2.7. Prophage detection in host bac

2.7. Prophage detection in host bacteria after phage therapy
In order to evaluate the occurrence of lysogenic conversion (evaluate
if the tested phage has the ability to incorporate its own genome
in the bacterial genome), the mitomycin C test was applied, according
to Silva et al. (2014a), Silva et al. (2014b). The absence of a clear zone
after the exposure to mytomycin C was interpreted as an indicator of
the absence of prophages in the bacterial genomes. Three independent
assays were performed.
2.8. Determination of frequencies of spontaneous phage-bacterial mutants
Spontaneous A. salmonicida mutants resistant to bacteriophages were
isolated by plating on double-layer agar with the phage (109 PFU/mL per
plate), according to Filippov et al. (2011). To calculate the mutation frequencies,
mean numbers of mutants in 1 mL of culture (prepared from
the culture with phages) were divided by mean total numbers of live
bacterial cells (prepared from the culture without phages) (Filippov
et al., 2011).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.7 ตรวจ prophage ในแบคทีเรียโฮสต์หลังจากบำบัด phageการประเมินการเกิดแปลง lysogenic (ประเมินถ้า phage ทดสอบความสามารถในการรวมกลุ่มของตัวเองในการเชื้อแบคทีเรียจีโนม), การทดสอบ mitomycin C ใช้ ตามการ Silva et al. (2014a), Silva et al. (2014b) การขาดงานของโซนชัดเจนหลังจากสัมผัสกับ mytomycin C ถูกแปลเป็นตัวบ่งชี้การขาดงานของ prophages ใน genomes แบคทีเรีย อิสระ 3assays ดำเนินการ2.8 การกำหนดความถี่ของ phage แบคทีเรียสายพันธุ์ที่อยู่มีสายพันธุ์ A. salmonicida อยู่ทนต่อ bacteriophagesแยกต่างหาก โดยชุบบนชั้นสอง agar มี phage (109 PFU/mL ต่อแผ่น), ตาม Filippov et al. (2011) การคำนวณความถี่ของการกลายพันธุ์หมาย เลขของสายพันธุ์ใน 1 mL ของวัฒนธรรม (เตรียมจากวัฒนธรรมกับ phages) ถูกหาร ด้วยเลขหมายถึงผลรวมของสดเซลล์แบคทีเรีย (เตรียมจากวัฒนธรรมโดย phages) (Filippovร้อยเอ็ด al., 2011)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.7 การตรวจหาแบคทีเรียใน prophage
โฮสต์หลังการรักษาทำลายจุลินทรีย์ในการประเมินการเกิดขึ้นของการแปลงlysogenic
(การประเมินถ้าทำลายจุลินทรีย์ที่ผ่านการทดสอบมีความสามารถในการรวมจีโนมของตัวเองในจีโนมของเชื้อแบคทีเรีย)
ทดสอบ mitomycin C
ถูกนำไปใช้ตามที่จะซิลวา, et al (2014a), ซิลวา, et al (2014b) กรณีที่ไม่มีโซนชัดเจนหลังจากการสัมผัสกับ mytomycin C ถูกตีความว่าเป็นตัวบ่งชี้ของการขาดงานของprophages ในจีโนมของเชื้อแบคทีเรีย สามอิสระตรวจได้ดำเนินการ. 2.8 การกำหนดความถี่ของการกลายพันธุ์ทำลายจุลินทรีย์แบคทีเรียที่เกิดขึ้นเองโดยธรรมชาติเอ salmonicida กลายพันธุ์ที่ทนต่อแบคทีเรียที่ถูกแยกออกโดยชุบวุ้นในสองชั้นที่มีการทำลายจุลินทรีย์ (ที่ 109 PFU / มิลลิลิตรต่อแผ่น) ตาม Filippov et al, (2011) ในการคำนวณความถี่การกลายพันธุ์ตัวเลขเฉลี่ยของการกลายพันธุ์ใน 1 มิลลิลิตรของวัฒนธรรม (จัดทำขึ้นจากวัฒนธรรมphages) ที่ถูกแบ่งโดยตัวเลขรวมเฉลี่ยของสดเซลล์แบคทีเรีย(จัดทำขึ้นจากการเพาะเลี้ยงโดยไม่ต้อง phages) (Filippov et al., 2011)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.7 . การตรวจหาแบคทีเรียใน prophage โฮสต์หลังจากที่ฟาบำบัด
เพื่อประเมินการเกิดการแปลงไลโซจีนิก ( ประเมิน
ถ้าทดสอบว่ามีความสามารถในการรวม
จีโนมของตัวเองในจีโนมของแบคทีเรีย ) , , C แบบประยุกต์ ตาม
กับซิลวา et al . ( 2014a ) , ซิลวา et al . ( 2014b ) ขาด
โซนใสหลังจากการ mytomycin C ถูกตีความเป็นตัวบ่งชี้ของการขาด prophages
ในจีโนมแบคทีเรีย 3 ) มีการใช้อิสระ
.
2.8 . การหาค่าความถี่ธรรมชาติของแบคทีเรียสายพันธุ์ธรรมชาติ . salmonicida ฟา

กลายพันธุ์ป้องกันแบคทีริโอฟาดจ์ถูกแยกด้วยชุบบน Layer วุ้นกับฟา ( 109 พีเอฟยู / มิลลิลิตร /
จาน )ตาม filippov et al . ( 2011 ) เพื่อหาการกลายพันธุ์ของ
หมายถึงตัวเลขของการกลายพันธุ์ใน 1 มิลลิลิตรของวัฒนธรรม ( ที่เตรียมจาก
วัฒนธรรมกับฟาจ ) แบ่งโดยรวมหมายเลขของชีวิต
เซลล์แบคทีเรีย ( ที่เตรียมจากวัฒนธรรมโดยฟาจ ) ( filippov
et al . , 2011 )