3.2. Symbiotic seed germination of

3.2. Symbiotic seed germination of D. fimbriatumIn this experiment, we used the plastic box (Fig. 3a) as the seed germinationcontainer to provide more room to larger orchid protocormsand tomake themethodmore feasible for orchid growers and hobbyists.Initially, each treatment consisted of nine replicates. However, contaminationoccurred in some experimental units and the contaminated unitswere excluded from the data analyses. Number of replicates of eachtreatment used in the data analysis is shown in Table 2. Seeds ofD. fimbriatum sown on peatmoss in all treatmentswere observed to germinateat two weeks after sowing. At 17 weeks after sowing, germinationpercentages of seeds in the two treatments with mycorrhizalinoculation were higher than that of seeds in the un-inoculated controlbut only seeds co-cultured with T. deliquescens isolate Da-KP-0-1 hadsignificantly higher germination percentage (Table 2). According tothis study, both fungal isolates (i.e., Da-KP-0-1 and Pv-PC-1-1) werefully compatible with D. fimbriatum since they supported the orchidprotocorms to the most advanced seedling stage (i.e., seedlings withelongated leaves and roots). Protocorms on peat moss without the mycorrhizalfungus did not develop beyond Stage 3 (Table 2). Microscopicobservation revealed pelotons in the protocorms co-cultured witheither fungal isolate Da-KP-0-1 or Pv-PC-1-1 and the absence of pelotonsin protocorms in the un-inoculated treatment (data not shown). Thisexperiment demonstrated that peat moss could be used as germinationsubstrate for in vitro symbiotic seed germination of orchid, althoughthe rates of seed germination in all treatments were unusuallylow as compared to seed germination rates of Dendrobium orchids(Swangmaneecharern et al. 2012), probably due to the waterloggedcharacteristic of the peat moss observed in the germination boxes(data not shown). Therefore, in our next experiment we modified thegermination method to solve the mentioned problems and also comparedthe effectiveness of the method to OMA and 1/5MS.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3.2 การงอกของเมล็ดชีวภาพของ D. fimbriatum
ในการทดลองนี้เราใช้กล่องพลาสติก (รูป. 3a) ในขณะที่การงอกของเมล็ด
ภาชนะเพื่อให้ห้องพักมากขึ้นโปรโตคอร์กล้วยไม้ที่มีขนาดใหญ่
และ tomake themethodmore เป็นไปได้สำหรับเกษตรกรผู้ปลูกกล้วยไม้และมือสมัครเล่น
ในขั้นต้นการรักษาแต่ละประกอบด้วยเก้าซ้ำ อย่างไรก็ตามการปนเปื้อน
ที่เกิดขึ้นในหน่วยทดลองบางส่วนและหน่วยงานที่ปนเปื้อน
ได้รับการยกเว้นจากการวิเคราะห์ข้อมูล จำนวนซ้ำของแต่ละ
รักษาที่ใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูลที่แสดงในตารางที่ 2 เมล็ดพันธุ์แห่งความ
ดี fimbriatum หว่านใน peatmoss ใน treatmentswere ทุกข้อสังเกตที่จะงอก
ที่สองสัปดาห์หลังจากหยอดเมล็ด เมื่อ 17 สัปดาห์หลังจากหว่านเมล็ดงอก
อัตราร้อยละของเมล็ดในการรักษาทั้งสองกับ mycorrhizal
ฉีดวัคซีนสูงกว่าของเมล็ดพืชในการควบคุมเชื้อยกเลิก
แต่เมล็ดเพาะเลี้ยงร่วมกับ T. deliquescens แยก Da-KP-0-1 มี
เปอร์เซ็นต์การงอกสูงขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ (ตารางที่ 2) ตาม
การศึกษาครั้งนี้ทั้งสองสายพันธุ์เชื้อรา (เช่น Da-KP-0-1 และ PV-PC-1-1) เป็น
อย่างเข้ากันได้ด้วยดี fimbriatum ตั้งแต่ที่พวกเขาได้รับการสนับสนุนกล้วยไม้
โปรโตคอร์มากที่สุดในขั้นตอนของต้นกล้าขั้นสูง (เช่นต้นกล้า ที่มี
ใบยาวและราก) โปรโตคอร์ในพีทมอสโดยไม่ต้อง mycorrhizal
เชื้อราไม่ได้พัฒนาเกินขั้นที่ 3 (ตารางที่ 2) กล้องจุลทรรศน์
สังเกตเปิดเผย pelotons ในโปรโตคอร์ร่วมกับการเพาะเลี้ยง
ทั้งแยกเชื้อรา Da-KP-0-1 หรือ PV-PC-1-1 และการขาดการ pelotons
ในโปรโตคอร์ในการรักษายกเลิกเชื้อ (ไม่ได้แสดงข้อมูล) นี้
การทดลองแสดงให้เห็นว่าพีทมอสสามารถใช้เป็นงอก
สารตั้งต้นสำหรับในหลอดทดลองการงอกของเมล็ดชีวภาพกล้วยไม้แม้ว่า
อัตราการงอกของเมล็ดในการรักษาทุกคนผิดปกติ
ในระดับต่ำเมื่อเทียบกับอัตราการงอกของเมล็ดของกล้วยไม้สกุลหวาย
(Swangmaneecharern et al. 2012) อาจเป็นเพราะเปียกชุ่ม
ลักษณะของพรุสังเกตตะไคร่น้ำในกล่องงอก (ไม่ได้แสดงข้อมูล) ดังนั้นในการทดลองต่อไปของเราเรามีการปรับเปลี่ยน
วิธีการงอกในการแก้ปัญหาดังกล่าวและเมื่อเทียบกับ
ประสิทธิภาพของวิธีการที่จะ OMA และ 1 / 5MS

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

Introduce my friend

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

แถบ 3.2 การงอกของเมล็ดพันธุ์
ในการทดลองนี้เราใช้กล่องพลาสติกเป็นเมล็ดงอก
ภาชนะบรรจุที่มีพื้นที่มากขึ้นสำหรับหลอดไฟกล้วยไม้ขนาดใหญ่
ทำให้วิธีนี้เป็นไปได้มากขึ้นสำหรับผู้ปลูกกล้วยไม้และคนรัก
ตอนแรกแต่ละการรักษาประกอบด้วยเก้าซ้ำ แต่มลพิษ
เกิดขึ้นในหน่วยทดลองและหน่วยที่ปนเปื้อน
ยกเว้นการวิเคราะห์ข้อมูล จำนวนสำเนาต่อฉบับ
การวิเคราะห์ข้อมูลใช้วิธีการประมวลผลแบบตาราง เมล็ดพันธุ์
การงอกของเชื้อราที่ปลูกในพีทมอสพบในการรักษาทั้งหมด
สองสัปดาห์หลังจากการหว่านเมล็ด การงอกของ 17-week หลังจากการหว่านเมล็ด
อัตราเมล็ดพันธุ์ที่ได้รับการรักษาด้วยเชื้อราสองชนิด
เมล็ดพันธุ์ที่ได้รับการฉีดวัคซีนสูงกว่าเมล็ดที่ไม่ได้รับการฉีดวัคซีน
แต่เมล็ดพันธุ์เท่านั้นที่เพาะเลี้ยงร่วมกันกับความชื้นที่แยกได้
อัตราการงอกเพิ่มขึ้นอย่างเห็นได้ชัด พื้นฐาน
ในการศึกษานี้ทั้งสองสายพันธุ์ที่แยกได้จากเชื้อราได้แก่ da-kp-0-1 PV-PC-1 และ
เข้ากันได้อย่างสมบูรณ์กับผมเห็ดเพราะพวกเขาสนับสนุนกล้วยไม้
ต้นกล้าขั้นสูงสุดจากหลอดไฟปฐมภูมิ
ใบยาวและราก หลอดไฟของพีทมอสรากปลอดเชื้อ
เชื้อราที่ไม่ได้พัฒนาหลังจากระยะที่สาม เกี่ยวกับเศรษฐศาสตร์จุลภาค
การสังเกตของ pelotons ในวัฒนธรรมทั่วไป
เชื้อราที่แยกได้จาก Da-kp-0-1 หรือ pv-pc-1-1 และไม่มี pelotons
ข้อมูลที่ไม่ได้แสดงในการฉีดวัคซีนดิบหลอดไฟ นี่
การทดลองแสดงให้เห็นว่าพีทมอสสามารถใช้เป็นเมล็ดพันธุ์
การงอกของเมล็ดพันธุ์กล้วยไม้
อัตราการงอกของเมล็ดพันธุ์ที่ไม่ได้รับการรักษาอย่างถูกต้อง
อัตราการงอกของเมล็ดกล้วยไม้สกุลหวายต่ำ
สว่างมณีเจริญฯลฯ อาจเป็นเพราะน้ำท่วม
ลักษณะของมอสพีทที่พบในถังงอก ดังนั้นในการทดลองครั้งต่อไปของเราเราจึงปรับเปลี่ยน
การเปรียบเทียบวิธีการแก้ไขปัญหาดังกล่าวข้างต้น
วิธีการรักษาผลของ OMA และตับ