Cyanide production was assessed on

Cyanide production was assessed on YEMA medium supplemented with glycine and inverted with filter paper impregnated with picric acid and sodium carbonate placed in the lid of each Petri plate.Change in colour after incubation from yellow to light brown or reddish brown indicated HCN production (Plate 1). Out of 20 soil and chickpea nodule isolates along with reference Mesorhizobium spp. LGR 33 tested, 33% isolates were found positive for HCN production (Table 2). Siderophore production was tested by streaking soil and chickpea nodule isolates on CAS agar medium. Appearance of clear halo zones around the colony due to chelation of iron bound to CAS dye indicated the production of siderophore zone after 48 h of incubation (Plate 2). Out of 20 isolates of soil and chickpea nodules including LGR 33 (reference), 43% were able to produce siderophores (Table 2). Out of 20 isolates of soil and chickpea nodules 57% (12) were able to produce protease on skim milk agar and 62% (13) were able to produce cellulase on CMC agar media (Table 2).
The antagonistic e

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ผลิตไซยาไนด์ถูกประเมินบนกลาง YEMA เสริมกับ glycine และกลับ ด้วยกระดาษกรอง impregnated กับกรด picric และโซเดียมคาร์บอเนตที่อยู่ในฝาของแต่ละจาน Petri เปลี่ยนสีหลังจากบ่มจากเหลืองเป็นน้ำตาลอ่อนหรือน้ำตาลน้ำตาลระบุผลิต HCN (1 แผ่น) ดินและแกงถั่วเขียว 20 อิทธิพลแยกพร้อมกับอ้างอิง Mesorhizobium ทดสอบโอ LGR 33, 33% แยกพบบวก HCN ผลิต (ตารางที่ 2) ทดสอบผลิต Siderophore โดย streaking ดิน และอิทธิพลแกงถั่วเขียวแยกใน CAS ปานกลาง agar ลักษณะโซน halo ใสรอบโคโลนีจาก chelation เหล็กกับ CAS ย้อมระบุผลิต siderophore โซนหลัง 48 h ของคณะทันตแพทยศาสตร์ (2 แผ่น) จาก 20 แยกของดินและแกงถั่วเขียว nodules รวม 33 LGR (อ้างอิง), 43% ก็สามารถสร้าง siderophores (ตาราง 2) จากแยก nodules ดินและแกงถั่วเขียว 20 57% (12) ได้สามารถผลิตรติเอสบนนม skim agar และ 62% (13) ได้สามารถผลิต cellulase CMC agar สื่อ (ตาราง 2)อีต่อต้าน

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การผลิตไซยาไนด์ได้รับการประเมินในสื่อ YEMA เสริมด้วย glycine และกลับด้วยกระดาษกรองชุบด้วยกรด picric และโซเดียมคาร์บอเนตอยู่ในฝาของแต่ละโล plate.Change สีหลังจากบ่มจากสีเหลืองเป็นสีน้ำตาลหรือสีแดงแสงระบุผลิต HCN (1 แผ่น ) ออกจากดินและ 20 ปมถั่วเขียวแยกพร้อมกับ Mesorhizobium อ้างอิงเอสพีพี LGR 33 การทดสอบ 33% พบว่ามีสายพันธุ์ที่ดีสำหรับการผลิต HCN (ตารางที่ 2) การผลิต siderophore ได้รับการทดสอบโดยพุ่งดินและก้อนกลมถั่วเขียวแยกใน CAS กลางวุ้น การปรากฏตัวของโซนรัศมีที่ชัดเจนรอบอาณานิคมเนื่องจากยาขับเหล็กผูกไว้กับสีย้อม CAS ชี้ให้เห็นการผลิตของโซน siderophore หลังจาก 48 ชั่วโมงของการบ่ม (จาน 2) ออกจาก 20 สายพันธุ์ของดินและก้อนถั่วเขียวรวมทั้ง LGR 33 (อ้างอิง), 43% มีความสามารถในการผลิต siderophores (ตารางที่ 2) ออกจาก 20 สายพันธุ์ของดินและก้อนถั่วเขียว 57% (12) มีความสามารถในการผลิตโปรติเอสบนวุ้นนมพร่องมันเนยและ 62% (13) มีความสามารถในการผลิตเซลลูเลสในสื่อวุ้น CMC (ตารางที่ 2).
อีปฏิปักษ์

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การผลิตไซยาไนด์ถูกประเมินบนอาหารสูตร MS ที่เสริมด้วย yema ไกลซีนและคว่ำด้วยกระดาษกรองชุบด้วยกรดพิคริกและโซเดียมคาร์บอเนตอยู่ในฝาของแต่ละจาน Petri เปลี่ยนสี หลังจากบ่มจากสีเหลือง น้ำตาลอ่อน หรือสีน้ำตาลแดง พบการผลิตกรดไฮโดรไซยานิก ( 1 จาน ) จาก 20 ดินและถั่วเขียวปมแยกพร้อมกับ mesorhizobium อ้างอิง spp .lgr 33 ทดสอบ 33% สายพันธุ์พบบวกการผลิตกรดไฮโดรไซยานิก ( ตารางที่ 2 ) การผลิตชุดทดสอบด้วย streaking ดินและเชื้อบนอาหารวุ้นถั่วเขียวปม CAS ) การปรากฏตัวของโซนรัศมีใสรอบโคโลนีเนื่องจาก chelation เหล็กผูก CAS ย้อมพบผลิตไซเดอโรฟอร์ โซนหลัง 48 h 1 ( แผ่น 2 )จาก 20 ไอโซเลตของดินและ nodules ถั่วเขียวรวมทั้ง lgr 33 ( อ้างอิง ) 43 % สามารถผลิตไซเดอโรฟอร์ ( ตารางที่ 2 ) จาก 20 ไอโซเลตของดินและถั่วเขียว nodules 57% ( 12 ) สามารถผลิตเอนไซม์โปรติเอสบนหางวุ้นนม และร้อยละ 62 ( 13 ) สามารถผลิตเอนไซม์ในอาหารวุ้น CMC ( ตารางที่ 2 )
e ปฏิปักษ์