Oxygen content and redox potential

Oxygen content and redox potential are among the important
factors affecting the viability of probiotics especially during
the storage period (Lee & Salminen, 2009). Molecular oxygen
is harmful to probiotic survival and growth, as most of the
species are strictly anaerobic and saccharoclastic (De Vuyst,
2000; Holzapfel, Haberer, Geisen, Bjo rkroth, & Schillinger, 2001).
Oxygen affects probiotics in three ways i.e. (i) it is directly toxic
to some cells, (ii) certain cultures produce toxic peroxides in
the presence of oxygen, and (iii) free radicals produced from
the oxidation of components (e.g., fats) are toxic to probiotic
cells (Korbekandi et al., 2011). The level of oxygen within the
package during storage of probiotic products should be as low
as possible in order to avoid toxicity and death of the microorganism
and the consequent loss of functionality of the
product.
The degree of oxygen sensitivity varies considerably among
different species and strains of probiotics (Kawasaki, Mimura,
Satoh, Takeda, & Niimura, 2006; Talwalkar & Kailasapathy, 2003,
2004). Bifidobacteria are more vulnerable to oxygen damage than
L. acidophilus due to their anaerobic nature. B. lactis is a moderately
oxygen tolerant species of among Bifidobacterium that
was isolated from fermented milk by Meile et al. (1997), confirming
the strain dependent phenomenon of oxygen sensitivity.
In general, Lactobacilli are more tolerant to oxygen than
Bifidobacteria, to the point where oxygen levels are rarely an
important consideration in maintaining the survival of Lactobacilli.
High levels of enzymes NAD-oxidase and NADHperoxidase
have been reported in aero-tolerant species, and
these enzymes are responsible for removing oxygen from the
intercellular medium (Roy, 2005). The modified relative bacterial
growth ratio (RBGR) methodology developed by Talwalkar,
Kailasapathy, Peiris, and Arumugaswamy (2001) can successfully
be utilized to enumerate the oxygen tolerance of several
probiotic bacteria, and can assist in differentiating the oxygen
sensitive strains from oxygen tolerant strains.
In addition to the oxygen content in the product, it also permeates
through the package and comes in contact with the
product. This considerably reduced the viability of L. acidophilus
and Bifidobacteria in fermented milk products (Klaver,
Kingma, &Weerkamp, 1993). Dave and Shah (1997b) found that
Bifidobacteria survived well over a 35 days period in yogurt, regardless
of the oxygen content and redox potential of the yogurt.
Even the dissolved oxygen of the yogurt was seen to rise
steadily, counts of Bifidobacteria remained above the recommended
level of 106 CFU g−1 throughout the shelf life of the
yogurt, while L. acidophilus counts were found to decrease below
103 CFU g−1 by the third week of storage.The impairment of viability
during storage is related to oxidation of membrane lipids
(Teixeira, Castro, & Kirby, 1996). Products of lipid peroxidation
have been shown to induce DNA damage in a model system
(Akasaka, 1986) and in bacteria (Marnett et al., 1985). Therefore,
to minimize oxidation and to maximize probiotic viability
during storage, the presence of antioxidants in combination
with storage under vacuum with controlled water activity
should be effective (Teixeira, Castro, Malcata, & Kirby, 1995b).
Different methods have been attempted to reduce the
oxygen content during packaging and storage of probiotic foods.
These include vacuum packaging, using packaging materials
with low oxygen permeability, adding antioxidants and oxygen
scavengers to the product, and controlling the production
process in such a way that minimum dissolved oxygen entered
into product (Dave & Shah, 1997b; Korbekandi et al., 2011;
Talwalkar, Miller, Kailasapathy, & Nguyen, 2004). Antioxidant
compounds, such as catechins, could be used to limit negative
effects of oxygen exposure on bacteria during their growth
and storage in food products (Gaudreau et al., 2013).The authors
measured the effects of different concentrations of (+)-catechin,
green tea epigallocatechin gallate and green tea extracts (GTE)
on the growth of probiotic strains with different oxygen sensitivities.
Results obtained showed that medium enrichment
with catechins did not stimulate the growth of the two
Bifidobacteria. However, the growth of L. helveticus was greatly
enhanced, under aerobic conditions, by supplementation of the
medium with GTE. Similar results were obtained by fortification
of vitamin-E in the stabilization matrix as an antioxidant
that improved the stability of L. casei CRL 431 during
20 week storage period at 25 °C (Nag & Das, 2013).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เนื้อหาออกซิเจนและเกิด redox เป็นสำคัญปัจจัยที่ส่งผลกระทบต่อชีวิตของ probiotics โดยเฉพาะในช่วงระยะเก็บข้อมูล (ลี & Salminen, 2009) โมเลกุลออกซิเจนเป็นอันตรายต่อโปรไบโอติกส์อยู่รอดและเจริญเติบโต เป็นส่วนใหญ่ชนิดไม่ใช้ออกซิเจนอย่างเคร่งครัด และ saccharoclastic (De Vuyst2000 Holzapfel, Haberer, Geisen, Bjo rkroth, & Schillinger, 2001)ออกซิเจนมีผลต่อ probiotics ใน 3 วิธีคือ (i) เป็นพิษโดยตรงบางเซลล์, (ii) วัฒนธรรมบางอย่างผลิตราคา peroxides พิษในของออกซิเจน และ (iii) อนุมูลอิสระผลิตจากออกซิเดชันของส่วนประกอบ (เช่น ไขมัน) มีพิษกับโปรไบโอติกส์เซลล์ (Korbekandi et al., 2011) ระดับของออกซิเจนในการแพคเกจระหว่างการเก็บรักษาของผลิตภัณฑ์โปรไบโอติกส์ควรต่ำสุดที่สุดเพื่อหลีกเลี่ยงความเป็นพิษและความตายของจุลินทรีย์เพื่อและต้องสูญเสียฟังก์ชันการทำงานของผลลัพธ์ผลิตภัณฑ์ระดับของความไวต่อออกซิเจนมากไปจนในสายพันธุ์ต่าง ๆ และสายพันธุ์ของ probiotics (คาวาซากิ Mimuraโยะ ทาเคดะ & Niimura, 2006 Talwalkar & Kailasapathy, 20032004) . Bifidobacteria จะมีความเสี่ยงต่อความเสียหายของออกซิเจนมากกว่าL. acidophilus เนื่องจากธรรมชาติของพวกเขาไม่ใช้ออกซิเจน Lactis เกิดคือเป็นค่อนข้างออกซิเจนทนกับพันธุ์ระหว่าง Bifidobacterium ที่ถูกแยกจากนมที่หมักโดย Meile et al. (1997), ยืนยันต้องใช้ขึ้นอยู่กับปรากฏการณ์ของความไวต่อออกซิเจนทั่วไป Lactobacilli มีความอดทนมากกว่าออกซิเจนมากกว่าBifidobacteria ไปยังจุดที่ระดับออกซิเจนไม่ค่อยมีพิจารณาความสำคัญในการรักษาความอยู่รอดของ Lactobacilliระดับสูงของเอนไซม์ oxidase และและ NADHperoxidaseรายงานใน aero ป้องกันชนิด และเอนไซม์เหล่านี้มีหน้าที่สำหรับเอาออกซิเจนจากการintercellular ปานกลาง (รอย 2005) แบคทีเรียญาติแก้ไขวิธีอัตราส่วน (RBGR) เจริญเติบโตพัฒนา โดย TalwalkarKailasapathy, Peiris และ Arumugaswamy (2001) สามารถเรียบร้อยแล้วสามารถใช้ระบุยอมรับออกซิเจนของหลาย ๆแบคทีเรียโปรไบโอติกส์ และสามารถช่วยในการขึ้นต้นการออกซิเจนสายพันธุ์ที่สำคัญจากสายพันธุ์ทนกับออกซิเจนนอกจากเนื้อหาออกซิเจนในผลิตภัณฑ์ มันยังบริเวณห่างออกไปผ่านแพคเกจมาติดต่อด้วยผลิตภัณฑ์ นี้ลดลงมากนี้ของ L. acidophilusและ Bifidobacteria ในผลิตภัณฑ์นมหมัก (KlaverKingma, & Weerkamp, 1993) เดฟและชาห์ (1997b) พบว่าBifidobacteria รอดชีวิตมากกว่าระยะเวลา 35 วันในโยเกิร์ต ไม่ดีออกซิเจนเนื้อหาและศักยภาพ redox ของโยเกิร์ตแม้ออกซิเจนละลายของโยเกิร์ตได้เห็นการเพิ่มขึ้นอย่างต่อเนื่อง การตรวจนับของ Bifidobacteria ยังคงข้างต้นที่แนะนำระดับของ 106 CFU g−1 ตลอดอายุการเก็บรักษาโยเกิร์ต ขณะ L. acidophilus นับพบลดลงด้านล่างG−1 CFU 103 โดยสัปดาห์สามของการจัดเก็บผลของชีวิตในระหว่างเก็บเกี่ยวข้องกับออกซิเดชันของโครงการเมมเบรน(Teixeira, Castro และเคอร์ บี้ 1996) ผลิตภัณฑ์ของ peroxidation ของไขมันได้รับการแสดงเพื่อก่อให้เกิดความเสียหายของดีเอ็นเอในระบบจำลอง(อา 1986) และแบคทีเรีย (Marnett และ al., 1985) ดังนั้นลดการเกิดออกซิเดชัน และขยายชีวิตของโปรไบโอติกส์ระหว่างการเก็บรักษา สถานะของสารต้านอนุมูลอิสระร่วมพร้อมการจัดเก็บภายใต้สุญญากาศกับกิจกรรมควบคุมน้ำควรมีประสิทธิภาพ (Teixeira, Castro, Malcata และเคอร์ บี้ 1995b)วิธีการต่าง ๆ ได้ถูกพยายามที่จะลดการเนื้อหาออกซิเจนระหว่างบรรจุภัณฑ์และการจัดเก็บอาหารโปรไบโอติกส์รวมถึงบรรจุภัณฑ์สุญญากาศ ใช้วัสดุบรรจุภัณฑ์มีออกซิเจนต่ำ permeability เพิ่มสารต้านอนุมูลอิสระและออกซิเจนscavengers ผลิตภัณฑ์ และการควบคุมการผลิตกระบวนการในลักษณะที่ต่ำสุดส่วนยุบออกซิเจนป้อนเป็นผลิตภัณฑ์ (Dave และชาห์ 1997b Korbekandi et al., 2011Talwalkar มิลเลอร์ Kailasapathy และเห งียน 2004) สารต้านอนุมูลอิสระสาร เช่น catechins สามารถใช้เพื่อจำกัดค่าลบผลของการสัมผัสออกซิเจนแบคทีเรียในระหว่างการเจริญเติบโตของพวกเขาและจัดเก็บข้อมูลในผลิตภัณฑ์อาหาร (Gaudreau et al., 2013)ผู้เขียนวัดผลของความเข้มข้นแตกต่างกันของ (+) -สารสกัดจากชาเขียว epigallocatechin gallate และสารสกัดจากชาเขียว (GTE)ในการเจริญเติบโตของโปรไบโอติกส์เงียรัฐออกซิเจนแตกต่างกันผลลัพธ์ที่ได้แสดงให้เห็นว่าโดดเด่นที่ขนาดกลางมี catechins ได้ไม่กระตุ้นการเติบโตของทั้งสองBifidobacteria อย่างไรก็ตาม การเติบโตของ L. helveticus เป็นอย่างมากเพิ่มขึ้น ภายใต้เงื่อนไขแอโรบิก โดยแห้งเสริมของการกลางกับ GTE ผลคล้ายได้รับ โดยระบบป้อมปราการวิตามินอีในเมตริกซ์เสถียรภาพเป็นสารต้านที่ปรับปรุงเสถียรภาพของ L. casei CRL 431 ในระหว่างระยะเวลาจัดเก็บ 20 สัปดาห์ที่ 25 ° C (Nag และ Das, 2013)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ปริมาณออกซิเจนและศักยภาพรีดอกซ์เป็นหนึ่งในสิ่งที่สำคัญ
ปัจจัยที่มีผลต่อความมีชีวิตของโปรไบโอติกโดยเฉพาะในช่วง
ระยะเวลาการจัดเก็บข้อมูล (Lee & Salminen, 2009) โมเลกุลออกซิเจน
เป็นอันตรายต่อการอยู่รอดและการเติบโตของโปรไบโอติกเป็นส่วนใหญ่ของ
สายพันธุ์แบบไม่ใช้ออกซิเจนอย่างเคร่งครัดและ saccharoclastic (De Vuyst,
2000; Holzapfel, Haberer, Geisen, Bjo rkroth และ Schillinger, 2001).
ออกซิเจนส่งผลกระทบต่อโปรไบโอติกในสามวิธีคือ (i ) มันอยู่ตรงที่เป็นพิษ
ต่อเซลล์บาง (ii) บางวัฒนธรรมผลิตเปอร์ออกไซด์ที่เป็นพิษใน
การปรากฏตัวของออกซิเจนและ (iii) อนุมูลอิสระที่ผลิตจาก
ออกซิเดชันของส่วนประกอบ (เช่นไขมัน) เป็นพิษต่อโปรไบโอติก
เซลล์ (Korbekandi และคณะ 2011) ระดับของออกซิเจนที่อยู่ใน
แพคเกจระหว่างการเก็บรักษาของผลิตภัณฑ์โปรไบโอติกควรจะเป็นต่ำ
เป็นไปได้ในการสั่งซื้อเพื่อหลีกเลี่ยงความเป็นพิษและการตายของจุลินทรีย์
และการสูญเสียที่เกิดขึ้นจากการทำงานของ
ผลิตภัณฑ์.
ระดับของความไวออกซิเจนแตกต่างกันมากในหมู่
สายพันธุ์ที่แตกต่างกันและสายพันธุ์ ของโปรไบโอติก (คาวาซากิ Mimura,
Satoh, ทาเคดะและ Niimura 2006; Talwalkar & Kailasapathy, 2003,
2004) ไบฟิโดแบคทีเรียมีความเสี่ยงที่จะเกิดความเสียหายออกซิเจนกว่า
ลิตร acidophilus เนื่องจากลักษณะของพวกเขาแบบไม่ใช้ออกซิเจน B. lactis เป็นปานกลาง
ชนิดออกซิเจนใจกว้างของหมู่ Bifidobacterium ที่
แยกได้จากนมหมักโดย Meile และคณะ (1997) ยืนยัน
สายพันธุ์ขึ้นอยู่กับปรากฏการณ์ของความไวออกซิเจน.
โดยทั่วไป Lactobacilli มีความอดทนมากขึ้นเพื่อให้ออกซิเจนกว่า
ไบฟิโดแบคทีเรียไปจนถึงจุดที่ระดับออกซิเจนจะไม่ค่อย
พิจารณาที่สำคัญในการรักษาความอยู่รอดของ Lactobacilli.
ระดับสูงของเอนไซม์ NAD-oxidase และ NADHperoxidase
ได้รับการรายงานในสายพันธุ์ที่ทนต่ออากาศและ
เอนไซม์เหล่านี้มีความรับผิดชอบสำหรับการลบออกซิเจนจาก
กลาง intercellular (รอย, 2005) แบคทีเรียญาติปรับเปลี่ยน
อัตราการเจริญเติบโต (RBGR) วิธีการพัฒนาโดย Talwalkar,
Kailasapathy, Peiris และ Arumugaswamy (2001) ประสบความสำเร็จสามารถ
นำไปใช้ในการระบุความอดทนออกซิเจนหลาย
แบคทีเรียโปรไบโอติกและสามารถให้ความช่วยเหลือในความแตกต่างออกซิเจน
สายพันธุ์ที่สำคัญจากสายพันธุ์ที่ทนต่อออกซิเจน .
นอกจากปริมาณออกซิเจนในผลิตภัณฑ์ก็ยังแทรกซึม
ผ่านแพคเกจและสัมผัสกับ
ผลิตภัณฑ์ นี้ลดลงอย่างมากในชีวิตของ L. acidophilus
และไบฟิโดแบคทีเรียในผลิตภัณฑ์นมหมัก (เปียโน,
Kingma และ Weerkamp, ​​1993) เดฟและอิหร่าน (1997b) พบว่า
ไบฟิโดแบคทีเรียรอดชีวิตมาได้ดีเป็นระยะเวลากว่า 35 วันในโยเกิร์ตโดยไม่คำนึงถึง
ของปริมาณออกซิเจนและศักยภาพรีดอกซ์ของโยเกิร์ต.
แม้แต่ออกซิเจนละลายของโยเกิร์ตก็เห็นจะเพิ่มขึ้น
อย่างต่อเนื่องนับจากไบฟิโดแบคทีเรียยังคงอยู่ด้านบน แนะนำ
ระดับ 106 CFU กรัม-1 ตลอดอายุการเก็บรักษาของ
โยเกิร์ตในขณะที่นับ L. acidophilus พบว่าลดลงต่ำกว่า
103 CFU กรัม-1 โดยสัปดาห์ที่สามของการเก็บรักษาการด้อยค่าของการมีชีวิต
ระหว่างการเก็บรักษาที่เกี่ยวข้องกับการเกิดออกซิเดชันของเมมเบรน ไขมัน
(Teixeira, คาสโตรและเคอร์บี้, 1996) ผลิตภัณฑ์ที่เกิด lipid peroxidation
ได้รับการแสดงที่จะทำให้เกิดความเสียหายของดีเอ็นเอในแบบจำลองระบบ
(Akasaka, 1986) และแบคทีเรีย (Marnett et al., 1985) ดังนั้น
เพื่อลดการเกิดออกซิเดชันและเพื่อเพิ่มศักยภาพในโปรไบโอติก
ระหว่างการเก็บรักษาการปรากฏตัวของสารต้านอนุมูลอิสระในการรวมกัน
กับการจัดเก็บภายใต้สูญญากาศที่มีกิจกรรมทางน้ำควบคุม
ควรจะมีประสิทธิภาพ (Teixeira, คาสโตร Malcata และเคอร์บี 1995b).
วิธีการที่แตกต่างกันได้รับการพยายามที่จะลด
ปริมาณออกซิเจนในระหว่างการบรรจุภัณฑ์และการเก็บรักษาอาหารโปรไบโอติก.
เหล่านี้รวมถึงบรรจุภัณฑ์สูญญากาศใช้วัสดุบรรจุภัณฑ์
ที่มีการซึมผ่านของออกซิเจนต่ำเพิ่มสารต้านอนุมูลอิสระและออกซิเจน
แตกตื่นกับผลิตภัณฑ์และการควบคุมการผลิต
ในกระบวนการเช่นวิธีการที่ออกซิเจนละลายน้ำต่ำสุดที่ป้อน
ลงในผลิตภัณฑ์ ( เดฟและอิหร่าน 1997b. Korbekandi et al, 2011;
Talwalkar มิลเลอร์, Kailasapathy และเหงียน 2004) สารต้านอนุมูลอิสระ
สารเช่น catechins, สามารถนำมาใช้เพื่อ จำกัด เชิงลบ
ผลกระทบของการเปิดรับออกซิเจนแบคทีเรียระหว่างการเจริญเติบโตของพวกเขา
และการเก็บรักษาในผลิตภัณฑ์อาหาร (. Gaudreau, et al, 2013) ผู้เขียนได้โดยเริ่มต้น
วัดผลของความเข้มข้นที่แตกต่างกัน (+) - catechin ,
ชาเขียวสาร epigallocatechin gallate และสารสกัดจากชาเขียว (GTE)
การเจริญเติบโตของเชื้อโปรไบโอติกที่มีความไวออกซิเจนที่แตกต่างกัน.
ผลที่ได้แสดงให้เห็นว่าการเพิ่มคุณค่าขนาดกลาง
ที่มี catechins ไม่ได้กระตุ้นการเจริญเติบโตของทั้งสอง
ไบฟิโดแบคทีเรีย อย่างไรก็ตามการเจริญเติบโตของเชื้อ L. helveticus ถูกมาก
ที่เพิ่มขึ้นภายใต้เงื่อนไขแอโรบิกโดยการเสริม
กลางที่มี GTE ผลที่คล้ายกันที่ได้จากป้อมปราการ
ของวิตามินอีในเมทริกซ์เสถียรภาพเป็นสารต้านอนุมูลอิสระ
ที่ดีขึ้นมั่นคงของ L. Casei CRL 431 ในช่วง
ระยะเวลาการเก็บ 20 สัปดาห์ที่ 25 ° C (นาคปรกและดา 2013)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ปริมาณออกซิเจน และค่าศักย์ไฟฟ้ารีดอกซ์ของสำคัญ
ปัจจัยที่มีผลต่อศักยภาพของโปรไบโอติกโดยเฉพาะอย่างยิ่งในระหว่าง
ระยะเวลาที่เก็บ ( ลี & salminen , 2009 )
ออกซิเจนโมเลกุลที่เป็นอันตรายต่อการอยู่รอดของโปรไบโอติกและการเจริญเติบโต , เป็นส่วนใหญ่ของ
ชนิดแอโรบิก และ saccharoclastic อย่างเคร่งครัด ( เดอ vuyst
, 2000 ; holzapfel haberer geisen bjo rkroth , , , ,
&ชิลลีเงอร์ , 2001 )ออกซิเจนมีผลต่อโปรไบโอติกใน 3 วิธีคือ ( ฉัน ) มันเป็นพิษโดยตรง
บางเซลล์ ( 2 ) บางวัฒนธรรมการผลิต peroxides เป็นพิษใน
การปรากฏตัวของออกซิเจน และ ( iii ) อนุมูลอิสระที่ผลิตจาก
ออกซิเดชันของส่วนประกอบ ( เช่นไขมัน ) เป็นพิษต่อเซลล์ ( โปรไบโอติก
korbekandi et al . , 2011 ) ระดับของออกซิเจนภายในแพคเกจระหว่างการเก็บรักษาของผลิตภัณฑ์โปรไบโอติก

ควรจะต่ำเท่าที่เป็นไปได้เพื่อหลีกเลี่ยงความตายและความเป็นพิษของจุลินทรีย์
และการสูญเสียที่เป็นผลลัพธ์ของการทำงานของ

ไวผลิตภัณฑ์ ระดับออกซิเจนแตกต่างกันมากระหว่าง
ชนิดและสายพันธุ์ของโปรไบโอติก ( คาวาซากิ มิมูระ ซาโต้ ทาเคดะ ,
, , &นีมูระ , 2006 ; talwalkar &
kailasapathy , 2003 , 2004 ) . ไบฟิโดแบคทีเรียมีความเสี่ยงต่อความเสียหายของออกซิเจนมากกว่า
Lวันเนื่องจากธรรมชาติบำบัดของพวกเขา B . lactis เป็นปานกลาง
ออกซิเจนใจกว้างชนิดของไบฟิโดแบคทีเรียที่
ถูกแยกจากนมหมัก โดย meile et al . ( 1997 ) , ยืนยัน
สายพันธุ์ขึ้นอยู่กับปรากฏการณ์ความไวของออกซิเจน .
ในทั่วไป , Lactobacilli มีมากขึ้นใจกว้างออกซิเจนมากกว่า
Bifidobacteria เพื่อจุดที่ระดับออกซิเจนจะไม่ค่อยมี
การพิจารณาที่สำคัญในการรักษาความอยู่รอดของแลคโตบาซิลัส .
สูงระดับของเอนไซม์ NAD oxidase และ nadhperoxidase
มีรายงานใน Aero ใจกว้างชนิดเอนไซม์เหล่านี้จะรับผิดชอบและ

เอาออกซิเจนจากกลางซึ่งอยู่ระหว่างเซลล์ ( Roy , 2005 ) แก้ไขญาติแบคทีเรีย
การเจริญเติบโตอัตราส่วน ( rbgr ) วิธีการพัฒนาโดย talwalkar kailasapathy Peiris
, , ,และ arumugaswamy ( 2001 ) ได้สำเร็จ
ถูกใช้เพื่อระบุออกซิเจนของแบคทีเรียโปรไบโอติกต่อหลาย
และสามารถช่วยในการออกซิเจน
อ่อนไหวสายพันธุ์จากออกซิเจนใจกว้างสายพันธุ์ .
นอกจากปริมาณออกซิเจนในผลิตภัณฑ์ นอกจากนี้ยังได้แทรก
ผ่านแพคเกจและที่มาในการติดต่อกับ
ผลิตภัณฑ์ นี้มากลดศักยภาพของวันมี
Lและ ไบฟิโดแบคทีเรียในผลิตภัณฑ์อาหารหมักจากนม ( klaver
คิงม่า , & weerkamp , 1993 ) เดฟและ Shah ( 1997b ) พบว่า
Bifidobacteria รอดกว่า 35 วันระยะเวลาในโยเกิร์ต ไม่ว่า
ของปริมาณออกซิเจนและการรีดอกซ์ศักยภาพของโยเกิร์ต
แม้แต่ออกซิเจนละลายของโยเกิร์ตที่เห็นลุก
อย่างต่อเนื่องนับจาก Bifidobacteria ยังคงอยู่ข้างบน
แนะนําระดับ 106 cfu G − 1 ตลอดอายุของ
โยเกิร์ต ในขณะที่ L . acidophilus นับลดลงด้านล่าง
103 CFU G − 1 สัปดาห์ที่สามของการจัดเก็บ ผลของความมีชีวิต
ในระหว่างการเก็บรักษา เกี่ยวข้องกับการเกิดออกซิเดชันของลิปิด
( TEIXEIRA เมมเบรน , & Castro , เคอร์บี้ , 1996 ) ผลิตภัณฑ์ของ lipid peroxidation
ได้รับการแสดงเพื่อให้เกิดความเสียหายของดีเอ็นเอในรูปแบบระบบ
( อากาซะกะ1986 ) และแบคทีเรีย ( marnett et al . , 1985 ) ดังนั้น เพื่อลดการเกิดออกซิเดชันและการขยาย

โปรไบโอติกและในระหว่างการเก็บรักษา , การปรากฏตัวของสารต้านอนุมูลอิสระในการรวมกันกับกระเป๋าภายใต้สุญญากาศด้วย

กิจกรรมควบคุมน้ำควรมีประสิทธิภาพ ( TEIXEIRA malcata คาสโตร , , , & Kirby , 1995b ) .
วิธีการต่าง ๆ ได้พยายามลด
ปริมาณออกซิเจนในบรรจุภัณฑ์และการเก็บรักษาของอาหารโปรไบโอติก
เหล่านี้รวมถึงบรรจุภัณฑ์สูญญากาศโดยใช้วัสดุบรรจุภัณฑ์
ที่มีการซึมผ่านของออกซิเจนต่ำ การเพิ่มสารต้านอนุมูลอิสระและจับออกซิเจน
กับผลิตภัณฑ์ และการควบคุมกระบวนการผลิต
ในทางที่ผิด เช่น ออกซิเจนที่ป้อนลงในผลิตภัณฑ์สุด
( เดฟ& Shah , 1997b ; korbekandi et al . 2554 ;
talwalkar kailasapathy มิลเลอร์ , ,& Nguyen , 2004 ) สารต้านอนุมูลอิสระ
สารประกอบเช่น catechins สามารถใช้เพื่อ จำกัด ลบผลการออกซิเจนในการเจริญเติบโตของแบคทีเรียในระหว่าง
และการเก็บรักษาผลิตภัณฑ์อาหาร ( gaudreau et al . , 2013 ) ผู้เขียน
วัดผลของระดับความเข้มข้นของ ( ) - catechin gallate
, ชาเขียวและสารสกัดจากชาเขียว จีที )
ต่อการเจริญเติบโตของเชื้อโปรไบโอติกด้วยออกซิเจนความไวแตกต่างกัน ผลลัพธ์ที่ได้ พบว่า สื่อเสริม

กับ catechins ไม่ได้กระตุ้นการเจริญเติบโตของทั้งสอง
Bifidobacteria . อย่างไรก็ตาม การเติบโตของ L .
helveticus ยิ่งเพิ่มขึ้น ภายใต้สภาวะแอโรบิก โดยการเสริม
กลางกับ GTE . ผลที่คล้ายกันได้รับจากป้อมปราการ
ของวิตามินอีในการเป็นสารต้านอนุมูลอิสระที่เมทริกซ์การปรับปรุงเสถียรภาพของ
L . casei 431 ในระหว่างระยะเวลาที่เก็บหา
20 สัปดาห์ที่ 25 ° C ( บ่น&ดาส
, 2013 )