There are no universal conditions for extracting tannins from
vegetable sources [16]. The yield and the composition of extracts
depends on the source, type of solvent, extraction time, temperature,
solid-liquid ratio, and preparation of the sample, which is
commonly milled, used in fresh, frozen or dried state. The
extraction procedure should be optimized in a case-specific basis.
The polar nature of water makes it possible for use as an
extraction solvent for many compounds [28]. The traditional
industrial method for tannin extraction from vegetable matter is
exactly based on hot/boiling water, with temperatures ranging
from 50 to 110 C, using autoclaves working in counter-current,
contact times of several hours (6–10 h) and water/wood ratios
equal to 2–2.4 in mass. Tannins are then concentrated, by
evaporation under vacuum, to limit the oxidation [16,29].
Extraction procedures commonly followed by researchers to
obtain tannins for subsequent production of TBAs have been
centered on the use of alkaline solutions, containing sodium
hydroxide. NaOH solutions were found to increase the from Pinus
pinaster bark by 2.5–6 times, in comparison to water [30]. The optimum
conditions to extract the highest formaldehyde-condensable
polyphenols content from Pinus pinaster bark were found to be: 5%
NaOH (of bark weight), solid/liquid ratio of 1/6 and temperature of
90 C [30]. These conditions have been also used to extract tannins
from other sources, such as from C. sempervivens (Cypress) bark
and Acacia nilotica leaves [31,32]. Alkaline solutions containing
sodium sulphite have been also used as extraction solvent. In the
case of solid wastes from chestnut industry processing, solutions
at 1% Na2SO3 were recommended to favor the extraction of
condensed tannins, whilst hydrolysable tannins were extracted
efficiently using 1% NaOH [33].
The extraction efficiency can be also improved by organic solvents,
such as ethanol, methanol, acetone and hexane [34–37]. It
is however important to consider the principles of green
extractions and one of them advocates for the ‘‘use of alternative
solvents and principally water or agro-solvents” [28]. The use of
petrochemical solvents should be avoided, considering the related
negative environmental effects, flammability and toxicity risks. In
the last years, new extraction methods have been also developed,
such as microwave-assisted extraction (MAE), ultrasoundassisted
extraction (UAE) and pressurized liquid extraction (PLE),
which can bring important improvements for the extraction of
these bio-compounds [16]. Among the various methods that can
be found in literature, a simple and eco-friendly procedure should
be selected to extract tannins for biosorbents production. For this
kind of application, tannins do not require a high purity degree
and do not need a thorough extraction process. Sugar, organic acids
or other plant components are known to occur as impurities in
tannin extracts [16]. In some cases, the presence of polyphenolic
compounds, other than tannins, can even improve the adsorption
ability, as suggested by the results of Palma et al. [9]. At the same
time, selecting a simple process for extraction and subsequent
procedures, a low final cost is assured.
ไม่มีสากลเงื่อนไขสำหรับการสกัดแทนนินจากผักแหล่ง [ 16 ] ผลผลิตและองค์ประกอบของสารสกัดขึ้นอยู่กับแหล่งที่มา , ชนิดของตัวทำละลาย เวลา การสกัดที่อุณหภูมิอัตราส่วน ของแข็งกับของเหลว และการเตรียมการของกลุ่มตัวอย่างซึ่งเป็นโดยทั่วไปสำหรับใช้ในสดแช่แข็งหรือสภาพแห้ง ที่ขั้นตอนการสกัดควรเหมาะในกรณีพื้นฐานที่เฉพาะเจาะจงลักษณะขั้วของน้ำทำให้มันเป็นไปได้สำหรับการใช้เป็นการสกัดด้วยตัวทำละลายหลายสาร [ 28 ] แบบดั้งเดิมวิธีการอุตสาหกรรมการสกัดสารแทนนินจากเรื่องผักนี่ตรงตาม ร้อนเดือด มีอุณหภูมิตั้งแต่จาก 50 ถึง 110 C ใช้ autoclaves ทำงานปัจจุบันนับเวลาติดต่อหลายชั่วโมง ( 6 - 10 ชั่วโมง ) และอัตราส่วนน้ำต่อไม้เท่ากับ 2 – 2.4 ในมวล แทนนินจะเข้มข้น โดยระเหยภายใต้สุญญากาศ เพื่อ จำกัด การออกซิเดชัน [ 16,29 ]ขั้นตอนการสกัดมักตามมาด้วย นักวิจัยขอรับแทนนินเพื่อการผลิต tbas ตามมาได้เป็นศูนย์กลางในการใช้โซลูชั่นของอัลคาไลน์ที่มีโซเดียมไฮดรอกไซด์ การใช้โซลูชั่น พบว่า เพิ่มจากสนเห่า pinaster โดย 2.5 – 6 ครั้ง ในการเปรียบเทียบกับน้ำ [ 30 ] ที่เหมาะสมเงื่อนไขการใช้สารสกัดย่อที่สุดโพลีฟีนอลจากเปลือกสน pinaster เนื้อหา พบว่ามี 5 %NaOH ( ของน้ำหนักเปลือก ) , อัตราส่วน ของแข็ง / ของเหลว 1 / 6 และอุณหภูมิของ90 C [ 30 ] เงื่อนไขเหล่านี้มีการใช้สารสกัดแทนนินจากแหล่งอื่น เช่น จาก C sempervivens ( Cypress ) เปลือกและกระถินด้วยใบ [ 31,32 ] สารละลายด่างโซเดียมซัลไฟท์ได้รับยังใช้เป็นตัวทำละลายในการสกัด ในกรณีของขยะจากอุตสาหกรรมแปรรูปเกาลัด โซลูชั่นที่ 1% Na2S แนะนำเพื่อประโยชน์ของการสกัดคอนเดนซ์แทนนิน ขณะ hydrolysable แทนนินสกัดได้อย่างมีประสิทธิภาพโดยใช้ 1% NaOH [ 33 ]นอกจากนี้ยังสามารถปรับปรุงประสิทธิภาพการสกัดด้วยตัวทำละลายอินทรีย์เช่น เอทานอล เมทานอล และไอเฮกเซน 34 ) [ 37 ] มันแต่ที่สำคัญคือการพิจารณาหลักการของสีเขียวการสกัดและหนึ่งของพวกเขา สนับสนุน สำหรับ " " ใช้พลังงานทางเลือกสารละลายและน้ำหรือตัวทำละลายอย่าง " เกษตร [ 28 ] ใช้ของสารละลายปิโตรเคมี ควรหลีกเลี่ยงการพิจารณาที่เกี่ยวข้องผลกระทบด้านสิ่งแวดล้อมที่เป็นลบ และความเป็นพิษความเสี่ยง ในปีล่าสุด , การสกัดด้วยวิธีใหม่ได้ถูกพัฒนาขึ้นด้วยเช่น microwave-assisted การสกัด ( แม่ฮ่องสอน ) ultrasoundassistedการสกัด ( UAE ) และของเหลวที่มีแรงดันการสกัด ( เปิ้ล )ซึ่งสามารถนำการปรับปรุงที่สำคัญในการสกัดเหล่านี้สารชีวภาพ [ 16 ] ในบรรดาวิธีการต่างๆที่สามารถจะพบมากในวรรณคดี เรียบง่าย และเป็นมิตรกับสิ่งแวดล้อม ขั้นตอนควรถูกเลือกเพื่อสกัดแทนนินสำหรับการผลิต biosorbents . สำหรับนี้ชนิดของโปรแกรมประยุกต์ แทนนินไม่ต้องระดับความบริสุทธิ์สูงและไม่ต้องมีกระบวนการอย่างละเอียด น้ำตาล กรดอินทรีย์หรือส่วนประกอบของพืชอื่น ๆเป็นที่รู้จักกันจะเกิดขึ้นภายในสารสกัดแทนนิน [ 16 ] ในบางกรณี การปรากฏตัวของฟีนอลสารประกอบอื่นมากกว่าแทนนิน , สามารถปรับปรุงการดูดซับความสามารถ เป็นข้อเสนอแนะจากผลของ Palma et al . [ 9 ] ขณะ เดียวกันเวลา , การเลือกกระบวนการที่ง่ายสำหรับการสกัดและตามมาขั้นตอนสุดท้ายคือ ต้นทุนต่ำ มั่นใจ
การแปล กรุณารอสักครู่..
![](//thimg.ilovetranslation.com/pic/loading_3.gif?v=b9814dd30c1d7c59_8619)