกาลนอกเหนือจากผลรวม-Mer พืช 3 ปีถูกนำมาใช้ในการสกัดเจลในช่วงหน้าฝน (กรกฎาคมสิงหาคม) และฤดูหนาว (เดือนธันวาคมและมกราคม) season.Healthy และใบสดที่มีความยาวของ 35-45 ซม. ถูก Har-ตกเป็น 08:30-09:00 และดำเนินน้ำแข็ง laboratoryon สองใบที่ได้รับจากตำแหน่งวงที่ 1 ของ theplants และล้างด้วยน้ำกลั่นเพื่อเอา​​สิ่งสกปรก หลังจาก remov ไอเอ็นจีแหลมใบถูกตัดตามขวางเป็นชิ้นและ thickepidermis ถูกแยกออกอย่างระมัดระวังจากเนื้อเยื่อโดยใช้มีด ascalpel รูป ส่งผลให้เจลเหนียวถูก homoge-nized เป็นส่วนผสมคอมโพสิตและได้รับอนุญาตให้หยุดที่-20◦C forsolidification ซึ่งตามมาด้วยการแช่แข็งแห้งสำหรับ consecutive72 ชั่วโมง เจลที่ได้จาก 2, 3 และ 4 ปีว่านหางจระเข้ในช่วง summerwas รับมอบหมายให้เป็น S2-S4 ตามลำดับ R3 และ W3 ตัวแทน gelprepared จากพืช 3 ปีในช่วงฤดู​​ฝนและฤดูหนาวตามลำดับ แหลกลาญ FD-AG ถูกนำมาใช้ในทุกการวิเคราะห์ tostudy parameters.2.4 ที่แตกต่างกัน วัดเจล yieldA การประมาณค่าเชิงปริมาณได้ดำเนินการในการวัดผลผลิต freshgel ต่อไปนี้วิธีการจำพวกและรถตู้ Schooten (1992) อัตราผลตอบแทนเ​​จลสดได้โดยเริ่มต้นที่เกี่ยวข้องกับน้ำหนักของเจลที่สกัด andthe น้ำหนักของใบเก็บเกี่ยวและแสดงใน 'ดิบ รูปเจล (RGF) ซึ่งคำนวณเป็น RGF = [สกัดเจล (g) / ใบเก็บเกี่ยว (g)]. หลังจากแช่แข็งแห้งผลผลิตเจลแห้งจากเจลสด alsomeasured โดย 'FD เจลและน้ำหนักใบรวม 'อัตราส่วนและเรียก as'Dry รูปเจล (Dgf) .DGF ที่คำนวณได้เป็น Dgf = [ตรึงแห้งเจล (มก.) / เก็บเกี่ยวใบ (ช)]. 2.5 ลักษณะทางกายภาพของแห้งกหางจระเข้ลิตร gel2.5.1 การประเมินผลของคุณสมบัติการทำงาน (SWC, WRC และ FAC) และความหนืด measurementThe คุณสมบัติการทำงานของเอจีถูกวัดต่อไปนี้ theevaluation ของ SWC, WRC และ FAC และได้แสดงในรูปของ mlper กรัม FD เจล (มล. / g) กรัมน้ำต่อกรัม FD เจล (g / g) และ g น้ำมันดิบต่อกรัม FD เจล (g / g) ตามลำดับ (Femenia et al., 2003) การวัดความหนืด ofthe เจลระงับการ FD-เอจี (0.4% w / v) ใน 10 มล phosphatebuffer (pH 6.3) ทำให้เป็นเนื้อเดียวกันเป็นเวลา 1 นาทีตามด้วย standingfor 1 ชั่วโมงสำหรับความชุ่มชื้นและละลาย ofAG สารแขวนลอยในน้ำถูกหมุนเหวี่ยงที่ 4500 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 15 นาที ความหนืดของ clearsolution วัดกับ Brookfield DV II + Pro ProgrammableViscometer (USA) ที่อุณหภูมิห้องและแสดงใน centipoise (CP) .2.5.2 SEM ของเอเจลหางจระเข้ลิตรที่จุลภาคก่อนและ stagesThe โพสต์ความชุ่มชื้นอีกครั้งเจลแห้งที่ก่อนและหลังการ hydrationstages ใหม่ได้รับการศึกษาภายใต้คานเน้นพลังงานสูง electronsin รูปแบบแรสเตอร์สแกน FD-เอจีได้รับการคืนรูปในฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 6.3) เพื่อให้สภาพความชุ่มชื้นที่คล้ายกันด้วย precedingwater ถือวัด microphotographs ถูกหมวก tured กับ JEOL JSMS 5800 กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน operatingat 20 เคฟในโหมดสูญญากาศสูง (HV) imageswere อิเล็กตรอนรองบันทึกที่กำลังขยายต่างๆเพื่อศึกษา AG topographyof

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

chemicalsall สารเคมีและตัวทำละลายที่ใช้วิเคราะห์ grade.folin-ciocalteau Reagent ( FCR ) , ฟีนอลและกรดกำมะถัน ( กรดซัลฟิวริก ) ซื้อจากเมอร์ค ( ดาร์มสตัดท์ , เยอรมนี ) ส่วนที่เหลือของ theregents ได้จัดหาจากห้องปฏิบัติการวิจัย Sisco ( เป็นต้น ) , indiaand ใช้โดยไม่ต้องบำบัดต่อไป ๒ . materialsa พืชว่านหางจระเข้ หน่อ ( 1 – 2 เดือน ) ถูกเก็บจาก ramakr ishna narendrapur ashrama , ภารกิจ , เบงกอลตะวันตก , อินเดีย และ จี จี โดย ศ. ดร. wereidentified ไมตี้ taxonomist , มหาวิทยาลัย kalyani . สวนก่อตั้งขึ้นในสินค้าเกษตรและอาหาร neering Engi ฟาร์มภาควิชาของสถาบันเทคโนโลยีแห่งอินเดีย kharagpur อินเดีย ( เรย์ et al . , 2012 )หน่อถูกหว่าน injuly –สิงหาคม ( 2007 – 2008 ) ภายใต้ Randomized Block withforty ซ้ำ ลักษณะภูมิประเทศโดยรวมของ kharagpur ( 22.33 ◦ N , 87.32 ◦ E ) แบนกับภูมิประเทศแบบลูกคลื่นกับดินลูกรังทราย– loamysoil ( เรย์ et al . , ที่มีมากกว่า ) โดยเฉลี่ย , ความเร็วลม rangingbetween 10 km / h และ 25 กิโลเมตร / ชั่วโมงประจำปีประมาณ 1 , 800 มิลลิเมตร ปริมาณน้ำฝน และความชื้นสัมพัทธ์ 90 and70 สร้างมงคลธรณีฟิสิกส์สำหรับการเจริญเติบโตของพืชสมุนไพรต่างๆ การเปลี่ยนแปลงตามฤดูกาลใน kharagpur ๆตลอดทั้งปี ( เรย์ et al . , 2013b ) 2.3 เจลจากที่แตกต่างกันการเจริญเติบโตระยะเวลาการเก็บเกี่ยว อ. จรเข้ . หลังจาก 24 ± 1 , 36 ± 1 , 48 ± 1 เดือนของการเจริญเติบโต , Aว่านหางจระเข้ leaveshaving ความยาว 35 – 45 เซนติเมตร ปลูกในช่วงฤดูร้อน ( เมษายน - พฤษภาคม ) และใช้สำหรับการสกัดของเจล เพื่อความชัดเจน ทำให้อายุของว่านหางจระเข้มีต่อเรียกว่าพืช ปี 2 , 3 และ 4 . เพื่อศึกษาอิทธิพลของฤดูกาล นอกจากซัมเมอร์ , พืชอายุ 3 ขวบ ถูกใช้เพื่อสกัดเจลในช่วงฤดูฝน ( กรกฎาคม - สิงหาคม ) และฤดูหนาว ( ธันวาคม - มกราคม ) ฤดูมีสุขภาพดี และใบสดมีความยาว 35 – 45 เซนติเมตร และผลประโยชน์ระหว่าง 8.30 น. และ 9 น. และดำเนินการเพื่อ laboratoryon น้ำแข็ง สองใบที่ได้จากตำแหน่งของ theplants 1 วง และล้างด้วยน้ำกลั่น เพื่อขจัดสิ่งสกปรก หลังจากให้ไอเอ็นจีขวากใบที่ถูกตัดตามขวางเป็นชิ้น และ thickepidermis รอบคอบมีการแยกจาก ascalpel รูปทรงมีด ซึ่งเป็นเมือกที่เกิดเจลคือ homoge nized ลงผสมผสมและอนุญาตให้ตรึง– 20 ◦ C forsolidification ซึ่งตามมาด้วยการทำแห้งเยือกแข็งสำหรับ consecutive72 . เจลที่ได้จาก 2 , 3 และ 4-year-aloe ในระหว่าง summerwas มอบหมาย เช่น S4 S2 ) ,ตามลำดับ และ R3 w3 เป็นตัวแทนจาก 3 ปี gelprepared พืชในช่วงฤดูฝนและฤดูหนาว ตามลำดับ fd-ag บดใช้ในทั้งหมดของการวิเคราะห์เพื่อศึกษาค่าพารามิเตอร์ที่แตกต่างกัน 2.4 . การวัดปริมาณการเจล yielda ทำการวัด freshgel ผลผลิตตามวิธีของพันธุศาสตร์ และรถตู้ schooten ( 1992 )เจลสดผลผลิตเกี่ยวข้องกับน้ำหนักของปริมาณเจล และน้ำหนักของผลใบและแสดงออกในรูปเจลดิบ ' ( rgf ) ซึ่งคำนวณเป็นปริมาณเจล rgf = [ ( g ) / เก็บเกี่ยวใบ ( G ) ] หลังจากแช่แข็งแห้งแห้ง ผลผลิตจากเจลเจลสดมี alsomeasured โดย ' ' อัตราส่วนน้ำหนักและเจล FD ใบรวม และเจ้าตัว as'dry เจลรูป ' ( dgf ) dgf คำนวณเป็นdgf = [ ตรึงแห้ง เจล ( มก. ) / เก็บเกี่ยวใบ ( G ) ] . 2.5 ลักษณะทางกายภาพของว่านหางจระเข้แห้ง . . gel2.5.1 . การประเมินคุณสมบัติการทำงาน ( swc , WRC และ 2 ) และสมบัติความหนืด measurementthe การทำงานของ AG วัดต่อไปนี้การประเมินและ SWC , WRC FAC และแสดงออกในแง่ของเจล mlper G FD ( ml / g ) g / g เจลน้ำ FD ( g / g ) และ G ( G FD เจลน้ำมันต่อ กรัม / กรัม )ตามลำดับ ( femenia et al . , 2003 ) วัดความหนืดของเจลระงับ fd-ag ( 0.4 % w / v ) 10 ml ของโมลาร์ pH 6.3 ) ถูกบดนาน 1 นาที ตามด้วย standingfor 1 H สำหรับความชุ่มชื้นและขณะ การ ofag สารละลายไฟฟ้าที่ 4500 รอบต่อนาที ถูกระงับเป็นเวลา 15 นาทีความหนืดของ clearsolution วัดด้วย Brookfield DV II Pro programmableviscometer ( USA ) ที่อุณหภูมิห้อง และแสดงออกในเซนติพอยส์ ( CP ) งานวาง . SEM ของ ว่านหางจระเข้ แอลเจลก่อนและหลังเป็นเดร stagesthe โครงสร้างของเจลแห้งก่อนและหลังอีกครั้ง hydrationstages ศึกษาภายใต้ลำแสงพลังงานสูงเน้น electronsin ราสเตอร์สแกนลายfd-ag คือได้ทำการ รีไฮเดรทมในฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 6.3 ) ให้ใกล้เคียงกับสภาพความ precedingwater ถือการวัด การ microphotographs เป็นหมวก tured กับจอล jsms 5800 กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน operatingat 20 เคฟในโหมดสูญญากาศสูง ( HV ) imageswere อิเล็กตรอนทุติยภูมิที่บันทึก magnifications ต่างๆเพื่อศึกษา topographyof
เอจี .