For isolation of Salmonella spp., 25 g of each sample was
homogenized in 225 ml of lactose broth and incubated at
37 C overnight. One milliliter of this pre-enrichment culture
was inoculated into tubes containing 10 ml tetrathionate
(TT) broth (Oxoid, CM0029) for enrichment, and
incubated 24 h at 37 C. Bacteria growing in TT broth were
streaked on xylose lysine desoxycholate (XLD) agar
(Oxoid, CM0469) and MacConkey agar (Oxoid, CM0007)
and incubated at 37 C overnight. The plates were examined
for the presence of typical colonies of Salmonella, i.e. pink
colonies with or without black centres on XLD agar and
colourless colonies on MacConkey agar. Presumptive Salmonella
colonies were then subjected to initial screening
tests using triple sugar iron agar, lysine iron agar (Merck,
1.11640.0500), urea broth (Merck, 1.08483.0500) and lysine
decarboxylase broth (Oxoid, CM308). All biochemical tests
were performed at 37 C for 18–24 h . Presumptive positive colonies were subjected
to Poly O (Denka Seiken, Tokyo, Japan) and Poly H (Denka
Seiken) slide agglutination tests. Salmonella serotyping
was performed according to the Kauffmann–White scheme at Enteric Pathogens Reference Laboratory
of Refik Saydam National Hygiene Center, Ankara,
Turkey.
For isolation of Salmonella spp., 25 g of each sample washomogenized in 225 ml of lactose broth and incubated at37 C overnight. One milliliter of this pre-enrichment culturewas inoculated into tubes containing 10 ml tetrathionate(TT) broth (Oxoid, CM0029) for enrichment, andincubated 24 h at 37 C. Bacteria growing in TT broth werestreaked on xylose lysine desoxycholate (XLD) agar(Oxoid, CM0469) and MacConkey agar (Oxoid, CM0007)and incubated at 37 C overnight. The plates were examinedfor the presence of typical colonies of Salmonella, i.e. pinkcolonies with or without black centres on XLD agar andcolourless colonies on MacConkey agar. Presumptive Salmonellacolonies were then subjected to initial screeningtests using triple sugar iron agar, lysine iron agar (Merck,1.11640.0500), urea broth (Merck, 1.08483.0500) and lysinedecarboxylase broth (Oxoid, CM308). All biochemical testswere performed at 37 C for 18–24 h . Presumptive positive colonies were subjectedto Poly O (Denka Seiken, Tokyo, Japan) and Poly H (DenkaSeiken) slide agglutination tests. Salmonella serotypingwas performed according to the Kauffmann–White scheme at Enteric Pathogens Reference Laboratoryof Refik Saydam National Hygiene Center, Ankara,Turkey.
การแปล กรุณารอสักครู่..

สำหรับการแยกเชื้อ Salmonella spp . , 25 กรัมแต่ละตัวอย่างโฮโม 225 มิลลิลิตรและแลคโตสใน broth บ่มที่37 องศาเซลเซียส ในชั่วข้ามคืน หนึ่งมิลลิลิตรนี้ก่อนเสริมวัฒนธรรมเป็นเชื้อลงในหลอดที่มีเตตราไทโอเนต 10 มล.( TT ) ( oxoid ซุป , และ cm0029 ) บำรุงบ่มที่ 37 องศาเซลเซียส 24 ชั่วโมง แบคทีเรียในน้ำซุป TT คือลายบน desoxycholate ไซโลส ไลซีน ( xld ) วุ้น( oxoid cm0469 , ) และ Lynx ( oxoid cm0007 , )บ่มที่ 37 องศาเซลเซียส ในชั่วข้ามคืน แผ่นทดสอบสำหรับการปรากฏตัวของโคโลนีของเชื้อ Salmonella โดยทั่วไป คือ สีชมพูอาณานิคมที่มีหรือไม่มีศูนย์ดำ xld วุ้นและอาณานิคมสีใน Lynx . ความเป็นไปได้ ซัลโมเนลลาอาณานิคม จึงต้องตรวจคัดกรองเบื้องต้นการทดสอบการใช้น้ำตาลสามเหล็กวุ้น agar ( Merck , ชุดเหล็ก1.11640.0500 ) , ซุปยูเรีย ( เมอร์ค 1.08483.0500 , ) และไลซีนดีคาร์บอกซิเลส ( oxoid cm308 , น้ำซุป ) การทดสอบทางชีวเคมีทั้งหมดจำนวน 37 C 18 – 24 H . อาณานิคมถูกบวกความเป็นไปได้กับพอลิโอ ( ญี่ปุ่นเด็นกะเซย์เค็น , โตเกียว , ) และโพลี H ( เดนก้าเซย์เค็น ) มูลนิธิเพื่อเด็กพิการ สไลด์ การสำรวจเชื้อได้ดำเนินการตามโครงการที่กาตาร์ คอฟฟ์แมนน์–สีขาวห้องปฏิบัติการอ้างอิงของ refik saydam แห่งชาติสุขอนามัย เซ็นเตอร์ , อังการาตุรกี
การแปล กรุณารอสักครู่..
