The time course study indicated tha

The time course study indicated that PHB is a growthassociated
product in A. fertilissima, and its accumulation
increased significantly when the culture reached the
exponential phase until the stationary phase. The maximum
value, 6.4% (dcw), was achieved on the 14th day of
cultivation. After 20 days, the decrease in the PHB content
might be due to the mobilization of PHB for cellular metabolism to regain the full capacity of photoautotrophic
growth as a source of carbon storage material (Stal 1992).
A pH of 8.5 and a temperature range of 28–32°C were
found optimum for PHB accumulation.
A. fertilissima is quite flexible in utilizing carbon
sources. Intracellular accumulation of PHB, however,
appeared to be carbon source-specific (Table 2), and
maximum rise, i.e. an ∼6-fold increase in PHB content
(up to 34% dcw), was observed in cultures supplemented
with 3 g L−1 citrate. As observed by Chen et al. (2010), the
addition of citrate decreased the activity of phosphofructokinase
by chelating Mg2+, which blocks the glycolytic
pathway, especially the reaction from fructose-6-phosphate
to fructose-1,6-bisphosphate, thus resulting into the elevated
pool of fructose-6-phosphate. An ultimate rise in glucose-6-
phosphate pool was observed by the conversion of fructose-6-
phosphate to glucose-6-phosphate by isomerase, which led to
the increased activity of 6-phosphoglucose dehydrogenase,
the first enzyme of the pentose phosphate pathway (PPP), thus
facilitating the production of a more reduced cofactor,
NADPH via PPP. NADPH is reported to be a prerequisite
for the activity of the enzyme acetoacetyl-CoA reductase for
conversion of acetoacetyl-CoA to β-hydroxybutyryl-CoA.
Therefore, the increased PHB accumulation following citrate
supplementation could be due to the enhanced availability of
NADPH.
Citrate supplementation was found to inhibit biomass
concentration significantly (Table 2). Contrary to this,
fructose supplementation was stimulatory for biomass
production. By increasing the concentration up to
10 g L−1, growth and PHB production increased up to
2.39 and 0.38 g L−1, respectively, against 0.50 and
0.03 g L−1 in the control culture. A further increase in
fructose concentration inhibited the growth of A. fertilissima.
This might be due to the increased osmotic pressure
at high fructose concentration and the imbalance between
glycolysis and metabolic oxidation in cyanobacterial cells
(Tabandeh and Vasheghani-Farahani 2003). The stimulatory
effect of acetate on PHB accumulation, i.e., 27.1% (dcw)
against 6.4% control, could be due to a direct utilization of
acetate to increase the intracellular acetyl-CoA pool at the
expense of free CoA by means of the usual pathway
operating in cyanobacteria (Gibson 1981; Panda and
Mallick 2007). Glucose utilization in cyanobacteria, however,
occurs via PPP. Thus, the positive effect of glucose on
PHB production could be attributable to the increased
supply of the reduced cofactor, NADPH (Lee et al. 1995).
Similar explanation could also be valid for the increased
PHB contents in fructose-, sucrose-, and maltosesupplemented
cultures. Interestingly, co-feeding A. fertilissima
cultures with 3 g L−1 citrate and 3 g L−1 acetate
stimulated PHB accumulation up to 65.9% (dcw). This
could be explained by the combined effects of the precursor
available in plenty, i.e., acetate, and the cofactor NADPH

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

The time course study indicated that PHB is a growthassociatedproduct in A. fertilissima, and its accumulationincreased significantly when the culture reached theexponential phase until the stationary phase. The maximumvalue, 6.4% (dcw), was achieved on the 14th day ofcultivation. After 20 days, the decrease in the PHB contentmight be due to the mobilization of PHB for cellular metabolism to regain the full capacity of photoautotrophicgrowth as a source of carbon storage material (Stal 1992).A pH of 8.5 and a temperature range of 28–32°C werefound optimum for PHB accumulation.A. fertilissima is quite flexible in utilizing carbonsources. Intracellular accumulation of PHB, however,appeared to be carbon source-specific (Table 2), andmaximum rise, i.e. an ∼6-fold increase in PHB content(up to 34% dcw), was observed in cultures supplementedwith 3 g L−1 citrate. As observed by Chen et al. (2010), theaddition of citrate decreased the activity of phosphofructokinaseby chelating Mg2+, which blocks the glycolyticpathway, especially the reaction from fructose-6-phosphateto fructose-1,6-bisphosphate, thus resulting into the elevatedpool of fructose-6-phosphate. An ultimate rise in glucose-6-phosphate pool was observed by the conversion of fructose-6-phosphate to glucose-6-phosphate by isomerase, which led tothe increased activity of 6-phosphoglucose dehydrogenase,the first enzyme of the pentose phosphate pathway (PPP), thusอำนวยความสะดวกการผลิตของปัจจัยที่ลดลงมากNADPH ผ่าน PPP NADPH เป็นรายงานที่มีข้อกำหนดเบื้องต้นสำหรับกิจกรรมของไซด์ acetoacetyl CoA เอนไซม์สำหรับแปลง acetoacetyl CoA เป็นβ-hydroxybutyryl-CoAดังนั้น เพิ่ม PHB สะสมต่อซิเตรทเสริมอาจเนื่องจากความพร้อมที่เพิ่มขึ้นของNADPHซิเตรทเสริมพบว่ายับยั้งการชีวมวลความเข้มข้นอย่างมีนัยสำคัญ (ตารางที่ 2) ขัดกับนี้เสริมฟรักโทสถูกกระตุ้นสำหรับชีวมวลการผลิต โดยการเพิ่มความเข้มข้นสูงสุด10 g L−1 เจริญเติบโต และ PHB ผลิตเพิ่มขึ้นถึง2.39 และ 0.38 g L−1 ตามลำดับ กับ 0.50 และก. 0.03 L−1 ในการควบคุม เพิ่มเติมในฟรักโทสเข้มข้นยับยั้งการเติบโตของ A. fertilissimaซึ่งอาจเนื่องจากความดันออสโมติกเพิ่มขึ้นที่ความเข้มข้นสูงฟรักโทสและความไม่สมดุลระหว่างglycolysis และเผาผลาญออกซิเดชันในเซลล์ cyanobacterial(ไทยและ 2003 Vasheghani-Farahani) การกระตุ้นผลของอะซิเตทสะสม PHB เช่น 27.1% (dcw)กับการควบคุม 6.4% อาจเกิดจากการใช้ประโยชน์โดยตรงของอะซิเตทเพิ่มสระ acetyl-CoA ภายในเซลล์ค่าใช้จ่ายของ CoA ฟรีโดยทางเดินปกติใน cyanobacteria (กิบสัน 1981 แพนด้า และทาง Mallick ที่ 2007) การใช้กลูโคสใน cyanobacteria อย่างไรก็ตามเกิดขึ้นผ่านทาง PPP ดังนั้น ผลบวกของกลูโคสในการผลิต PHB อาจเป็นการเพิ่มขึ้นsupply of the reduced cofactor, NADPH (Lee et al. 1995).Similar explanation could also be valid for the increasedPHB contents in fructose-, sucrose-, and maltosesupplementedcultures. Interestingly, co-feeding A. fertilissimacultures with 3 g L−1 citrate and 3 g L−1 acetatestimulated PHB accumulation up to 65.9% (dcw). Thiscould be explained by the combined effects of the precursoravailable in plenty, i.e., acetate, and the cofactor NADPH

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

หลักสูตรการศึกษาชี้ให้เห็นว่าเวลา PHB เป็น growthassociated
สินค้าในเอ fertilissima และการสะสมของมัน
เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญเมื่อวัฒนธรรมมาถึง
ขั้นตอนการชี้แจงจนเฟส สูงสุด
มูลค่า 6.4% (DCW) ก็ประสบความสำเร็จในวันที่ 14 ของ
การเพาะปลูก หลังจากวันที่ 20 ลดลงในเนื้อหาของ PHB ที่
อาจเกิดจากการชุมนุมของ PHB สำหรับการเผาผลาญเซลลูลาร์ที่จะฟื้นเต็มความจุของ photoautotrophic
การเจริญเติบโตเป็นแหล่งที่มาของวัสดุจัดเก็บคาร์บอน (Stal 1992).
ค่า pH 8.5 และช่วงที่อุณหภูมิ 28-32 องศาเซลเซียสถูก
พบที่เหมาะสมที่สุดสำหรับการสะสม PHB.
เอ fertilissima ค่อนข้างมีความยืดหยุ่นในการใช้คาร์บอน
แหล่งที่มา สะสมในเซลล์ของ PHB แต่
ดูเหมือนจะเป็นแหล่งคาร์บอนเฉพาะ (ตารางที่ 2) และ
เพิ่มขึ้นสูงสุดคือการเพิ่มขึ้นของ ~6 เท่าในเนื้อหา PHB
(ไม่เกิน 34% DCW) พบว่าในวัฒนธรรมเสริม
ด้วย L 3 กรัม -1 ซิเตรต ในฐานะที่เป็นข้อสังเกตจากเฉิน, et al (2010) ที่
นอกเหนือจากซิเตรตลดลงของกิจกรรม phosphofructokinase
โดยคีเลต Mg2 + ซึ่งบล็อก glycolytic
ทางเดินโดยเฉพาะอย่างยิ่งการเกิดปฏิกิริยาจากฟรุกโตส-6-ฟอสเฟต
เพื่อ fructose-1,6-bisphosphate จึงทำให้เกิดการยกระดับเข้าสู่
สระว่ายน้ำของ fructose- 6 ฟอสเฟต เพิ่มขึ้นสูงสุดในการกลูโคส 6-
สระว่ายน้ำฟอสเฟตได้รับการตรวจสอบโดยการแปลงของฟรุกโตส-6- The
ฟอสเฟตกลูโคส -6- ฟอสเฟตโดย isomerase ซึ่งนำไปสู่
กิจกรรมที่เพิ่มขึ้นของ dehydrogenase 6 phosphoglucose,
เอนไซม์แรกของวิถีเพนโตสฟอสเฟต (PPP) จึง
อำนวยความสะดวกในการผลิตของปัจจัยที่ลดลงมากขึ้น
NADPH ผ่าน PPP NADPH เป็นรายงานที่จำเป็น
สำหรับการทำงานของเอนไซม์ acetoacetyl-CoA reductase สำหรับ
การแปลงของ acetoacetyl-CoA เพื่อเบต้า hydroxybutyryl-CoA.
ดังนั้น PHB สะสมเพิ่มขึ้นต่อไป citrate
เสริมอาจเป็นเพราะความพร้อมที่เพิ่มขึ้นของ
NADPH.
ซิเตรต อาหารเสริมก็พบว่าการยับยั้งชีวมวล
ความเข้มข้นอย่างมีนัยสำคัญ (ตารางที่ 2) ตรงกันข้ามกับนี้
การเสริมฟรุกโตสเป็นกระตุ้นสำหรับพลังงานชีวมวล
ผลิต โดยการเพิ่มความเข้มข้นขึ้นไป
L-1 10 กรัมการเจริญเติบโตและการผลิต PHB เพิ่มขึ้นถึง
L-1 ตามลำดับ, 2.39 และ 0.38 กรัมกับ 0.50 และ
L-1 0.03 กรัมในวัฒนธรรมการควบคุม เพิ่มขึ้นอีกใน
ความเข้มข้นของฟรุกโตสมีฤทธิ์ยับยั้งการเจริญเติบโตของเอ fertilissima ได้.
นี้อาจจะเกิดจากแรงดันที่เพิ่มขึ้น
ที่ระดับความเข้มข้นสูงฟรักโทสและความไม่สมดุลระหว่าง
glycolysis และการเกิดออกซิเดชันการเผาผลาญอาหารในเซลล์ไซยาโนแบคทีเรีย
(Tabandeh และ Vasheghani-Farahani 2003) กระตุ้น
ผลของอะซิเตทต่อการสะสม PHB คือ 27.1% (DCW)
กับการควบคุม 6.4% อาจเกิดจากการใช้ประโยชน์โดยตรงจาก
อะซิเตทเพื่อเพิ่มสระว่ายน้ำ acetyl-CoA เซลล์ที่
ค่าใช้จ่ายของ CoA ฟรีโดยวิธีการของทางเดินปกติ
การดำเนินงานในไซยาโนแบคทีเรีย (กิบสัน 1981; แพนด้าและ
Mallick 2007) การใช้กลูโคสในไซยาโนแบคทีเรีย แต่
เกิดขึ้นผ่านทาง PPP ดังนั้นผลบวกของน้ำตาลกลูโคสใน
การผลิต PHB อาจจะเนื่องมาจากการเพิ่มขึ้น
อุปทานของปัจจัยที่ลดลง NADPH (Lee et al. 1995).
คำอธิบายที่คล้ายกันก็อาจจะถูกต้องสำหรับการเพิ่ม
เนื้อหาใน PHB fructose-, sucrose- และ maltosesupplemented
วัฒนธรรม ที่น่าสนใจร่วมให้อาหารเอ fertilissima
วัฒนธรรมมี 3 G L-1 ซิเตรตและ 3 G L-1 acetate
กระตุ้นการสะสม PHB ถึง 65.9% (DCW) นี้
สามารถอธิบายได้โดยผลรวมของสารตั้งต้น
ที่มีอยู่ในปริมาณมากเช่นอะซิเตทและ NADPH ปัจจัย

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

เวลาที่ศึกษา พบว่า growthassociated PHB คือผลิตภัณฑ์ใน . fertilissima และการสะสมเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญเมื่อวัฒนธรรมถึงเอกซ์โพเนนเชียลเฟสถึงเฟสอยู่กับที่ สูงสุดมูลค่า 6.4 % ( dcw ) อยู่ได้ 14 วันของการเพาะปลูก หลังจาก 20 วัน ลดปริมาณ PHBอาจจะเกิดจากการระดมของ PHB สำหรับเซลล์เพื่อฟื้นจนเต็มความจุของ photoautotrophicการเจริญเติบโต เป็นแหล่งสะสมคาร์บอนของวัสดุ ( เหล็ก 1992 )พีเอช 8.5 และช่วงอุณหภูมิ 28 - 32 องศา C คือเจอที่เหมาะสมสำหรับการสะสม PHB1 . fertilissima มีความยืดหยุ่นมากในการใช้คาร์บอนแหล่งที่มา การสะสมภายในเซลล์ของ PHB อย่างไรก็ตามปรากฏเป็นแหล่งเฉพาะ คาร์บอน ( ตารางที่ 2 ) และเพิ่มขึ้นสูงสุด คือ การ∼ 6 เท่าเป็นเพิ่มปริมาณไนโตรเจน( ถึง 34 % dcw ) พบในวัฒนธรรมอาหารกับ 3 G L − 1 ซิเตรต . เท่าที่สังเกตโดย Chen et al . ( 2010 )นอกจากนี้ลดลงกิจกรรมของ phosphofructokinase ซิเตรตโดย mg2 + ต่ำ ซึ่ง glycolytic บล็อกเส้นทาง โดยเฉพาะปฏิกิริยาจาก fructose-6-phosphateเพื่อ fructose-1,6-bisphosphate จึงส่งผลให้ในระดับต่ำสระว่ายน้ำของ fructose-6-phosphate . การเพิ่มขึ้นสูงสุดใน glucose-6 -พูล ฟอสเฟต สังเกตได้จากการเปลี่ยนแปลงของ fructose-6 -ฟอสเฟตเพื่อ glucose-6-phosphate โดยไอโซเมอเรส ซึ่งนำไปสู่เพิ่มกิจกรรมของ 6-phosphoglucose ดีไฮโดรจีเนสเอนไซม์ของวิถีเพนโตสฟอสเฟต ( PPP ) , จึงการส่งเสริมการผลิตของมากกว่าโคแฟกเตอร์ลดลง ,nadph ผ่าน PPP . nadph รายงานจะต้องเพื่อให้กิจกรรมของ เอนไซม์ acetoacetyl COA เตสสำหรับการแปลง acetoacetyl COA ให้บีตา - hydroxybutyryl COA .ดังนั้น การเพิ่มการสะสม PHB ต่อไปนี้ซิเตรทอาหารเสริม อาจจะเนื่องจากการเพิ่มความพร้อมของnadph .ซิเตรตเสริมพบว่ายับยั้ง ชีวมวลความเข้มข้นอย่างมีนัยสำคัญ ( ตารางที่ 2 ) ต่อนี้คือการใช้มวลชีวภาพฟรักโทสการผลิต โดยการเพิ่มความเข้มข้นขึ้น10 g L − 1 , การเจริญเติบโตและการผลิต PHB เพิ่มขึ้น2.39 และ 0.38 g L − 1 ) กับ 0.50 และ0.03 กรัมต่อลิตร− 1 ในวัฒนธรรมที่ควบคุม เพิ่มเติมเพิ่มในฟรุคโตสความเข้มข้นยับยั้งการเจริญเติบโตของ fertilissima .นี้อาจจะเนื่องจากการเพิ่มขึ้นของความดันออสโมติกที่ความเข้มข้นสูงฟรักโทสและความไม่สมดุลระหว่างไกลโคลิซิสและการเผาผลาญอาหารในร่างกายเซลล์ระบบยู( tabandeh และ vasheghani farahani 2003 ) การผลของอะซิเตทในการสะสม PHB คือทั้ง % ( dcw )กับการควบคุม 6.4 เปอร์เซ็นต์ อาจเป็นเพราะมีการใช้โดยตรงอะซิทิล COA พูลเพิ่มเซลล์ที่ค่าใช้จ่ายของ COA ฟรีโดยใช้เส้นทางปกติปฏิบัติการในไซยาโนแบคทีเรีย ( Gibson 1981 ; แพนด้าและมัลลิก 2007 ) การใช้กลูโคสในไซยาโนแบคทีเรีย อย่างไรก็ตามเกิดขึ้นผ่าน PPP . ดังนั้น จึงมีผลบวกของกลูโคสในการผลิต PHB อาจ attributable เพื่อเพิ่มอุปทานลดลง ปัจจัยร่วม nadph ( ลี , et al . 1995 )คำอธิบายที่คล้ายกันสามารถใช้ได้สำหรับการเพิ่มขึ้นPHB เนื้อหาฟรักโทส - ซูโครส - และ maltosesupplementedวัฒนธรรม ทั้งนี้ การให้ fertilissima Co .วัฒนธรรมกับ 3 G L − 1 ซิเตรตและ 3 g L − 1 อะซิเตทกระตุ้นการสะสม PHB ขึ้นมาเพียร์สัน ( dcw ) นี้สามารถอธิบายได้จากผลของการควบรวมมีอยู่มากมาย เช่น อะซิเตท และโคแฟกเตอร์ nadph