2.1.2. Inoculation of mushroomMushr

2.1.2. Inoculation of mushroom
Mushrooms (A. bisporus) were purchased from local supermarket,
and stipes were removed with a stainless steel blade before inoculation.
Each mushroom was spot inoculated on the cap surface by
placing 4 105 L of the three-strain mixture of E. coli O157:H7 using
a micropipette in a laminar flow biological hood (Model MU-425-
600, NuareTM, Plymouth, MN, USA). The inoculated mushrooms
with the caps facing up were air-dried for 1 h in the hood before H2O2
treatment and UV-C irradiation.
2.1.3. UV-C/H2O2 treatment
Four inoculated mushrooms were dipped in water (CK) or 3%
H2O2 in a 2 L beaker for 30 s at ambient temperature (w23 C) and
with gentle agitation, and were then treated with or without UV-C.
UV-C irradiator containing four 0.61-m UV-C emitting bulbs
(SaniLIGHT, Atlantic Ultraviolet, White Plains, NY, USA) was used,
and irradiation was carried out with the mushroom caps facing the
UV-C lamp (about 0.20 m, 30 W m2
) for 15 s (0.45 kJ m2
). The
UV-C dose rate was determined by UVX Digital Radiometer (Serial
No. E28298, UVP, Inc., Upland, CA, USA). The tests were repeated 4
times.
2.1.4. Microbial analysis
Determination of E. coli O157:H7 population was carried out as
described by Guan et al. (2012). Four mushrooms was blended with
0.08 L 1 g L1 sterile peptone water in stomacher bags and
massaged at the inoculated cap surface by hand for 1 min. Serial
dilutions were prepared in 9 mL 1 g L1 PW. From each dilution,
1 104 L aliquots were withdrawn and surface-plated onto
Sorbitol-MacConkey Agar (SMAC, BD, Sparks, MD, USA) plates, and
the SMAC plates were incubated at 37 C for 24 h, and typical
colonies of E. coli O157:H7 were counted. All microbial counts were
reported as CFU g1
values.
2.2. Effect of UV-C/H2O2 on quality
2.2.1. Preparation of mushroom
Mushrooms were obtained from Phillips Mushroom Farms
(Kennett Square, PA, USA). Immediately after harvest, the mushrooms
were transported to a produce processing laboratory at
USDA, ARS, ERRC, where they were stored at 4 C for no more than
2 d before treatments. Mushrooms without obvious bruising or
other damage and with cap sizes of 4e5 cm (in diameter) were
chosen and treated at ambient temperatures (w23 C).
2.2.2. H2O2 and UV-C treatment
Ten mushrooms were dipped for 30 s in distilled water or 3%
(W/V) H2O2, and were then drained by a stainless steel mesh
strainer (NORPRO, Everett, WA, USA) and directly packaged or
treated by 0.45 kJ m2 UV-C irradiation applied to both sides of
mushrooms (H2O2 þ UV). The UV-C dose (0.45 kJ m2
) was
selected based on our preliminary experiments that doses higher
than 0.45 kJ m2 did not further increase the reduction of E. coli
inoculated on the surface of mushrooms (Guan et al., 2012). The
treated mushrooms were placed into a rigid plastic container
(ClearPAC, C24DER, 24OZ, Dart Container Corp., Mason, MI, USA)
with a lid (C32DLR) perforated with 4 holes (6 104 m in dia.). The
packaged mushrooms were then stored at 4 C until analysis. At 1, 7,
14 d of storage, color, microbial population, presence of lesions, and
nutritional properties of mushroom were measured. For preparing
samples for the analysis of total phenolics and ascorbic acid, 6
mushrooms from each replicate were cut into thin slices (w0.2 cm
in thickness) and mixed thoroughly. And then aliquots (0.025 kg) of
mushroom slices were frozen in liquid nitrogen and stored
at 80 C prior to extraction and determination of nutritional
properties. Each treatment was conducted independently 4 times
(n ¼ 4) on the same day.
2.2.3. Analysis of total microbial loads
Four mushrooms were transferred to sterile stomacher bags
with1 g L1 sterile PW equal to sample weight. After massaged by
hand for 1 min, serial dilutions were prepared in 9 mL 1 g L1 PW.
W. Gua

2.1.2. Inoculation of mushroom
Mushrooms (A. bisporus) were purchased from local supermarket,
and stipes were removed with a stainless steel blade before inoculation.
Each mushroom was spot inoculated on the cap surface by
placing 4  105 L of the three-strain mixture of E. coli O157:H7 using
a micropipette in a laminar flow biological hood (Model MU-425-
600, NuareTM, Plymouth, MN, USA). The inoculated mushrooms
with the caps facing up were air-dried for 1 h in the hood before H2O2
treatment and UV-C irradiation.
2.1.3. UV-C/H2O2 treatment
Four inoculated mushrooms were dipped in water (CK) or 3%
H2O2 in a 2 L beaker for 30 s at ambient temperature (w23 C) and
with gentle agitation, and were then treated with or without UV-C.
UV-C irradiator containing four 0.61-m UV-C emitting bulbs
(SaniLIGHT, Atlantic Ultraviolet, White Plains, NY, USA) was used,
and irradiation was carried out with the mushroom caps facing the
UV-C lamp (about 0.20 m, 30 W m2
) for 15 s (0.45 kJ m2
). The
UV-C dose rate was determined by UVX Digital Radiometer (Serial
No. E28298, UVP, Inc., Upland, CA, USA). The tests were repeated 4
times.
2.1.4. Microbial analysis
Determination of E. coli O157:H7 population was carried out as
described by Guan et al. (2012). Four mushrooms was blended with
0.08 L 1 g L1 sterile peptone water in stomacher bags and
massaged at the inoculated cap surface by hand for 1 min. Serial
dilutions were prepared in 9 mL 1 g L1 PW. From each dilution,
1  104 L aliquots were withdrawn and surface-plated onto
Sorbitol-MacConkey Agar (SMAC, BD, Sparks, MD, USA) plates, and
the SMAC plates were incubated at 37 C for 24 h, and typical
colonies of E. coli O157:H7 were counted. All microbial counts were
reported as CFU g1
values.
2.2. Effect of UV-C/H2O2 on quality
2.2.1. Preparation of mushroom
Mushrooms were obtained from Phillips Mushroom Farms
(Kennett Square, PA, USA). Immediately after harvest, the mushrooms
were transported to a produce processing laboratory at
USDA, ARS, ERRC, where they were stored at 4 C for no more than
2 d before treatments. Mushrooms without obvious bruising or
other damage and with cap sizes of 4e5 cm (in diameter) were
chosen and treated at ambient temperatures (w23 C).
2.2.2. H2O2 and UV-C treatment
Ten mushrooms were dipped for 30 s in distilled water or 3%
(W/V) H2O2, and were then drained by a stainless steel mesh
strainer (NORPRO, Everett, WA, USA) and directly packaged or
treated by 0.45 kJ m2 UV-C irradiation applied to both sides of
mushrooms (H2O2 þ UV). The UV-C dose (0.45 kJ m2
) was
selected based on our preliminary experiments that doses higher
than 0.45 kJ m2 did not further increase the reduction of E. coli
inoculated on the surface of mushrooms (Guan et al., 2012). The
treated mushrooms were placed into a rigid plastic container
(ClearPAC, C24DER, 24OZ, Dart Container Corp., Mason, MI, USA)
with a lid (C32DLR) perforated with 4 holes (6  104 m in dia.). The
packaged mushrooms were then stored at 4 C until analysis. At 1, 7,
14 d of storage, color, microbial population, presence of lesions, and
nutritional properties of mushroom were measured. For preparing
samples for the analysis of total phenolics and ascorbic acid, 6
mushrooms from each replicate were cut into thin slices (w0.2 cm
in thickness) and mixed thoroughly. And then aliquots (0.025 kg) of
mushroom slices were frozen in liquid nitrogen and stored
at 80 C prior to extraction and determination of nutritional
properties. Each treatment was conducted independently 4 times
(n ¼ 4) on the same day.
2.2.3. Analysis of total microbial loads
Four mushrooms were transferred to sterile stomacher bags
with1 g L1 sterile PW equal to sample weight. After massaged by
hand for 1 min, serial dilutions were prepared in 9 mL 1 g L1 PW.
W. Gua

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

2.1.2. กักบริเวณของเห็ดเห็ด (A. bisporus) ซื้อจากซูเปอร์มาร์เก็ตท้องถิ่นและ stipes ถูกลบออก ด้วยใบมีดสแตนเลสก่อนกักบริเวณเห็ดแต่ละถูกจุด inoculated บนผิวหมวกวาง 4 10 5 L ของผสมสามสายพันธุ์ของ E. coli โดยใช้ O157:H7micropipette ในเชื้อชีวภาพฮูด (รุ่น MU - 425-600, NuareTM พลีมัท MN สหรัฐอเมริกา) เห็ด inoculatedมีหมวกหงายถูก air-dried สำหรับ h 1 ในฮูดก่อน H2O2บำบัดและการฉายรังสี UV-C2.1.3. UV-C/H2O2 รักษาเห็ด inoculated สี่ถูกจุ่มลงในน้ำ (CK) หรือ 3%H2O2 ในบีกเกอร์ 2 L 30 s ที่อุณหภูมิ (w23 C) และมีความปั่นป่วนที่อ่อนโยน และจากนั้นได้รับการรักษา หรือ ไม่ UV-cIrradiator UV-C ที่ประกอบด้วยสี่ 0.61 เมตรยูวีหลอดเปล่งใช้ (SaniLIGHT แอตแลนติกรังสีอัลตราไวโอเลต ไวท์เพลนส์ นิวยอร์ก สหรัฐอเมริกา)และฉายรังสี มีหมวกเห็ดที่หันหน้าไปทางดำเนินการโคมไฟยูวี (ประมาณ 0.20 m, W 30 ม. 2) สำหรับ 15 s (0.45 kJ ม 2). การกำหนดอัตราปริมาณรังสี UV-C โดย UVX เรดิโอมิเตอร์ดิจิตอล (ประจำ555 E28298, UVP, Inc., Upland, CA, USA) การทดสอบมี 4 ซ้ำครั้ง2.1.4. จุลินทรีย์วิเคราะห์การกำหนดประชากร O157:H7 E. coli ได้ดำเนินการเป็นอธิบายโดยกวน et al. (2012) เห็ดสี่ถูกผสมด้วยน้ำหมัน peptone L 1 0.08 L 1 กรัมในกระเป๋าแผงประดับหน้าอก และนวดด้วยมือพื้นผิวฝา inoculated 1 นาทีประจำเจือจางวจัดใน 9 mL 1 g L 1 PW จากแต่ละเจือจาง1 10 4 L aliquots ถูกถอน และพื้นผิวชุบโครเมี่ยมบนจานอาหารเลี้ยงเชื้อ MacConkey ซอร์บิทอล (SMAC, BD ประกายไฟ MD สหรัฐอเมริกา) และแผ่น SMAC ได้รับการกกที่ 37 C สำหรับ 24 ชั่วโมง และทั่วไปอาณานิคมของ E. coli O157:H7 นับ นับจำนวนจุลินทรีย์ทั้งหมดได้รายงานเป็น CFU g 1ค่า2.2. ผลของรังสี UV-C/H2O2 ในคุณภาพ2.2.1. เตรียมของเห็ดได้รับเห็ดจากฟาร์มเห็ดฟิลลิปส์(Kennett สแควร์ PA สหรัฐอเมริกา) ทันทีหลังการเก็บเกี่ยว เห็ดถูกส่งไปห้องปฏิบัติการกระบวนการผลิตที่USDA, ARS, ERRC ที่พวกเขาได้เก็บ 4 c เป็นเวลาไม่เกิน2 d ก่อนรักษา เห็ดไม่ช้ำชัดเจน หรือความเสียหายอื่น ๆ และ มีฝา ขนาด 4e5 ซม. (เส้นผ่านศูนย์กลาง)เลือก และรับการรักษาที่อุณหภูมิ (w23 C)2.2.2. H2O2 และ UV-Cเห็ดสิบถูกจุ่มลง 30 วินาทีในน้ำกลั่นหรือ 3%(W/V) H2O2 แล้วถูกออก โดยแบบตาข่ายเหล็กสแตนเลสกรอง (NORPRO เอเวอเรสต์ WA สหรัฐอเมริกา) และบรรจุภัณฑ์โดยตรง หรือรักษา โดย 0.45 kJ ม 2 ยูวีวิธีการฉายรังสีใช้กับทั้งสองด้านเห็ด (H2O2 þ UV) ปริมาณรังสี UV-C (0.45 kJ ม 2) คือเลือกอิงทดลองเบื้องต้นว่าปริมาณสูงกว่ากว่า 0.45 kJ ม. 2 ไม่การเพิ่มลดของ E. coliinoculated บนผิวของเห็ด (กวน et al. 2012) การรักษาเห็ดที่ถูกวางลงในภาชนะพลาสติกแข็ง(ClearPAC, C24DER, 24 ออนซ์ โผคอนเทนเนอร์ Corp. เมสัน MI สหรัฐอเมริกา)มีฝาปิด (C32DLR) พรุน มี 4 รู (6 10 4 เมตรในเส้นผ่าศูนย์กลาง) การบรรจุเห็ดแล้วถูกเก็บที่ 4 C จนถึงการวิเคราะห์ ที่ 1, 7d 14 ของประชากรจุลินทรีย์ เก็บ สี ของโรค และมีวัดคุณสมบัติทางโภชนาการของเห็ด สำหรับการเตรียมตัวอย่างการวิเคราะห์ phenolics รวมและกรดแอสคอร์บิค 6เห็ดจากจำลองแต่ละแบบถูกตัดเป็นชิ้นบาง ๆ (w0.2 ซม.ความหนา) และผสมอย่าง แล้ว aliquots (0.025 กก.) ของแหล่งถูกแช่แข็งในไนโตรเจนเหลว และเก็บไว้ที่ 80 C ก่อนสกัดและความมุ่งมั่นของโภชนาการที่พักแห่งนี้ ดำเนินการรักษาแต่ละอย่างอิสระ 4 ครั้ง(n ¼ 4) ในวันเดียวกัน2.2.3. การวิเคราะห์ปริมาณจุลินทรีย์ทั้งหมดเห็ดสี่ถูกโอนย้ายไปกระเป๋าแผงประดับหน้าอกเป็นหมันwith1 กรัมเท่ากับน้ำหนักตัวอย่าง PW หมัน L 1 หลังจากนวดด้วยมือ 1 นาที เจือจาง serial วจัดใน 9 mL 1 g L 1 PWGua ฝั่งตะวันตก

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

2.1.2 การฉีดวัคซีนของเห็ด
เห็ด ( A. bisporus) ที่ซื้อมาจากซูเปอร์มาร์เก็ตท้องถิ่น
และ Stipes ถูกลบออกด้วยใบมีดสแตนเลสก่อนที่จะฉีดวัคซีน.
เห็ดแต่ละเชื้อจุดบนพื้นผิวฝาครอบโดย
วาง 4? 10 5 ลิตรผสมสามสายพันธุ์ของเชื้อ E. coli O157: H7 ใช้
micropipette ในเครื่องดูดควันไหลทางชีวภาพ (รุ่น MU-425-
600, NuareTM พลีมั ธ , MN, USA) เห็ดเชื้อ
กับหมวกหันขึ้นถูกอากาศแห้งเป็นเวลา 1 ชั่วโมงในเครื่องดูดควันก่อน H2O2
รักษาและการฉายรังสี UV-C.
2.1.3 UV-C / รักษา H2O2
สี่เห็ดเชื้อถูกจุ่มลงในน้ำ (CK) หรือ 3%
H2O2 ในบีกเกอร์ 2 ลิตรเป็นเวลา 30 วินาทีที่อุณหภูมิห้อง (w23 C) และ
มีการกวนอ่อนโยนและได้รับการรักษาแล้วมีหรือไม่มีรังสี UV-C .
UV-C เครื่องฉายรังสีที่มีสี่ 0.61 เมตร UV-C หลอดเปล่งแสง
(SaniLIGHT ?, แอตแลนติกอัลตราไวโอเลต, White Plains, นิวยอร์ก, สหรัฐอเมริกา) ถูกนำมาใช้
และการฉายรังสีได้รับการดำเนินการที่มีหมวกเห็ดหันหน้าไปทาง
หลอด UV-C (ประมาณ 0.20 M 30 W M? 2
) เป็นเวลา 15 วินาที (0.45 กิโลจูล M? 2
)
อัตราปริมาณรังสี UV-C ถูกกำหนดโดย UVX ดิจิตอล Radiometer (อนุกรม
เลข E28298, UVP, Inc ดอน, CA, USA) การทดสอบซ้ำ 4
ครั้ง.
2.1.4 การวิเคราะห์จุลินทรีย์
ความมุ่งมั่นของเชื้อ E. coli O157: H7 ประชากรได้ดำเนินการตามที่
อธิบายโดยกวน, et al (2012) สี่เห็ดได้รับการผสมกับ
0.08 L 1 กรัม L? 1 น้ำหมันเปปโตนในถุง Stomacher และ
นวดที่พื้นผิวฝาเชื้อด้วยมือเป็นเวลา 1 นาที อนุกรม
เจือจางได้จัดทำขึ้น 9 มิลลิลิตร 1 กรัม L? 1 PW จากแต่ละเจือจาง
1? 10? 4 aliquots L ถูกถอนออกและพื้นผิวเคลือบลงบน
ซอร์บิทอ-MacConkey วุ้น (SMAC, BD, ประกายไฟ, MD, USA) แผ่นและ
แผ่น SMAC ถูกบ่มที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมงและทั่วไป
อาณานิคมของเชื้อ E. coli O157 : H7 นับ นับจุลินทรีย์ทั้งหมดถูก
รายงานว่าเป็นโคโลนีต่อกรัม 1
ค่า.
2.2 ผลของรังสี UV-C / H2O2 กับคุณภาพ
2.2.1 เตรียมความพร้อมของเห็ด
เห็ดที่ได้รับจากฟิลลิปเห็ดฟาร์ม
(เคนเนตต์สแควร์, PA, สหรัฐอเมริกา) ทันทีหลังการเก็บเกี่ยวเห็ด
ถูกส่งไปยังห้องปฏิบัติการประมวลผลการผลิตที่
USDA, ARS, ERRC ที่พวกเขาถูกเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียสเป็นเวลาไม่เกิน
2 D ก่อนการรักษา เห็ดโดยไม่ต้องช้ำที่เห็นได้ชัดหรือ
ความเสียหายอื่น ๆ และมีขนาดของหมวก 4e5 ซม. (เส้นผ่าศูนย์กลาง) ได้รับ
เลือกและรับการรักษาที่อุณหภูมิห้อง (w23 C).
2.2.2 H2O2 และ UV-C รักษา
สิบเห็ดถูกจุ่มลงเป็นเวลา 30 วินาทีในน้ำกลั่นหรือ 3%
(w / v) H2O2 และได้รับการระบายน้ำแล้วโดยสแตนเลสตาข่าย
กรอง (Norpro ใน Everett, WA, USA) โดยตรงและบรรจุหรือ
ได้รับการรักษา โดย 0.45 กิโลจูล M? 2 UV-C ฉายรังสีนำไปใช้กับทั้งสองด้านของ
เห็ด (H2O2 Þ UV) รังสียูวี-C ยา (0.45 กิโลจูล M? 2
) ได้รับ
เลือกขึ้นอยู่กับการทดลองเบื้องต้นของเราที่ปริมาณที่สูงขึ้น
กว่า 0.45 กิโลจูล M? 2 ไม่ได้เพิ่มขึ้นต่อการลดลงของอีคอไล
เชื้อบนพื้นผิวของเห็ด (Guan et al., 2012)
เห็ดได้รับการรักษาที่ถูกวางไว้ในภาชนะพลาสติกแข็ง
(ClearPAC, C24DER, 24oz, โผคอนเทนเนอร์คอร์ป, เมสัน, MI, USA)
ที่มีฝาปิด (C32DLR) พรุนมี 4 หลุม (6? 10? 4 เมตรใน Dia.)
เห็ดบรรจุถูกเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสจนการวิเคราะห์ ณ วันที่ 1, 7,
14 D ของการจัดเก็บสีประชากรจุลินทรีย์การปรากฏตัวของแผลและ
คุณสมบัติทางโภชนาการของเห็ดถูกวัด สำหรับการเตรียมความพร้อม
ตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์ของฟีนอลรวมและวิตามินซี, 6
เห็ดจากแต่ละซ้ำถูกตัดเป็นชิ้นบาง ๆ (w0.2 ซม.
ความหนา) และผสม แล้ว aliquots (0.025 กิโลกรัม)
ชิ้นเห็ดถูกแช่แข็งในไนโตรเจนเหลวและเก็บไว้
ที่? 80 C ก่อนที่จะมีการสกัดและการกำหนดโภชนาการ
คุณสมบัติ การรักษาแต่ละครั้งได้ดำเนินการอย่างเป็นอิสระ 4 ครั้ง
(n ¼ 4) ในวันเดียวกัน.
2.2.3 การวิเคราะห์การโหลดจุลินทรีย์รวม
สี่เห็ดถูกโอนไปยังถุง Stomacher หมัน
with1 กรัม L? 1 หมัน PW เท่ากับน้ำหนักตัวอย่าง หลังจากนวดโดย
มือ 1 นาที, เจือจางอนุกรมได้จัดทำขึ้น 9 มิลลิลิตร 1 กรัม L? 1 PW.
ดับบลิว Gua

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.