4. DiscussionThe work presented her

4. Discussion
The work presented here shows that D. salina CCAP 19/30 cells alter their cell diameter in response to a light/dark cycle of light, and that the periodicity of change in cell diameter corresponds to change in cellular glycerol content. Results in Fig. 2 illustrate that the cells increase in volume in the light periods and decrease in volume in the dark periods. To our best knowledge, this is the first report of cell volume oscillation in D. salina when growing under diurnal conditions. Since D. salina cells lack a rigid polysaccharide cell wall, their cytoplasmic membranes allow the cells to adjust their volume and shape rapidly in response to the environmental changes ( Maeda and Thompson, 1986). Although early studies have reported rhythmic changes in cell shapes of Euglena gracilis ( Lonergan, 1983), the mechanism in E. gracilis is different to that in D. salina reported in this study. E. gracilis cell shape is under direct control of the biological clock and thus even under continuous light, the daily rhythm of cell shape remains. However, when D. salina was grown under continuous light, the oscillation in cell shape ceased ( Fig. 1), indicating that it is under the control of diurnal change rather than circadian rhythm, or due to cell division. The oscillation in cell volume and cellular glycerol content of CCAP 19/30 is not found in several other Dunaliella species maintained in the laboratory, including Dunaliella parva, Dunaliella quartolecta, and Dunaliella polymorpha nor in green microalga Chlamydomonas reinhardtii (data not shown); and since no previous report has been found, it may be a species specific property.

The synthesis or degradation of glycerol in response to osmotic pressure change is commonly assumed to be triggered by cell volume change (Ben-Amotz and Avron, 1981 and Zelazny et al., 1995). However in this study, we show by using light/dark cycles that the change in cell volume can also be the result of change in cellular glycerol content. Glycerol is produced by Dunaliella via photosynthesis and the adjustment in glycerol concentration is achieved by regulating the carbon flux between either the synthesis of starch or glycerol ( Goyal, 2007b and Goyal, 2007a). In the dark, there is no carbon fixed to glycerol from photosynthesis, and starch is respired to produce energy and metabolites: the pool size of glycerol is thus reduced. This causes the cell volume to decrease in the dark to maintain the osmotic pressure. With further time in the dark an apparent increase in cellular glycerol and starch contents was observed: this seemingly counter-intuitive observation may nevertheless be due to additional dark-related events such as the effects of lipid catabolism in photoautotrophic algae that have been deprived of an external carbon and energy source, releasing fatty acids and glycerol.

It is well documented that exposure of chloroplasts to high light leads to PSII photodamage when the rate of photodamage exceeds that of the repair cycle, leading to photoinhibition and reduced photosynthetic efficiency (Melis, 1999 and Yokthongwattana and Melis, 2008). For the higher plant Arabidopsis thaliana, the rate of photodamage dominates in light intensities greater than 500 μmol photons m−2 s−1 and leads to photoinhibition (Havaux et al., 2000). In our study, light intensity at all values above 500 μmol photons m−2 s−1 resulted in a decrease in the ratio of Fv/Fm by about 34% compared to that at 200 μmol photons m−2 s−1 indicating PSII damage. The decreased photosynthetic rate observed for cultures acclimated to light intensities of 200 and 500 μmol photons m−2 s−1 is therefore likely to be due to photoinhibition. At higher light intensities, however, photosynthetic rate increased to a maximum level (Fig. 6A and 6B). This finding implies that CCAP 19/30 might have evolved an efficient repair cycle that allows it to turnover damaged PSII at a much faster rate at high light intensity to allow it to maintain maximum photosynthetic efficiency. Indeed, it has been shown that Dunaliella tertiolecta was able to recover the PS II efficiency by 80% from photodamage within just 1 min of dark adaption ( Casper-Lindley and Björkman, 1998).

The enhanced rate of photosynthesis at high light intensities in this study contributed to the tolerance of CCAP 19/30 to photodamage. The rate of photodamage is dependent upon QA redox state, occurring at low probability when QA is oxidized and excitation energy is utilized in the electron transport chain at a much faster rate (Melis, 1999). Increase in the photosynthetic rate therefore leads to rapid oxidation of the PQ-pool, which in turn drains electrons at a much faster rate from the QA site of PSII, reducing the possibility of PSII-photodamage. The ability of D. salina to enhance photosynthetic activity under stressed conditions has been previously reported by Liska et al. ( Liska et al., 2004). In their study, the enhanced photosynthesis was

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

4. สนทนางานนำเสนอที่นี่แสดงว่า D. ซาลินา CCAP 19/30 เซลล์เปลี่ยนเส้นผ่าศูนย์กลางของเซลล์ในวงจรแสงสว่าง/มืดของแสง และว่า ระยะของการเปลี่ยนแปลงเซลล์เส้นผ่านศูนย์กลางที่สอดคล้องกับการเปลี่ยนแปลงเนื้อหาของกลีเซอรอลเซลลูลาร์ ผลลัพธ์ในรูปที่ 2 แสดงให้เห็นว่า เซลล์ปริมาณมากขึ้นในระยะแสง และปริมาณลดลงในช่วงมืด ความรู้ที่ดีที่สุดของเรา อยู่รายงานแรกของเซลล์เสียงสั่นในซาลินา D. เมื่อเติบโตขึ้นภายใต้เงื่อนไขเวลา ตั้งแต่ D. ซาลินาเซลล์ไม่มีผนังเซลล์แข็ง polysaccharide เยื่อหุ้มตัวนำให้เซลล์เพื่อปรับระดับเสียงและรูปร่างอย่างรวดเร็วในการตอบสนองการเปลี่ยนแปลงสิ่งแวดล้อม (มาเอดะและทอมป์สัน 1986) แม้ว่าช่วงต้นวิจัยได้รายงานการเปลี่ยนแปลงรูปร่างเซลล์ของยูกลีนาตา (โลเนอร์แกน 1983) เป็นจังหวะ กลไกในตาตะวันออกคือในซาลินา D. ที่รายงานในการศึกษานี้ E. ตารูปร่างของเซลล์ที่อยู่ภายใต้การควบคุมโดยตรงของนาฬิกาชีวภาพ และยังคงอยู่ทุกจังหวะของรูปร่างของเซลล์ดังนั้นแม้ภายใต้แสงต่อเนื่อง อย่างไรก็ตาม เมื่อซาลินา D. ถูกปลูกภายใต้แสงต่อเนื่อง การสั่นในรูปร่างของเซลล์หยุด (รูป 1), แสดงว่า มันอยู่ภายใต้การควบคุมของฟ้าเปลี่ยน แทนจังหวะ circadian หรือเนื่อง จากการแบ่งเซลล์ สั่นในปริมาณเซลล์และกลีเซอรอลมือถือเนื้อหาของ CCAP 19/30 ไม่พบในสายพันธุ์ Dunaliella หลายอื่น ๆ เก็บรักษาไว้ ในห้องปฏิบัติ การ รวม ทั้งพาร์ Dunaliella, Dunaliella quartolecta, Dunaliella polymorpha หรือ ในเขียว microalga reinhardtii Chlamydomonas (ข้อมูลไม่แสดง); และเนื่องจากไม่มีรายงานก่อนหน้านี้มีการค้นพบ มันอาจจำแนกชนิดคุณสมบัติการสังเคราะห์หรือสลายของกลีเซอรอลตอบสนองต่อการเปลี่ยนแปลงแรงดันออสโมติกจะถือว่าโดยทั่วไปจะถูกทริกเกอร์ โดยการเปลี่ยนปริมาณเซลล์ (Ben Amotz และ Avron, 1981 และเซลาซนี et al. 1995) อย่างไรก็ตาม ในการศึกษานี้ ที่เราแสดง โดยใช้แสง/เข้มรอบที่ว่า การเปลี่ยนแปลงในปริมาณเซลล์ยังสามารถผลจากการเปลี่ยนแปลงเนื้อหาเซลล์กลีเซอรอล กลีเซอรอลผลิต โดย Dunaliella ผ่านการสังเคราะห์แสง และการปรับปรุงในความเข้มข้นของกลีเซอรอลจะทำได้ โดยการควบคุมฟลักซ์คาร์บอนระหว่างการสังเคราะห์แป้งหรือกลีเซอรอล (โกยัล 2007b และโก ยัล 2007a) ในมืด มีคาร์บอนไม่ถาวรไปกลีเซอรอลจากการสังเคราะห์แสง และแป้งเป็น respired ในการผลิตพลังงานและสาร: จึงลดขนาดสระของกลีเซอรอล ซึ่งทำให้ปริมาณเซลล์ที่ลดลงในมืดจะรักษาแรงดัน เพิ่มเติมเวลาในมืด พบว่า เพิ่มขึ้นชัดเจนในเนื้อหากลีเซอรอลและแป้งโทรศัพท์: สังเกตดูเหมือนเคาน์เตอร์นี้ก็อาจเกิดจากเหตุการณ์ที่เกี่ยวข้องเข้มเพิ่มเติมเช่นผลกระทบของแคแทบอลิซึมของไขมันในสาหร่าย photoautotrophic ที่มีการปราศแหล่งภายนอกคาร์บอนและพลังงาน การปล่อยกรดไขมันและกลีเซอรอลมันเป็นเอกสารที่ดีที่แสงของคลอโรพลาสูงสู่เคมี PSII เมื่ออัตราเคมีมากกว่าของแซม นำไปสู่ photoinhibition และลดประสิทธิภาพการสังเคราะห์แสง (Melis, 1999 และ Yokthongwattana และ Melis, 2008) สำหรับพืชสูง Arabidopsis thaliana เคมีอัตราการกุมอำนาจในการต่อความเข้มแสงมากกว่า 500 ไมโครโมลโฟตอน m−2 s−1 และนำไปสู่ photoinhibition (Havaux et al. 2000) ในการศึกษาของเรา ความเข้มแสงที่ค่าทั้งหมดข้างต้น 500 ไมโครโมลโฟตอน m−2 s−1 ผลในการลดลงของอัตราส่วนของ Fv/Fm ประมาณ 34% เมื่อเทียบกับที่ที่ 200 ไมโครโมลโฟตอน m−2 s−1 ระบุว่า ความเสียหาย PSII อัตราการสังเคราะห์แสงลดลงสังเกตวัฒนธรรมเหมือนเขามั้ยวะเพื่อต่อความเข้มแสงของ 500 และ 200 ไมโครโมลโฟตอนจึงน่าจะเป็น เพราะ photoinhibition m−2 s−1 ที่ความเข้มแสงสูงกว่า อย่างไรก็ตาม อัตราการสังเคราะห์แสงเพิ่มขึ้นระดับสูงสุด (รูปที่ 6A และ 6B) ค้นหานี้หมายถึงว่า CCAP 19/30 อาจมีพัฒนาวงจรการซ่อมที่มีประสิทธิภาพที่ช่วยให้การหมุนเวียนหาย PSII ในอัตราที่เร็วกว่าที่ความเข้มแสงสูงเพื่อให้การรักษามีประสิทธิภาพการสังเคราะห์แสงสูงสุด จริง มันแสดงว่า Dunaliella tertiolecta ก็สามารถที่จะกู้คืนประสิทธิภาพ PS II โดย 80% จากเคมีเข้ม adaption (Casper Lindley และ Björkman, 1998) เพียง 1 นาทีอัตราการสังเคราะห์แสงที่ความเข้มแสงสูงในการศึกษานี้เพิ่มส่วนการความอดทนของ CCAP 19/30 เพื่อเผย อัตราเคมีจะขึ้นอยู่คุณภาพรีดอกซ์รัฐ เกิดที่น่าจะต่ำเมื่อถูกออกซิไดซ์ QA และพลังงานไฟฟ้าจะใช้ในห่วงโซ่ขนส่งอิเล็กตรอนที่มากอัตราเร็ว (Melis, 1999) เพิ่มอัตราการสังเคราะห์แสงดังนั้นจึงนำไปสู่ออกซิเดชันอย่างรวดเร็วของ PQ-สระว่ายน้ำ ท่อระบายน้ำในอิเล็กตรอนในอัตราที่เร็วกว่าจากไซต์ QA ของ PSII ลดโอกาส PSII เคมีซึ่ง ความสามารถของซาลินา D. การเพิ่มกิจกรรมสังเคราะห์แสงภายใต้สภาวะเครียดก่อนหน้านี้ถูกรายงานโดย Liska et al. (Liska et al. 2004) ในการเรียน การสังเคราะห์ด้วยแสงเพิ่มขึ้นเป็น

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

4. การอภิปราย
การทำงานนำเสนอที่นี่แสดงให้เห็นว่าดีซาลินา CCAP 19/30 เซลล์เปลี่ยนเส้นผ่าศูนย์กลางมือถือของตนในการตอบสนองต่อแสง / รอบเข้มของแสงและระยะเวลาของการเปลี่ยนแปลงในเส้นผ่าศูนย์กลางเซลล์สอดคล้องกับการเปลี่ยนแปลงในเนื้อหากลีเซอรีนมือถือ ผลการค้นหาในรูป 2 แสดงให้เห็นว่าเซลล์เพิ่มขึ้นในปริมาณในช่วงเวลาที่แสงและลดลงของปริมาณในช่วงเวลาที่มืด เพื่อความรู้ที่ดีที่สุดของเรานี้เป็นรายงานแรกของการสั่นปริมาณเซลล์ในซาลินาดีเมื่อเจริญเติบโตภายใต้เงื่อนไขรายวัน ตั้งแต่ D. เซลล์ Salina ขาดผนังเซลล์ polysaccharide แข็งเยื่อหุ้มนิวเคลียสของพวกเขาช่วยให้เซลล์เพื่อปรับระดับเสียงของพวกเขาและรูปร่างอย่างรวดเร็วในการตอบสนองต่อการเปลี่ยนแปลงสิ่งแวดล้อม (มาเอดะและ ธ อมป์สัน, 1986) ถึงแม้ว่าการศึกษาในช่วงต้นได้มีการรายงานการเปลี่ยนแปลงจังหวะในรูปทรงของเซลล์ยูกลีนา gracilis (เนอร์เกน, 1983) กลไกในอี gracilis ที่แตกต่างกันไปว่าในดีซาลินารายงานในการศึกษาครั้งนี้ อี gracilis รูปร่างของเซลล์ที่อยู่ภายใต้การควบคุมโดยตรงของนาฬิกาชีวภาพและทำให้แม้ภายใต้แสงอย่างต่อเนื่องจังหวะชีวิตประจำวันของซากรูปร่างของเซลล์ แต่เมื่อดีซาลิโตอย่างต่อเนื่องภายใต้แสงผันผวนในรูปร่างของเซลล์หยุด (รูปที่ 1). แสดงให้เห็นว่ามันเป็นภายใต้การควบคุมของการเปลี่ยนแปลงรายวันมากกว่าจังหวะ circadian หรือเนื่องจากการแบ่งตัวของเซลล์ ความผันผวนในปริมาณเซลล์และเนื้อหากลีเซอรอลของเซลล์ CCAP 19/30 จะไม่พบในที่อื่น ๆ อีกหลายชนิด Dunaliella เก็บรักษาไว้ในห้องปฏิบัติการรวมทั้ง Dunaliella พาร์วา Dunaliella quartolecta และ Dunaliella polymorpha หรือในสาหร่ายสีเขียว Chlamydomonas reinhardtii (ไม่ได้แสดงข้อมูล); และเนื่องจากไม่มีรายงานก่อนหน้านี้ได้รับการค้นพบก็อาจจะเป็นสายพันธุ์ที่คุณสมบัติเฉพาะ.

การสังเคราะห์หรือการเสื่อมสภาพของกลีเซอรอลในการตอบสนองต่อการเปลี่ยนแปลงแรงดันจะถือว่าปกติจะถูกเรียกโดยการเปลี่ยนแปลงปริมาณเซลล์ (เบน Amotz และ Avron 1981 และลาสนี่เอต al., 1995) อย่างไรก็ตามในการศึกษานี้เราจะแสดงโดยใช้แสง / รอบมืดที่เปลี่ยนแปลงในปริมาณเซลล์ยังสามารถเป็นผลจากการเปลี่ยนแปลงในเนื้อหาของกลีเซอรอลโทรศัพท์มือถือ กลีเซอรีนที่ผลิตโดย Dunaliella ผ่านการสังเคราะห์แสงและการปรับความเข้มข้นของกลีเซอรอลจะประสบความสำเร็จโดยการควบคุมการไหลของของเหลวคาร์บอนระหว่างทั้งการสังเคราะห์ของแป้งหรือกลีเซอรอล (Goyal, 2007B และ Goyal, 2007A) ในที่มืดมีคาร์บอนไม่มีการแก้ไขเพื่อกลีเซอรอลจากการสังเคราะห์แสงและแป้งเป็น respired ในการผลิตพลังงานและสาร: ขนาดสระว่ายน้ำของกลีเซอรอลจะลดลงดังนั้น นี้ทำให้ปริมาณเซลล์จะลดลงในที่มืดเพื่อรักษาแรงดัน ด้วยเวลาต่อไปในความมืดเพิ่มขึ้นอย่างเห็นได้ชัดในโทรศัพท์มือถือของกลีเซอรอลและแป้งเนื้อหาเป็นข้อสังเกตนี้สังเกตดูเหมือนเคาน์เตอร์ยังคงอาจจะเป็นเพราะเหตุการณ์มืดที่เกี่ยวข้องเพิ่มเติมเช่นผลกระทบของ catabolism ไขมันในสาหร่าย photoautotrophic ที่ได้รับการลิดรอนของ คาร์บอนภายนอกและแหล่งพลังงานที่ปล่อยกรดไขมันและกลีเซอรอล.

มันเป็นเอกสารที่ดีว่าการสัมผัสของคลอโรพลากับแสงสูงนำไปสู่การ photodamage PSII เมื่ออัตรา photodamage เกินกว่าที่ของวงจรการซ่อมแซมที่นำไปสู่ photoinhibition และการลดประสิทธิภาพการสังเคราะห์แสง (Melis 1999 และ Yokthongwattana และ Melis 2008) สำหรับโรงงาน Arabidopsis thaliana สูงกว่าอัตราการ photodamage ครอบงำในความเข้มแสงสูงกว่า 500 ไมโครโมลโฟตอน M-2 S-1 และนำไปสู่ photoinhibition (Havaux et al., 2000) ในการศึกษาของเราความเข้มของแสงที่ค่าทั้งหมดข้างต้น 500 ไมโครโมลโฟตอน M-2 S-1 มีผลในการลดลงในอัตราส่วน Fv / FM โดยประมาณ 34% เมื่อเทียบกับที่ที่ 200 ไมโครโมลโฟตอน M-2 S-1 แสดงให้เห็นความเสียหาย PSII . ลดลงอัตราการสังเคราะห์แสงสังเกตวัฒนธรรมการปรับตัวความเข้มแสง 200 และ 500 ไมโครโมลโฟตอน M-2 S-1 จึงมีแนวโน้มที่จะเกิดจากการ photoinhibition ที่ความเข้มแสงที่สูงขึ้นอย่างไรก็ตามอัตราการสังเคราะห์แสงเพิ่มขึ้นถึงระดับสูงสุด (รูป. 6A และ 6B) การค้นพบนี้แสดงให้เห็นว่า CCAP 19/30 อาจมีการพัฒนาวงจรซ่อมที่มีประสิทธิภาพที่ช่วยให้การหมุนเวียน PSII เสียหายในอัตราที่เร็วมากที่ระดับความเข้มแสงสูงเพื่อให้ไปรักษาประสิทธิภาพการสังเคราะห์แสงสูงสุด อันที่จริงจะได้รับการแสดงให้เห็นว่า Dunaliella tertiolecta ก็สามารถที่จะกู้คืนประสิทธิภาพ PS II 80% จาก photodamage ภายในเวลาเพียง 1 นาทีของการปรับตัวที่มืด (แคสเปอร์-ลินด์และBjörkman, 1998).

อัตราการเพิ่มขึ้นของการสังเคราะห์แสงที่ความเข้มแสงสูงในครั้งนี้ การศึกษามีส่วนทำให้ความอดทนของ CCAP 19/30 เพื่อ photodamage อัตรา photodamage ขึ้นอยู่กับรัฐควบคุมปฏิกิริยาที่เกิดขึ้นที่น่าจะต่ำเมื่อ QA ออกซิไดซ์และพลังงานกระตุ้นถูกนำมาใช้ในห่วงโซ่การขนส่งอิเล็กตรอนในอัตราที่เร็วมาก (Melis, 1999) การเพิ่มขึ้นของอัตราการสังเคราะห์แสงจึงนำไปสู่การเกิดออกซิเดชันอย่างรวดเร็วของ PQ-สระว่ายน้ำซึ่งในทางกลับอิเล็กตรอนท่อระบายน้ำในอัตราที่เร็วมากจากเว็บไซต์ของ QA PSII ลดความเป็นไปได้ของ PSII-photodamage ความสามารถของดีซาลินาเพื่อเพิ่มกิจกรรมสังเคราะห์ภายใต้สภาวะเครียดได้รับการรายงานก่อนหน้านี้โดย Liska et al, (Liska et al., 2004) ในการศึกษาของพวกเขาสังเคราะห์เพิ่มขึ้นเป็น

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

4 . การอภิปรายงานนำเสนอที่นี่แสดงให้เห็นว่า D . salina ccap 19 / 30 เซลล์เปลี่ยนแปลงเซลล์ขนาดในการตอบสนองต่อวงจรแสงที่มืด / สว่าง และว่า อย่างการเปลี่ยนแปลงในเซลล์ที่สอดคล้องกับการเปลี่ยนแปลงในเซลล์ขนาดรอลเนื้อหา ผลลัพธ์ที่ได้ในรูปที่ 2 แสดงให้เห็นว่าเซลล์เพิ่มปริมาณในช่วงแสงและการลดลงของปริมาณในช่วงมืด เพื่อความรู้ที่ดีที่สุดของเรา นี่คือรายงานแรกของคาบ ปริมาณเซลล์ใน D . salina เมื่อเติบโตภายใต้เงื่อนไขใน . ตั้งแต่ D . salina เซลล์ไม่มีผนังเซลล์แข็งโพลีแซคคาไรด์ของประชาสัมพันธ์ให้เซลล์เพื่อปรับระดับเสียงของพวกเขาและรูปร่างอย่างรวดเร็วในการตอบสนองต่อ การเปลี่ยนแปลงของสิ่งแวดล้อม ( มาเอดะ และ ทอมป์สัน , 1986 ) แม้ว่าช่วงแรกการศึกษาได้รายงานการเปลี่ยนแปลงจังหวะในเซลล์รูปร่างของยูกลีนา glandulifera ( โลเนอร์แกน , 1983 ) , กลไกใน แตกต่างกันไป ซึ่งใน glandulifera D . salina รายงานในการศึกษา E . glandulifera เซลล์รูปร่างอยู่ภายใต้การควบคุมโดยตรงของนาฬิกาชีวภาพ ซึ่งแม้ภายใต้แสงอย่างต่อเนื่อง จังหวะทุกวัน เซลล์รูปร่างยังคงอยู่ อย่างไรก็ตาม เมื่อ D . salina โตภายใต้แสงอย่างต่อเนื่อง ความผันผวนในเซลล์รูปร่างหยุด ( รูปที่ 1 ) แสดงว่ามันอยู่ภายใต้การควบคุมของการเปลี่ยนแปลงตามเวลา มากกว่าจังหวะที่เป็นกลาง หรือเกิดจากการแบ่งเซลล์ ความผันผวนของปริมาณเซลล์และเซลล์ กลีเซอรอล เนื้อหาของ ccap 19 / 30 ไม่พบในการรักษาหลาย ๆชนิด ในห้องปฏิบัติการ รวมทั้งการ parva quartolecta , และการ , การทำโดยหรือในสาหร่ายสีเขียวคลาไมโดโมแนส reinhardtii ( ข้อมูลไม่แสดง ) ; และตั้งแต่มีรายงานก่อนหน้านี้ไม่พบ อาจเป็นชนิดที่เฉพาะเจาะจง คุณสมบัติการสังเคราะห์และการย่อยสลายของกลีเซอรอลในการตอบสนองการเปลี่ยนแปลงแรงดันออสโมซิสทั่วไปถือว่าถูกทริกเกอร์ โดยการเปลี่ยนแปลงปริมาณเซลล์ ( เบน amotz และ avron , 1981 และ เซลานี et al . , 1995 ) อย่างไรก็ตามในการศึกษานี้เราแสดงโดยรอบมืดแสงที่เปลี่ยนแปลงปริมาณเซลล์ยังสามารถเป็นผลของการเปลี่ยนแปลงในเซลล์ กลีเซอรอล เนื้อหา กลีเซอรอลที่ผ่านการสังเคราะห์แสงและการปรับความเข้มข้นของกลีเซอรอลได้โดยการควบคุมคาร์บอนไหลระหว่างทั้งการสังเคราะห์แป้งหรือกลีเซอรอล ( Goyal 2007b 2007a Goyal , และ , ) ในที่มืด ไม่มีคาร์บอนคงกลีเซอรอลจากกระบวนการสังเคราะห์แสง และแป้ง respired เพื่อผลิตพลังงานและสาร : สระว่ายน้ำขนาดของกลีเซอรอล จึงลดลง นี้จะทำให้ปริมาณเซลล์ลดลงในที่มืดเพื่อรักษาความดันออสโมติก . กับเวลาเพิ่มเติมในที่มืดเพิ่มขึ้นชัดเจนในกลีเซอรอลและเนื้อหามือถือแป้งพบว่า : นี้ดูเหมือนง่ายเคาน์เตอร์การสังเกตอาจยังคงสามารถเนื่องจากความมืดที่เกี่ยวข้องเพิ่มเติมเหตุการณ์ เช่น ผลของไขมันในสาหร่าย photoautotrophic แคแทบอลิซึมที่ถูกลิดรอนของคาร์บอนแหล่งพลังงานภายนอก และปล่อยกรดไขมันและกลีเซอรอล .มันเป็นเอกสารที่ดีที่การปล้อนแสงสูงนำไปสู่ psii photodamage เมื่ออัตรา photodamage เกินกว่าที่ของรอบการซ่อม และนำไปสู่ photoinhibition ลดประสิทธิภาพการสังเคราะห์แสง ( เมลิสและเมลิส yokthongwattana 1999 และ 2008 ) สำหรับอุดมพืช Arabidopsis thaliana , อัตรา photodamage dominates ในแสงเข้มกว่า 500 μ mol โฟตอน m − 2 s − 1 และนำไปสู่ photoinhibition ( havaux et al . , 2000 ) ในการศึกษาของเรา ความเข้มแสงที่ค่าสูงกว่า 500 μ mol โฟตอน m − 2 s − 1 มีผลในการลดลงในอัตราส่วน 2 / FM ประมาณ 34% เมื่อเทียบกับที่ 200 μ mol โฟตอน m − 2 s − 1 แสดง psii ความเสียหาย อัตราการสังเคราะห์แสงลดลง สังเกตวัฒนธรรม acclimated เพื่อแสงความเข้มของ 200 และ 500 μ mol โฟตอน m − 2 s − 1 ดังนั้นจึงอาจมีสาเหตุจาก photoinhibition . ที่ระดับความเข้มแสง อย่างไรก็ตาม อัตราการสังเคราะห์ด้วยแสงเพิ่มขึ้นถึงระดับสูงสุด ( รูปและ 6A 6B ) การค้นพบนี้แสดงให้เห็นว่า ccap 19 / 30 อาจจะมีวิวัฒนาการที่มีประสิทธิภาพที่ช่วยให้การซ่อมวงจรการหมุนเวียน psii เสียหายในอัตราที่เร็วขึ้น ที่ความเข้มแสงสูงเพื่อให้มันเพื่อรักษาประสิทธิภาพการสังเคราะห์แสงสูงสุด แน่นอน มันได้ถูกแสดงว่า การ tertiolecta สามารถกู้คืน PS II ประสิทธิภาพโดย 80% จาก photodamage ภายในเพียง 1 นาทีแห่งความมืดที่เหมาะสม ( แคสเปอร์ ลินด์ลีย์ และ BJ ö rkman , 1998 )เพิ่มอัตราการสังเคราะห์แสงที่ความเข้มแสงสูงในการศึกษานี้ ทำให้ความอดทนของ ccap 19 / 30 photodamage . อัตรา photodamage ขึ้นอยู่กับ QA 1 สภาพที่เกิดขึ้นในความน่าจะเป็นต่ำเมื่อ QA เป็นออกซิไดซ์และกระตุ้นพลังงานที่ใช้ในห่วงโซ่การขนส่งอิเล็กตรอนในอัตราที่เร็วขึ้น ( เมลิส , 1999 ) เพิ่มขึ้นในอัตราการสังเคราะห์ด้วยแสงจึงนำไปสู่ออกซิเดชันอย่างรวดเร็วของ PQ สระ ซึ่งจะระบายอิเล็กตรอนในอัตราที่เร็วขึ้นจาก QA เว็บไซต์ของ psii ลดความเป็นไปได้ของ psii photodamage . ความสามารถของ D . salina เพื่อเพิ่มกิจกรรมการสังเคราะห์แสงภายใต้สภาวะเครียด ได้รับรายงานว่า ก่อนหน้านี้ โดยลิสก้า et al . ( ลิสก้า et al . , 2004 ) ในการศึกษาของพวกเขา เพิ่มโพธิ์